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柴达木野生黑果枸杞的空间遗传结构

本站小编 Free考研考试/2022-01-01

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2石河子大学理学院, 绿洲城镇与山盆系统生态兵团重点实验室, 新疆石河子 832000

Spatial genetic structure of Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin

Chun-Cheng WANG1, Song-Mei MA,,2,*, Dan ZHANG1, Shao-Ming WANG11Key Laboratory of Ecological Corps for Oasis City and Mountain Basin System, College of Life Sciences, Shihezi University, Shihezi, Xinjiang 832000, China
2Key Laboratory of Ecological Corps for Oasis City and Mountain Basin System, College of Science, Shihezi University, Shihezi, Xinjiang 832000, China

通讯作者: * 马松梅: ORCID: 0000-0002-3107-2256,shzmsm@126.com

编委: 王锁民
责任编辑: 李敏
收稿日期:2019-11-4接受日期:2020-03-27网络出版日期:2020-06-20
基金资助:国家自然科学基金(41261011)
国家自然科学基金(41561007)


Corresponding authors: * ORCID: 0000-0002-3107-2256,shzmsm@126.com
Received:2019-11-4Accepted:2020-03-27Online:2020-06-20
Fund supported: National Natural Science Foundation of China(41261011)
National Natural Science Foundation of China(41561007)


摘要
基于cpDNA序列, 研究柴达木野生黑果枸杞(Lycium ruthenicum)的遗传多样性、遗传结构和单倍型进化关系, 可为其种群的遗传保护提供理论依据。该研究基于3个筛选的叶绿体多态引物: psbA-trnH、psbK-psbI和trnV, 利用群体遗传分析方法研究柴达木盆地野生黑果枸杞的遗传变异格局: 利用软件DnaSP 6.0和Permut 2.0计算分子多样性指标, 利用分子方差分析研究组间和种群间的遗传变异来源, 利用单倍型网络分析和主坐标分析研究单倍型的聚类关系; 利用最大似然树和贝叶斯系统树分析单倍型的谱系进化关系。结果显示: 叶绿体序列psbA-trnH、psbK-psbI和trnV拼接后的总长度为1 454 bp, 鉴别出14个核苷酸变异位点, 共定义了7个单倍型。种群间总的遗传多样(hT)和种群内遗传多样性(hS)分别为0.916和0.512。AMOVA分析结果表明, 80%以上的遗传变异来源于组间和种群间。叶绿体单倍型的贝叶斯系统树和最大似然树均表明柴达木盆地黑果枸杞种群聚为2支: 德令哈和格尔木为一支, 诺木洪为另一支。单倍型网络和主坐标分析结果揭示的拓扑结构和聚类关系与系统树一致。Mantel检验结果表明柴达木黑果枸杞种群间的遗传距离与地理距离存在显著的弱相关关系(r = 0.591 1, p = 0.000 9)。柴达木盆地黑果枸杞种群具有较高的遗传多样性, 种群间遗传分化显著。从遗传多样性保护的角度而言, 具有较高遗传多样性的诺木洪林业站和格尔木新乐村种群可划分为保护管理单元。
关键词: 黑果枸杞;柴达木盆地;叶绿体片段;遗传变异;遗传结构

