


Effects of Camellia Oil on the Properties of Myofibrillar Protein Gel
HAN KeYing


通讯作者:
责任编辑: 赵伶俐
收稿日期:2021-02-22接受日期:2021-04-13
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Received:2021-02-22Accepted:2021-04-13
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韩柯颖,E-mail:
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韩柯颖, 冯潇, 杨玉玲, 李珊珊, 魏苏萌, 陈玉敏. 添加山茶油对肌原纤维蛋白凝胶特性的影响. 中国农业科学, 2021, 54(20): 4446-4455 doi:10.3864/j.issn.0578-1752.2021.20.017
HAN KeYing, FENG Xiao, YANG YuLing, LI ShanShan, WEI SuMeng, CHEN YuMin.
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0 引言
【研究意义】以鸡肉为原料的糜类肉制品品质主要由肌原纤维蛋白(myofibrillar protein,MP)的凝胶特性决定[1]。脂肪作为肉制品的重要原料之一,直接影响肉制品的弹性、嫩度和风味。用植物油代替动物脂肪生产肉制品,有效降低饱和脂肪酸和胆固醇含量的同时,还能够较好地保持肉制品的风味和整体可接受性[2]。山茶油是富含茶多酚、山茶甙等多种生理活性物质的功能性植物油,能有效改善心脑血管疾病,降低癌症的发病率[3]。研究山茶油添加对MP热诱导凝胶特性的影响,并探讨其特性变化的调控机制,为利用山茶油制备功能性肉制品提供理论依据。【前人研究进展】有研究者探讨了在肉制品中添加植物油替代动物油脂的可行性,证实了适当添加植物油对肉类凝胶的性质有改善作用。不同的油脂对凝胶结构和持水性的影响不同[4]。添加橄榄油的猪肉MP复合凝胶强度显著高于添加花生油的处理[5],用棕榈油替代猪背膘可显著增强猪肉糜凝胶的硬度和保水性[6],菜籽油与魔芋胶复合后应用于低脂肉制品中能提高产品的硬度[7]。猪油和花生油通过物理包覆能促进猪肉MP复合凝胶的保水性和脂质稳定性[8]。大豆油添加后的鸡肉MP复合凝胶硬度、弹性和咀嚼度得到显著增强[9]。ZHOU等[10]研究发现脂肪的加入不仅显著提高了MP凝胶的质构特性,还能诱导MP分子结构产生变化。SHAO等[11]采用拉曼光谱法研究添加不同脂质的肉糜制品中蛋白质结构的变化,观察到α-螺旋结构的减少和β-折叠结构含量的增加,这一转变涉及蛋白质中氢键重排和疏水基团的暴露,证实了脂质能够改变蛋白质分子结构。作为我国特有的一种食用植物油,山茶油中不皂化物含量少,富含的单不饱和脂肪酸是脂质过氧化物的抑制剂,因此具有强抗氧化作用和良好的储存稳定性[12]。同时,山茶油中富含多种维生素、微量元素以及特定的生理活性物质等,能有效预防心脑血管疾病和肿瘤、降低胆固醇和血脂[13]。因此,山茶油具有很高的营养价值和保健功能,可作为替代动物脂肪的良好油脂应用于肉制品生产和加工。【本研究切入点】目前已经确证添加适量的花生油等几种植物油能改善MP的凝胶特性,而山茶油是具有保健功能的食用油,但国内外尚未见添加山茶油条件下鸡肉MP凝胶特性和结构变化规律的相关报道。【拟解决的关键问题】MP中加入不同浓度预乳化的山茶油乳液后经热诱导形成混合凝胶,研究山茶油添加对MP凝胶特性(硬度、保水性、水分布特性和流变特性)的影响并获得最佳的山茶油添加浓度;研究山茶油添加对MP的凝胶微观结构和二级结构及三级结构的影响,并通过研究茶树油添加量、凝胶特性和MP结构的关系,揭示山茶油改变凝胶特性的内在原因。1 材料与方法
试验于2020年5—10月在南京财经大学粮油质量检测工程技术研究中心进行。1.1 材料与试剂