Abstract
Aims Based on the cpDNA sequences, we studied the genetic diversity, genetic structure and haplotype evolution of wild Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin and provided the scientific basis for the genetic conservation of this species.
Methods We used three filtered high polymorphic cpDNA fragments (psbA-trnH, psbK-psbI and trnV) to study the genetic variation pattern of L. ruthenicum in the Qaidam Basin by employing the population genetic analysis methods. The molecular diversity indices were calculated by using the software of DnaSP 6.0 and Permut 2.0. Genetic differentiation among populations and the defined groups was estimated by the AMOVA analysis. The median-joining network and principal coordinate analysis (PCoA) were used to identify the clustering relationship of haplotype. The maximum likelihood method and Bayesian method were used to reconstruct the phylogenetic tree based on cpDNA haplotypes.
Important findings The combined length of psbA-trnH, psbK-psbI and trnV was 1 454 bp. 14 polymorphic sites were detected, and a total of seven haplotypes were identified. The total genetic diversity (hT) and within-population genetic diversity (hS) were 0.916 and 0.512, respectively. Results from AMOVA suggested that more than 80% of the observed variation was due to differences among groups and populations. The maximum likelihood analysis and Beast analysis revealed that seven haplotypes clustered into two clusters, corresponding to Golmud and Delingha regions and Nuomuhong region, respectively. The revealed topological structure and clusters of haplotype network and PCoA analyses were consistent with the phylogenetic trees. Results of the Mantel test (r = 0.591 1, p = 0.000 9) indicated a non-significant correlation between geographical distance and genetic distance. The L. ruthenicum populations in the Qaidam Basin have high levels of genetic diversity and significant genetic differentiation among populations. In relation to conservation management, we identified the Nuomuhong forestry station and Xinle Village of Golmud City as having a high degree of genetic diversity and these should be the areas of the greatest focus for conservation.
Keywords:Lycium ruthenicum;Qaidam Basin;chloroplast fragments;genetic variation;genetic structure


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引用本文
王春成, 马松梅, 张丹, 王绍明. 柴达木野生黑果枸杞的空间遗传结构. 植物生态学报, 2020, 44(6): 661-668. DOI: 10.17521/cjpe.2019.0298
WANG Chun-Cheng, MA Song-Mei, ZHANG Dan, WANG Shao-Ming. Spatial genetic structure of Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin. Chinese Journal of Plant Ecology, 2020, 44(6): 661-668. DOI: 10.17521/cjpe.2019.0298


黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996)。野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011)。近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018)。因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义。目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012)。王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显。柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015)。为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017)。但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈。

叶绿体基因组(cpDNA)可有效检测植物物种的遗传变异、评估种子迁移对总基因流的贡献、重建有价值的系统发生格局(McCauley, 1995), 被广泛应用于植物系统分类与进化、种群遗传学、生物系统地理学等研究领域。本研究利用已筛选的3对多态性较高的叶绿体DNA序列(psbA-trnH、psbK-psbI和trnV), 整合利用多种群体遗传学分析方法, 对柴达木盆地黑果枸杞自然分布范围内的5个种群共60个个体进行遗传研究。旨在解决以下科学问题: 1)基于叶绿体序列变异的柴达木盆地黑果枸杞种群间和种群内的遗传变异分布; 2)黑果枸杞的空间遗传结构和单倍型的进化关系; 3)柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传保护对策与建议。

1 材料和方法

1.1 野外调查与采样

于2016-2018年, 在柴达木盆地黑果枸杞的自然分布范围内, 对该植物进行了全面的野外调查与采样。在柴达木盆地, 野生黑果枸杞仅集中分布于盆地腹部以格尔木市为中心, 半径200 km的区域范围内, 多分布于诺木洪、德令哈、格尔木等地的戈壁荒滩上(祁银燕等, 2018)。本研究在德令哈、格尔木和诺木洪共采集了5个自然种群, 每个种群采集10-15份样品, 共采样60份, 覆盖了该植物在青海省柴达木盆地的自然分布范围(表1)。野外采样过程中, 考虑到黑果枸杞存在克隆生长特性(何文革等, 2015), 每个种群所采集的个体至少间距20 m以上, 利用GPS定位经纬度和海拔。采样的5个野生黑果枸杞种群间的地理距离介于23-247 km之间, 德令哈红光村(DLH)与格尔木新乐村(GEM1)之间的地理间距最大(247 km), 诺木洪林业站(NMH1)与诺木洪田格力村(NMH2)的距离最小, 约为23 km。其中, 格尔木和德令哈采样的黑果枸杞种群片段化分布于市郊的公路边、乡村房前屋后和小路旁, 种群个体较少, 分布的间隔区较大; 诺木洪农场和林业站附近的两个种群的个体数相对较多, 受人类活动干扰较少。采集新鲜、幼嫩、无病斑的叶片, 就地用硅胶迅速干燥保存于自封袋, 带回实验室后置于-20 ℃冷藏。

Table 1
表1
表1柴达木盆地黑果枸杞自然种群的采样信息及遗传信息
Table 1Sampling information and genetic information of natural populations of Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin
种群名称及编码
Population name and
code
海拔
Altitude (m)
经纬度
Latitude and
Longitude
采样数
Sample size
单倍型及个体数
Haplotype and the individual numbers
单倍型多样性
Haplotype diversity
(Hd ± SD)
核苷酸多样性
Nucleotide diversity
(π ± SD)
德令哈市红光村 Hongguang Village of Delingha City (DLH)2 97037.38° N, 97.34° E10H1 (2), H4 (8)0.356 ± 0.0250.000 73 ± 0.33
都兰县诺木洪林业站 Nuomuhong Forestry Station of Dulan County (NMH1)2 82036.41° N, 96.45° E15H5 (7), H6 (6), H7 (2)0.604 ± 0.0690.000 46 ± 0.09
都兰县诺木洪乡田格力村 Tiangeli Village of Nuomuhong Township of Dulan County (NMH2)2 76236.39° N, 96.19° E12H5 (5), H7 (7)0.530 ± 0.0530.000 37 ± 0.05
格尔木市新乐村 Xinle Village of Golmud City (GEM1)2 78736.39° N, 94.86° E12H1 (7), H2 (4), H3 (1)0.591 ± 0.0110.001 26 ± 0.03
格尔木市大格勒乡 Dagele Township of Golmud City (GEM2)2 83736.44° N, 95.75° E11H1 (3), H2 (8)0.436 ± 0.0180.000 09 ± 0.03
H1-H7表示为本研究鉴定出的7个叶绿体单倍型。
H1-H7 represents the seven chloroplast haplotypes identified in this study.

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柴达木盆地采样区, 黑果枸杞株高一般为15- 50 cm, 多分枝多棘刺; 分枝斜升或横卧于地面, 呈白色或灰白色, 常成“之”字形曲折, 小枝顶端渐尖成棘刺状, 节间短缩, 每节均含短棘刺; 花冠为漏斗状, 一般为白色、浅粉色或浅紫色; 浆果, 紫黑色, 球形、扁球形或蟠桃形。

1.2 研究方法

总基因组DNA利用天根公司新型植物基因组提取试剂盒(DP320)进行提取。利用Thermo核酸检测仪(Nanodrop 2000/2000c, 北京博恒科创生物科技有限公司)测定DNA的浓度。选用所采集的部分代表样品进行cpDNA引物筛选, 选取多态性较高的3个区段psbA-trnH (Sang et al., 1997), psbK-psbI (Shaw et al., 2007)和trnV (Shaw et al., 2007)进行PCR扩增。PCR扩增反应体系25 μL, 反应程序: 94 ℃预变性5 min; 94 ℃变性1 min, 退火30 s (退火温度, psbA-trnH为56 ℃, psbK-psbI为50 ℃, trnV为54 ℃), 72 ℃延伸45 s, 35个循环; 72 ℃延伸 10 min。获得的PCR产物利用1%的琼脂糖进行凝胶电泳, EB染色观察。将扩增产物和测序引物送上海生物工程技术有限公司进行正反向测序, 测序引物同PCR扩增引物。