重2 kg左右的60日龄AA(Arbor Acres)型商业肉鸡,购于南京本地养鸡场。现场屠宰后取鸡胸肉,加液氮冷冻密封运输至南京财经大学,储存于-18℃以下,1个月内使用。山茶油购于杭州久晟生物科技有限公司。牛血清蛋白(bovine serum albumin,BSA)购于国药集团化学试剂有限公司,其他化学试剂均为分析纯。1.2 仪器与设备
T10 Basic高速剪切均质器,德国IKA公司;Avanti J-26XP高效冷冻离心机,美国Beckman Coulter公司;TA. XT. Plus.质构仪,英国Stable Micro System公司;Anton Paar MCR302流变仪,奥地利安东帕有限公司;NM120-Analyst低场核磁共振仪,上海纽迈电子科技有限公司;DSC 8000型差示扫描热量仪,美国Perkin-Elmer公司;TM 3000扫描电子显微镜,日本日立公司;LABRAM 800型激光拉曼光谱仪,法国Jobin Yvon公司;U-3900紫外分光光度仪,日本日立公司;F-7000荧光光谱仪,日本日立公司。1.3 试验方法
1.3.1 MP的提取 取冷冻鸡胸肉在4℃下解冻20 min,剔除表面结缔组织和脂肪,切碎后参考杨玉玲等[14]的方法在低温下提取MP,4℃下保存并于3 d内用完。蛋白质浓度采用双缩脲法进行测定,以牛血清白蛋白为标准蛋白[15]。1.3.2 山茶油-MP混合样品溶液和凝胶的制备 取适量的山茶油加入MP中,用磷酸盐缓冲液(10 mmol·L-1 KH2PO4、0.6 mol·L-1 KCI,pH 6.0)溶解为1 mg·mL-1的MP溶液,以14 500 r/min转速下高速剪切均质60 s后制得新鲜的乳化液。取适量乳化液加入MP溶液体系中,充分混合均匀后,得到溶胶体系,其中蛋白质质量浓度为50 mg·mL-1,山茶油质量浓度分别达到1%、2%、3%、4%、5%,同时做不加山茶油乳化液的空白对照组,此系列溶液用于流变特性的测定和DSC热变性分析。取混合溶液样品置于水浴锅中,从20℃以1℃·min-1的速率加热至65℃,65℃下保温20 min后冷却至室温,随后在4℃下保存8—10 h制备成凝胶,用于凝胶特性、微观结构和拉曼光谱的测定。将MP浓度为50 mg·mL-1的混合溶液样品用磷酸盐溶液稀释至1 mg·mL-1,用于表面疏水性和总巯基含量的测定。
1.3.3 硬度的测定 MP凝胶样品的硬度采用配置P/6探头的质构仪在室温下穿刺5 mm测定。测试条件为:测试速率:1 mm·s-1;感应模式:自动;感应力:5 g。所有测试重复5次。
1.3.4 保水性的测定 凝胶样品称重后采用离心法测定其保水性(water holding capacity,WHC),在4℃、10 000×g条件下离心10 min,除去离出液体。记录离心后凝胶的重量占离心前凝胶重量的百分比,为其保水性。所有测试重复5次。
1.3.5 水分布特性的测定 取1 g MP样品,采用核磁共振分析仪的CPMG序列进行水分布特性的测定。测试参数设置如下:测试温度,32℃;质子共振频率,19 MHz;采样频率,100 kHz;模拟增益,20.0 db;累加次数,4;90°脉宽,14 µs;180°脉宽,26 µs;回波次数,15 000;等待时间,3 000 ms;重复扫描次数,8;谱宽:200 kHz。每组样品重复6次,取平均值。记录束缚水弛豫时间相应的峰面积比,以PT21表示。
1.3.6 流变特性的测定 取2 mL MP溶液样品置于流变仪平板上,设定动态流变条件[14]:直径50 mm平行板,狭缝0.5 mm,应变2%,频率0.1 Hz。升温速率1℃∙min-1,升温范围20—80℃。仪器自动记录储能模量(G')随温度变化曲线。
1.3.7 微观结构的观察 将凝胶样品用2.5%的戊二醛固定后用磷酸盐缓冲液清洗(0.1 mol·L-1 KH2PO4,pH 7.0),不同梯度乙醇进行脱水处理后冷冻干燥。对冻干样品进行喷金镀膜处理后,使用扫描电镜在1 500放大倍数下进行观察[16]。
1.3.8 拉曼光谱分析 凝胶样品中MP的二级结构含量通过拉曼光谱仪测定,参考ZHANG等[17]的方法进行参数设置,获取的拉曼光谱范围在400—2 000 cm-1。测试结果用各二级结构占总二级结构含量的百分比表示。