1.3 数据分析

测序的cpDNA序列数据利用BioEdit 7.0进行多重比对、人工校对及序列编辑与拼接。利用DnaSP 6.0对psbA-trnH、psbK-psbI和trnV的拼接序列进行分析: 统计插入或缺失碱基的个数, 鉴别不同的单倍型序列, 并计算单倍型多样性(Hd)和核苷酸多样性(π)。序列中的每一个插入或缺失都作为一个进化事件处理(Simmons & Ochoterena, 2000), 用于后面的单倍型网络分析、最大似然分析和贝叶斯分析。利用Permut (Pons & Petit, 1996)计算种群间总的遗传多样性(hT)、种群内平均遗传多样性(hS)和种群间遗传分化系数(GST)和碱基替换类型数(NST)。利用U检验检测NSTGST的显著性, NST显著高于GST表明物种分布范围内存在显著的谱系地理结构(Pons & Petit, 1996)。利用Arlequin 3.5分子方差分析(Excoffier & Lischer, 2010)计算自定义的组间和种群间的遗传变异来源, 估算遗传变异指数(FST, FCTFSC)。为研究种群间的相似性与遗传结构, 利用R 3.6.2的“vegan”包(Peakall & Smouse, 2006), 基于cpDNA的成对遗传距离矩阵, 进行种群水平的主坐标分析(PCoA), 并利用“scatter plot 3d”包进行3D结果可视化。利用Alleles In Space (Miller, 2005)进行Mantel test分析, 检测种群间的遗传距离和地理距离之间的相关性。

选择与黑果枸杞近缘的茄科茄属龙葵(Solanum nigrum)作为外类群(Fukuda et al., 2001), 基于cpDNA序列组合(psbA-trnH + psbK-psbI + trnV), 利用软件Network 5.0基于中接法(median-joining)分析单倍型的网络关系。利用MEGA 7.0 (Tamura et al., 2007)基于Kimura-2参数模型和最大似然法构建单倍型的系统发育树。利用BEAST 1.7.4 (Ronquist et al., 2012), 构建单倍型的贝叶斯系统发育树。方法是: 利用ModelTest v3.7软件(Drummond et al., 2002)选取HKY碱基替换模型作为最优模型; 采用松弛分子钟, 其他各项参数的先验值均采用系统默认值; 利用Tracer v1.5计算贝叶斯因子(BF), 检查马尔科夫链蒙特卡洛(MCMC)的收敛, 在舍弃初始的10%的老化样本后, 检测有效样本量(ESS > 200); 独立运算2次, 每次运算1 000万代, 每1 000代抽样1次。基于合并后的样本, 利用BEAST程序包的Tree Annotator 1.7.4软件, 计算最大进化支可信性系统发育树。

2 研究结果和分析

2.1 种群的遗传多样性分析

柴达木盆地黑果枸杞psbA-trnH、psbK-psbI和trnV的序列长度分别为511、394和549 bp, 多重比对及拼接后的总长度为1 454 bp, 包括14个核苷酸变异位点, 共定义了7个cpDNA单倍型(表2)。单倍型网络表明, 5个种群可分为两个地理组, 即德令哈和格尔木的3个种群为一组, 诺木洪的2个种群为另一组(图1)。hT为0.916, hS为0.512。对于种群组水平而言, 德令哈和格尔木组的平均单倍型多样性(0.461 ± 0.042)低于诺木洪组(0.567 ± 0.096), 而平均核苷酸多样性前者(0.001 04 ± 0.01)高于后者(0.000 42 ±0.07)。种群组内, 诺木洪林业站种群具有最高的单倍型多样性, 格尔木新乐村种群具有最高的核苷酸多样性, 而德令哈红光村和格尔木大格勒乡种群分别表现出了最低的单倍型多样性和核苷酸多样性(表1)。本研究测序的所有序列已全部上传美国国家生物技术信息中心(NCBI; 序列号: MT377568- MT377588)。

Table 2
表2
表2柴达木盆地黑果枸杞7个叶绿体单倍型及其变异位点
Table 2Variable nucleotide sites of seven chloroplast haplotypes of Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin
单倍型
Haplotype
变异位点 Variable nucleotide sites
psbA-trnHpsbK-psbItrnV
11021731831933336537142142652859510391208
H1ACCGGT-GGG-TTG
H2-CAC
H3-A--C
H4ACA-
H5-CC-CAAC
H6-CC-CAACT
H7-CC-CAACC
●表示与H1一致的变异位点, -表示缺失位点。
● represents the variation sites consistent with the haplotype H1, - represents the deletion site.