1.3.9 表面疏水性测定 将MP凝胶样品(1 mg·mL-1)分别稀释至0.5、0.25和0.125 mg·mL-1,采用ANS荧光探针法[16]进行测定。以荧光强度对蛋白浓度作直线,其初始斜率即为蛋白质的表面疏水性指标(S0-ANS)。
1.3.10 巯基含量测定 MP凝胶样品总巯基含量的测定参考LIU等[18]的方法并稍作修改。MP样品与总巯基试剂充分混匀后在40℃下静置25 min。使用磷酸盐缓冲液作为参考,于412 nm下测定样品吸光值,摩尔消光系数为13 600 M-1·cm-1。
1.3.11 热稳定性的测定 利用差示扫描量热法(DSC)测定MP样品的变性情况。称取20 mg MP样品,准确记录每组样品重量,置于不锈钢铝坩埚内密封,用于DSC测试。以空坩埚作为空白对照,样品以10℃∙min-1的速率从20℃升温至80℃。用Pyris-11软件计算各变性峰的变性温度(Td)和焓变(ΔH)。
1.4 统计分析
用SPSS软件对数据进行方差分析和相关性分析,若方差分析效应显著则用邓肯多范围试验(Duncan multiple range test)进行多重比较(P<0.05)。2 结果
2.1 山茶油添加量对MP凝胶硬度、保水性、水分布特性和MP流变特性的影响
不同山茶油添加条件下的MP凝胶硬度、保水性、PT21和MP的储能模量(G')变化如图1所示。随着山茶油含量从1%增加到4%,MP凝胶的硬度逐渐增加,在4%时到最大值(116.60 g),随后在5%时下降至114.33 g。凝胶保水性从92.92%(0)显著上升至95.77%(4%)(P<0.05),随后稍有降低至94.63%(5%)。凝胶体系中有不同种类的水分子,包括结合水、束缚水和自由水。束缚水反映位于凝胶结构内部的水,占水分分布比例最大且最为重要,因此本试验测定了束缚水在凝胶中的含量。T21代表束缚水的弛豫时间,PT21代表其峰面积比[19]。PT21随着山茶油含量增加至4%时呈显著性增加的趋势(P<0.05),在4%时达到最大值(80.05%)。表明添加4%山茶油时凝胶的硬度和保水性最佳,束缚水占总水分比例最大,浓度过高反而会导致三者降低。图1

图1山茶油添加对MP凝胶硬度、保水性、PT21和MP储能模量(G')的影响
不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。下同
Fig. 1Effects of camellia oil addition on hardness, water holding capacity and PT21 of MP gel and storage modulus (G') of MP
Different lowercase letters indicate significant difference (P<0.05). The same as below
MP溶液加热形成凝胶的过程中,山茶油含量对MP的G'影响显著,在50—55℃范围内呈现第一个峰值,表明肌球蛋白重链逐渐发生变性[8]。当继续升高温度至80℃,MP的G'值迅速增加,4%山茶油处理组的G'呈现最大值,这反映了凝胶弹性的增加。
2.2 山茶油添加量对MP凝胶微观结构的影响
如图2所示,未添加山茶油的凝胶结构疏松、无序、多孔且孔隙较大。与对照组相比,添加山茶油的MP混合凝胶呈现出更加均匀且致密的网状结构。随着山茶油浓度的增加(1%—4%),MP凝胶结构中蜂窝状网孔的孔径逐渐降低,凝胶的丝状物表面出现球形颗粒并逐渐增多,不规则的球状或棒状聚集块充分展开,粗糙度逐渐降低,凝胶结构变得平整且致密。添加4%山茶油的混合凝胶呈现均匀、细致的网络结构。5%的山茶油浓度导致MP凝胶结构遭到破坏,不够均匀且有较多的脂肪颗粒附着在丝状物表面,导致混合凝胶的保水性和硬度有所下降。图2

图2山茶油添加对MP凝胶微观结构的影响(电镜照片1500倍)
A—F分别表示山茶油含量为0、1%、2%、3%、4%、5%
Fig. 2Effect of camellia oil addition on microstructure (SEM micrographs at 1500×) of MP gel
A-F represent the camellia oil content of 0, 1%, 2%, 3%, 4% and 5%, respectively