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图1

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图1柴达木盆地黑果枸杞7个叶绿体单倍型(H1-H7)的地理分布及其单倍型网络。图中居群编码与表1一致, 饼图表示各居群的单倍型频率。

A, 单倍型网络, 图中圆圈大小与单倍型频率成正比, 节点间的分支长度大致与单倍型的突变数成正比, 相应分支附近附有步长; 龙葵作为外类群。
Fig. 1Geographical distribution and the haplotype network of seven chloroplast haplotypes (H1-H7) of Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin. The population codes in this figure are consistent with Table 1. Pie graphs indicate the frequency of each haplotype at these locations.

A, In the median-joining haplotypes network, the sizes of the circles in the network are proportional to the haplotype frequencies. Branch lengths are roughly proportional to the number of mutation steps between haplotypes and nodes. The true number of steps is shown near the corresponding branch sections. Solanum nigrum was used as outgroup.


2.2 种群遗传分化分析

柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传分化系数较高(NST = 0.802 ± 0.049 4, GST = 0.441 ± 0.067 2, p < 0.05), 表明物种分布范围内存在显著的空间遗传分化。AMOVA分析结果表明, 80.01%的遗传变异来源于种群间, 19.19%的遗传变异来源于种群内, 基于组水平, 82.04%的遗传变异来源于组间(表3)。根据PCoA分析结果, 5个自然种群可显著聚为两组, 即分布于德令哈和格尔木的种群为一组, 分布于诺木洪的种群为另一组(图2)。Mantel test的结果表明, 柴达木盆地黑果枸杞各种群间的遗传距离与地理距离间存在显著的弱相关关系(r = 0.591 1, p = 0.000 9)。

Table 3
表3
表3柴达木盆地黑果枸杞种群的分子方差分析(AMOVA)
Table 3Analysis of molecular variance (AMOVA) of Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin
变异来源
Source of variation
自由度
df
平方和
Sum of squares
变异组成
Variance components
变异所占比例
Percentage of variation (%)
固定指数
Fixation index
种群间 Among populations4105.3052.159 3780.01FST= 0.800 07
种群内 Within populations5529.6790.539 6119.99
总变异 Total59135.9532.698 99
组间 Among groups1100.3833.254 9682.04FCT= 0.820 43
组内种群间 Among populations within groups36.9170.145 463.67FSC= 0.204 18
种群内 Within populations5628.4080.566 9514.29FST= 0.857 10
总变异 Total60135.0033.967 37
FCT, 组间的遗传变异指数; FSC, 组内种体间的遗传变异指数; FST, 种群间的遗传变异指数。
FCT, variance among groups relative to total variance; FSC, variance among populations within groups; FST, variance among populations.

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图2

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图2柴达木盆地黑果枸杞基于种群水平的前三个坐标的主坐标分析(PCoA)。

Fig. 2Plots of the first three coordinates of the principal coordinates analysis (PCoA) at the population level for Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin.



2.3 单倍型的地理分布和系统发育分析

单倍型网络表明, 7个单倍型聚为2支: H1-H4为一支, 分布于德令哈和格尔木; H5-H7为另一支, 分布于诺木洪(图1)。对于德令哈和格尔木种群组的单倍型而言, H1广泛分布于每个种群, 占全组所有个体的36.36%, H2共享于格尔木的两个种群; H3和H4分别为格尔木新乐村(GEM1)和德令哈红光村(DLH)的私有单倍型。诺木洪组的3个单倍型中, H5和H7在全组种群中均有分布, 分别占全组所有个体的44.45%和33.33%; H6为诺木洪林业站(NMH1)的私有单倍型(表1; 图1)。

叶绿体单倍型的最大似然树和贝叶斯树均表明7个单倍型聚为2支: 分布于德令哈和格尔木的H1-H4为一支; 分布于诺木洪的H5-H7为另一支(图3)。

图3

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图3柴达木盆地黑果枸杞叶绿体单倍型的系统发育树。

A, 最大似然(ML)树, 分支点上方的数字为大于等于80的自展支持率。B, 贝叶斯树, 分支节点右侧的数字表示所有大于0.80的后验概率值。两系统发育树右侧的黑条表示相应的分支。
Fig. 3Phylogenetic trees of chloroplast haplotypes of Lycium ruthenicum in the Qaidam Basin.