2.3 山茶油添加量对MP二级结构的影响
随着山茶油浓度的增加(0—5%),其混合凝胶MP分子中的α-螺旋含量由39.94%显著降低至26.07%(P<0.05)。而β-折叠结构含量由22.04%显著上升至27.40%(P<0.05);β-转角结构含量显著增加(P<0.05),在5%山茶油含量时达最大值;而无规则卷曲结构含量从18.25%(0)逐渐上升至最大值21.39%(3%)后无显著性变化(P>0.05)(表1)。α-螺旋和β-折叠结构含量分别呈现增加和降低的趋势,表明山茶油添加改变了MP分子结构,由于蛋白-油脂和蛋白-蛋白侧链之间的相互作用增强,导致α-螺旋结构逐渐展开,形成了更多的β-折叠、β-转角或无规则卷曲结构。Table 1
表1
表1山茶油添加对MP凝胶二级结构的影响
Table 1
山茶油含量 Camellia oil content (%) | α-螺旋 α-helix (%) | β-折叠 β-sheet (%) | β-转角 β-turn (%) | 无规则卷曲 Random coil (%) |
---|---|---|---|---|
0 | 39.94±0.91a | 22.04±0.32d | 19.77±0.40e | 18.25±0.63b |
1 | 36.52±1.19b | 23.13±1.00c | 20.41±0.42e | 19.94±2.53ab |
2 | 33.85±0.74c | 24.55±0.34b | 21.93±0.61d | 19.67±0.45ab |
3 | 30.49±0.92d | 25.05±0.28b | 23.06±0.52c | 21.39±1.06a |
4 | 28.35±0.46e | 26.63±0.95a | 23.96±0.35b | 21.06±0.59a |
5 | 26.07±0.76f | 27.40±0.08a | 25.22±0.40a | 21.31±0.70a |
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2.4 山茶油添加量对MP三级结构的影响
蛋白质三级结构的形成是在二级结构基础上,分子进一步折叠成紧密的三维空间结构[20]。MP分子的表面疏水性(S0-ANS)和二硫键(S-S)与巯基(SH)之间的转换可以表征蛋白三级结构的变化[20,21]。2.4.1 表面疏水性 如图3所示,与未添加山茶油的MP凝胶相比,混合凝胶中MP的S0-ANS随着山茶油的添加而呈显著升高的趋势(P<0.05),在4%时达到最大值771.71,随后在5%时显著降低至718.64(P<0.05)。这一变化趋势与凝胶硬度和保水性(图1)一致,表明蛋白-蛋白或蛋白-油脂的作用增强,从而导致蛋白质的疏水性微环境发生变化。而当山茶油添加量达5%时,油脂颗粒的疏水性脂肪酸长链虽然增多,但并未增强蛋白质的表面疏水性,这可能是由于过量的油脂使蛋白质中的疏水性基团被覆盖或包埋,并没有导致蛋白质三级结构进一步展开。
图3

图3山茶油添加对MP凝胶的表面疏水性和总巯基含量的影响
Fig. 3Effects of camellia oil addition on the S0-ANS and total sulfhydryl content of MP gels
2.4.2 总巯基含量与二硫键 总巯基含量包括暴露在蛋白质表面和包埋在蛋白质内部的巯基,总巯基的减少通常反映了MP中二硫键的生成。山茶油的添加使凝胶中MP的总巯基含量明显下降(P<0.05),4%时达最小值(图3)。这反映在油脂的诱导下,MP的三级结构不断展开,内部巯基暴露并生成了大量二硫键,从而稳定了蛋白质的三级空间结构。当山茶油浓度升高至5%时,总巯基含量有所增加,说明加入过多的油脂对MP新结构具有去稳作用。
2.5 相关性分析
表2显示了山茶油添加量、MP凝胶特性和结构之间的相关性。山茶油添加量与硬度、保水性以及β-折叠结构含量呈显著的正相关(P<0.05),与α-螺旋结构和总巯基含量呈极显著的负相关(P<0.01),表明山茶油添加量显著影响凝胶特性、二级结构和三级结构。Table 2
表2
表2山茶油添加量、MP凝胶特性和结构之间的相关性
Table 2
山茶油添加量 Camellia oil content | 硬度 Hardness | 保水性 WHC | PT21 PT21 | 储能模量(65℃) G'(65℃) | α-螺旋 α-helix | β-折叠 β-sheet | 表面疏水性 S0-ANS | 总巯基 Total SH | |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
山茶油添加量Camellia oil content | 1 | ||||||||
硬度 Hardness | 0.889* | 1 | |||||||
保水性 WHC | 0.846* | 0.919** | 1 | ||||||
PT21 | 0.437 | 0.711 | 0.833* | 1 | |||||
G' (65℃) | 0.804 | 0.971** | 0.939** | 0.819* | 1 | ||||
α-螺旋α-helix | -0.997** | -0.896* | -0.865* | -0.482 | -0.815* | 1 | |||
β-折叠β-sheet | 0.994** | 0.886* | 0.871* | 0.463 | 0.810 | -0.989** | 1 | ||
表面疏水性 S0-ANS | 0.644 | 0.848* | 0.933** | 0.956** | 0.935** | -0.675 | 0.664 | 1 | |
总巯基 Total SH | -0.928** | -0.973** | -0.966** | -0.727 | -0.960** | 0.939** | -0.932** | -0.879* | 1 |
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蛋白质二级结构与MP凝胶特性之间存在关联,MP凝胶的硬度与α-螺旋呈显著负相关(P<0.05),与β-折叠呈显著正相关(P<0.05)。MP在65℃下的G'值与α-螺旋呈显著负相关(P<0.05)。表面疏水性与保水性、PT21呈极显著正相关(P<0.01)。总巯基含量与凝胶硬度、保水性和65℃下的G'值呈极显著负相关(P<0.01)。这一结果表明山茶油主要通过调控MP凝胶中蛋白质二级结构和三级结构的转变导致凝胶特性发生显著变化。
2.6 山茶油添加对MP变性温度和变性热焓的影响
如表3所示,MP样品在不同山茶油添加量的处理下都显示出两个吸热变性峰,即肌球蛋白(Td1)和肌动蛋白(Td2)。山茶油的添加对MP样品的肌球蛋白吸热变性峰的起始温度(TOnset)无显著性的影响(P>0.05),而终止温度(TEnd)略有下降。与未添加山茶油的对照组相比,添加山茶油后MP中肌球蛋白吸热变性峰的TEnd值逐渐下降,但在2%—5%范围内无显著性变化(P>0.05)。对照组中MP样品肌球蛋白的变性峰热焓值(△H)为0.183 J∙g-1;添加山茶油后,MP样品中肌球蛋白的△H显著下降至0.143 J∙g-1(5%)(P<0.05)。山茶油的添加对肌动蛋白吸热变性峰的TOnset有显著性影响(P<0.05),从70.97℃(1%)逐渐降低至68.41℃(5%),而对TEnd和△H无显著性影响(P>0.05)。Table 3
表3
表3不同山茶油添加处理下MP样品DSC特性的变化
Table 3
山茶油含量 Camellia oil content (%) | Td1 | Td2 | ||||
---|---|---|---|---|---|---|
TOnset (℃) | TEnd (℃) | △H (J∙g-1) | TOnset (℃) | TEnd (℃) | △H (J∙g-1) | |
0 | 55.14±0.54a | 62.89±0.22a | 0.183±0.007a | 70.50±0.35b | 71.89±1.05a | 0.023±0.003a |
1 | 54.73±0.43a | 62.69±0.11ab | 0.158±0.013b | 70.97±0.06a | 72.19±0.25a | 0.024±0.004a |