A, Maximum likelihood (ML) tree. Bootstrap values equal to or greater than 80 are shown above the corresponding branching points. B, Bayesian tree. The values on the right of the branching points represent the posterior probability greater than 0.80. The black bars on the right of the two phylogenetic trees indicate the corresponding clades.


3 讨论

3.1 柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性

柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512)。相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015)。另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016)。一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016)。另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019)。而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1)。这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累。诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016)。

3.2 柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传结构与遗传分化

AMOVA分析结果和种群间较高的遗传分化系数都表明黑果枸杞种群间以及两个种群组间存在显著的遗传分化(表3)。叶绿体单倍型网络和PCoA分析均表明两个种群组间无共享单倍型, 具有显著的聚类关系(图2, 图3)。柴达木盆地黑果枸杞种群表型性状的分析也表明格尔木、德令哈与诺木洪的种群呈现2组(刘桂英等, 2016)。本研究中, 两个种群组相比, 诺木洪采样种群分布于荒漠盐土生境, 人类活动干扰较少, 黑果枸杞植株/灌丛长势较好。最大似然树和贝叶斯树均支持德令哈和格尔木的种群组与诺木洪的种群组之间显著的谱系分化(图3)。但基于核DNA标记对柴达木黑果枸杞种群的遗传研究表明种群间遗传分化较低, 绝大多数的遗传变异来源于种群内(王锦楠等, 2015)。这可能是因为叶绿体非编码区序列, 具有单亲遗传特点, 不仅在种间种内被频繁地检测到了较高的遗传变异(Ebert & Peakall, 2009), 还能显示出显著不同的地理分布和种群遗传分化(Flannery et al., 2006)。

本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献。柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播。因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018)。而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015)。因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化。另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化。因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化。

3.3 保护建议

柴达木盆地野生黑果枸杞集中分布范围较小, 目前采样区种群面积急剧缩小和严重片段化, 这意味着该植物可能正在遭受遗传漂变和近交机率增加的风险, 最终将造成种群内遗传多样性降低。因此, 从遗传多样性保护的角度而言, 本研究揭示的具有较高遗传多样性的诺木洪林业站和格尔木新乐村种群可划分为两个保护管理单元, 作为保护现有种群遗传多样性的重点。而且, 在柴达木盆地野生黑果枸杞的分布区, 应减少或杜绝人为活动的干扰, 保护该植物的原生生境, 帮助其恢复和扩大种群, 以减少遗传漂变、自交等带来的潜在风险。



参考文献 原文顺序
文献年度倒序
文中引用次数倒序
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Molecular sequences obtained at different sampling times from populations of rapidly evolving pathogens and from ancient subfossil and fossil sources are increasingly available with modern sequencing technology. Here, we present a Bayesian statistical inference approach to the joint estimation of mutation rate and population size that incorporates the uncertainty in the genealogy of such temporally spaced sequences by using Markov chain Monte Carlo (MCMC) integration. The Kingman coalescent model is used to describe the time structure of the ancestral tree. We recover information about the unknown true ancestral coalescent tree, population size, and the overall mutation rate from temporally spaced data, that is, from nucleotide sequences gathered at different times, from different individuals, in an evolving haploid population. We briefly discuss the methodological implications and show what can be inferred, in various practically relevant states of prior knowledge. We develop extensions for exponentially growing population size and joint estimation of substitution model parameters. We illustrate some of the important features of this approach on a genealogy of HIV-1 envelope (env) partial sequences.