2 | 54.64±0.03a | 62.31±0.12b | 0.152±0.004b | 70.97±0.06a | 72.24±0.10a | 0.022±0.003a |
3 | 54.54±0.03a | 62.34±0.42ab | 0.155±0.017b | 70.81±0.02ab | 72.08±0.32a | 0.021±0.001a |
4 | 54.45±0.04a | 62.30±0.42b | 0.154±0.006b | 70.77±0.21ab | 71.90±0.27a | 0.023±0.003a |
5 | 54.39±0.10a | 62.37±0.28ab | 0.143±0.011b | 68.41±0.12c | 71.42±0.55a | 0.023±0.001a |
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3 讨论
3.1 山茶油影响MP凝胶特性和微观结构
蛋白质凝胶的品质可以通过硬度、保水性、水分布和流变特性等特性反映。本试验结果表明适量浓度山茶油(0—4%)的加入能够显著改善MP凝胶硬度(P<0.05),过量的山茶油导致凝胶硬度下降。WU等[8]研究发现加入预乳化的花生油(15%)显著增强MP(2%)的凝胶硬度。适量添加亚麻籽油、菜籽油能够增强肉类蛋白凝胶的硬度[22,23]。ZHOU等[24]研究发现添加鸡脂显著提高MP在加热过程中的G'值,在0.20%添加条件下蛋白质胶凝过程中的粘弹性最佳。ZHOU等研究[10]发现添加一定量的猪油或山茶油均能使蛋白获得更高的G'值,增强了凝胶性质。MP凝胶的保水性和PT21随着山茶油浓度的增加逐渐升高,在4%时达到最大值后呈下降趋势,说明MP中加入山茶油显著影响其凝胶保水性和水分布特性。王莉莎等研究[25]表明添加一定量的玉米油、橄榄油、米糠油均能增加MP乳化复合凝胶的持水力。邵俊花[26]研究发现脂肪的添加增大了弛豫时间T21的峰面积比。这些变化趋势与本试验结果相似,而含量差异可能是脂肪中的不饱和脂肪酸成分不同所致。
观察MP凝胶的微观结构发现,蛋白质主要通过纤维网状交联,山茶油在预乳化阶段经高速剪切后形成小的油脂颗粒,并由盐溶性的MP膜层包覆,作为填充物占据在蛋白质空间网络的空隙处,在热诱导之后均匀地分散在凝胶基质中[27]。山茶油-MP复合凝胶的结构更加有序、细腻。添加4%山茶油的MP凝胶网络中孔径最小,粗糙度最低,呈现均匀、紧凑且致密的网状结构。此时蛋白质三级结构展开程度最大,分子的表面疏水性和二硫键交联增强,分子有序结构的适度展开使凝胶具有良好的网状结构。因此,山茶油添加对MP凝胶的微观结构有显著的调节作用,且与硬度和保水性的变化趋势一致,这表明凝胶微观结构影响凝胶特性。当山茶油含量进一步增加至5%,凝胶结构中网孔稍有增大且分布不均匀,多余的油脂无法被蛋白基质稳定地包埋在凝胶基质中,以球状颗粒附着在丝状物表面。这是由于MP凝胶的表面疏水性和二硫键含量降低,蛋白质分子间参与凝胶形成作用力的减弱对微观网络结构产生不利影响。庄涛[5]报道在猪肉MP体系中加入橄榄油和花生油乳化液后,颗粒填充分布均匀,结构变得致密且紧实。而由于油脂的黏稠度不同,橄榄油乳液的填充效果更好。ZHOU等[24]研究发现脂肪含量的增加(0.05%—0.20%)使凝胶的粗糙度下降并形成良好的网状结构;而过多的脂肪添加则会增加凝胶的粗糙度,同时导致其质构特性下降。不同种类的油脂对凝胶结构和特性的改善程度不同,XIONG等[28]将此现象归结为油脂的理化性质差异。
3.2 山茶油影响MP二级结构和三级结构
山茶油的加入致使MP分子结构不同程度地展开,α-螺旋结构展开后形成β-折叠或其他二级结构。在肉糜蛋白质中添加大豆油或橄榄油后,其蛋白质的α-螺旋含量降低而β-折叠含量也显著增加[5,25],这与本研究得到的变化趋势一致。蛋白质分子的表面疏水性反映其三级结构的展开程度和分子间的聚集能力。本研究中MP-山茶油混合凝胶的表面疏水性指标S0-ANS随着山茶油含量增加而逐渐上升,在4%时达到最大值后又降低。这表明随着山茶油的添加,MP在溶液中形成疏水性的微环境逐渐增多,诱导蛋白质分子三级结构充分展开和更多的内部疏水性氨基酸残基暴露。这些展开的疏水基团有利于凝胶致密网络结构的形成。当山茶油添加到5%时,多余的油脂吸附在暴露的疏水性基团表面,部分暴露的疏水基团被油脂包埋,同时油脂和蛋白质之间的疏水相互作用产生一定的空间位阻,导致蛋白质分子三级结构无法再深度展开,进而影响凝胶的质构特性。MENG等[29]也发现添加矿物油或玉米油可以诱导MP内部疏水基团的暴露,增强其表面疏水性。HOWELL等[30]报道了玉米油的存在可以诱导溶菌酶的疏水基团暴露。
通过测定总巯基含量能反映二硫键的变化。二硫键的形成对MP展开后形成新的三级结构和其在加热过程中的凝胶结构具有稳定作用。添加5%的山茶油导致总巯基含量增加,意味着二硫键的减少。这可能是山茶油和蛋白质的聚集覆盖了部分巯基,无法形成更多的二硫键。同时,过量的山茶油导致二硫键发生破裂,对蛋白质展开重排后形成的新结构具有去稳作用。ZHOU等[24]发现MP溶液和凝胶中的总巯基含量随鸡脂肪含量的增加而显著降低,促进了蛋白质凝胶形成牢固的网络结构,这与本试验研究结果一致。二硫键参与了热诱导乳化凝胶的形成,能够维持脂肪颗粒的稳定和网状结构的交联,防止凝胶形成过程中油脂的游离渗漏[31],对维持良好的凝胶特性做出贡献[25]。
3.3 山茶油添加引起MP凝胶特性变化的原因
一般认为,MP热诱导凝胶形成的过程是其在加热的条件下发生变性,蛋白质分子展开与重排的结果。因此,蛋白质分子高级结构变化是形成热诱导凝胶的关键。本研究发现,山茶油添加量与凝胶的硬度、保水性以及β-折叠结构含量呈显著的正相关;蛋白质二级、三级结构变化与凝胶特性也显著相关。用DSC测定MP样品时发现,其肌球蛋白的热变性峰分布在54—63℃,肌动蛋白的热变性峰集中在68—73℃。山茶油添加量在1%—5%的范围内对肌球蛋白变性峰的起始温度没有影响,但导致终止温度和热焓值(△H)显著下降。这表明山茶油的添加与MP的主要成分肌球蛋白发生相互作用,引起MP分子结构发生变化,通过降低肌球蛋白的变性热焓而使MP更容易变性。HE等[32]利用DSC法研究了高压处理对花生分离蛋白热变性温度的影响。蔡路昀等[33]研究了不同提取方法对鲽鱼骨胶原蛋白热变性温度的影响,而未涉及对△H的影响研究。在热诱导过程中,山茶油的添加使MP周围的疏水性微环境发生变化,诱导分子三级结构进一步展开,内部的疏水性氨基酸残基等基团逐渐暴露,疏水残基定向移动到油滴表面会发生构象重排;同时,蛋白质分子间的二硫键发生聚集,相邻的蛋白质分子间的相互作用增强以及蛋白-油脂间紧密结合[34],使山茶油能更稳定地存在于凝胶基质中,进而改善MP凝胶三维网状结构。而良好致密的凝胶三维网状结构能更好地保留水分,并具有更强的抗压能力。
综上所述,添加山茶油改变MP的微环境,并与MP发生作用,使MP更易变性并导致其二级结构展开以及三级结构改变,进而影响MP凝胶特性。不少****的研究都发现了蛋白质凝胶特性与其结构有关。KANG等[35]发现β-折叠的增加和α-螺旋的降低是法兰克福香肠的硬度和保水性增强的原因。BEATTIE[36]和LIU[37]等的研究结果表明蛋白质在热处理过程中,α-螺旋结构阻碍蛋白质的凝胶化,而β-折叠或无规卷曲则促进了蛋白质凝胶网络的形成,增强了凝胶的质构特性和保水性。
4 结论
山茶油含量显著影响MP凝胶特性和微观结构,凝胶硬度、保水性和PT21随着山茶油添加而显著增强,MP溶液加热形成凝胶过程中的G'值逐渐升高。添加4%山茶油的MP具有最佳的凝胶特性和均匀细密的微观网络结构,此时MP和山茶油的比例为1﹕0.8。山茶油添加(0—4%)使蛋白质二级结构中α-螺旋转变为β-折叠、β-转角和无序卷曲,促进MP分子三级结构逐渐展开,分子内疏水性基团暴露,表面疏水性和二硫键交联增加,使蛋白-蛋白与蛋白-油脂间相互作用增强,形成更加均匀稳定的凝胶网络结构,最大限度地保留凝胶空间中的水分。而当过多的山茶油参与MP凝胶形成时,蛋白质中的疏水性基团被覆盖或包埋,二硫键含量降低。凝胶基质中多余油脂形成的空间阻碍作用导致蛋白质分子展开度降低,参与凝胶形成的作用力减弱而降低硬度、保水性和微观结构的均匀性。参考文献 原文顺序
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