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Chloroplast microsatellites, or simple sequence repeats (cpSSRs), are typically mononucleotide tandem repeats. When located in the noncoding regions of the chloroplast genome (cpDNA), they commonly show intraspecific variation in repeat number. Despite the growing number of studies applying cpSSRs, studies of economically important plants and their relatives remain over-represented. Thus, the potential of cpSSRs to offer unique insights into ecological and evolutionary processes in wild plant species has yet to be fully realized. This review provides an overview of the technical resources available to aid cpSSR discovery including a list of cpSSR primer sets available and cpDNA sequencing resources. Our updated analysis of 99 whole chloroplast genomes downloaded from GenBank confirms that potentially variable cpSSRs are abundant in the noncoding cpDNA of plants. Overall variation in the frequency of cpSSRs was extreme, ranging from one to 700 per genome (median = 93), while in 81 vascular plants, between 35 and 160 cpSSRs were detected per genome (median = 86). We offer five recommendations to aid wider development and application of cpSSRs: (i) When genus-specific cpSSR primers are available, cross-species amplification can often be fruitful. (ii) While potentially useful, universal cpSSR primers at best provide access to only a small number of variable markers. (iii) De novo sequencing of noncoding cpDNA is the most effective and efficient way to develop cpSSR markers in wild species. (iv) DNA sequencing of cpSSR alleles is essential, given the complex nature of the genetic variation associated with hypervariable cpDNA regions. (v) The reliability of cpSSR length based genetic assays need to be validated in all studies.

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We present here a new version of the Arlequin program available under three different forms: a Windows graphical version (Winarl35), a console version of Arlequin (arlecore), and a specific console version to compute summary statistics (arlsumstat). The command-line versions run under both Linux and Windows. The main innovations of the new version include enhanced outputs in XML format, the possibility to embed graphics displaying computation results directly into output files, and the implementation of a new method to detect loci under selection from genome scans. Command-line versions are designed to handle large series of files, and arlsumstat can be used to generate summary statistics from simulated data sets within an Approximate Bayesian Computation framework.

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We report a new set of nine primer pairs specifically developed for amplification of Brassica plastid SSR markers. The wide utility of these markers is demonstrated for haplotype identification and detection of polymorphism in B. napus, B. nigra, B. oleracea, B. rapa and in related genera Arabidopsis, Camelina, Raphanus and Sinapis. Eleven gene regions (ndhB-rps7 spacer, rbcL-accD spacer, rpl16 intron, rps16 intron, atpB-rbcL spacer, trnE-trnT spacer, trnL intron, trnL-trnF spacer, trnM-atpE spacer, trnR-rpoC2 spacer, ycf3-psaA spacer) were sequenced from a range of Brassica and related genera for SSR detection and primer design. Other sequences were obtained from GenBank/EMBL. Eight out of nine selected SSR loci showed polymorphism when amplified using the new primers and a combined analysis detected variation within and between Brassica species, with the number of alleles detected per locus ranging from 5 (loci MF-6, MF-1) to 11 (locus MF-7). The combined SSR data were used in a neighbour-joining analysis (SMM, D (DM) distances) to group the samples based on the presence and absence of alleles. The analysis was generally able to separate plastid types into taxon-specific groups. Multi-allelic haplotypes were plotted onto the neighbour joining tree. A total number of 28 haplotypes were detected and these differentiated 22 of the 41 accessions screened from all other accessions. None of these haplotypes was shared by more than one species and some were not characteristic of their predicted type. We interpret our results with respect to taxon differentiation, hybridisation and introgression patterns relating to the 'Triangle of U'.

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In many species of plants, the dispersal of genes is mediated by the movement of both seeds and pollen. The relative contributions of seed and pollen movement to total gene flow can be difficult to estimate. Chloroplast DNA (cpDNA) may prove useful for resolving this problem. Over the past several years, studies of numerous species of plants have shown that intraspecific variation in cpDNA is often sufficiently abundant to serve as a marker for studies of gene flow. Recent theoretical models have shown that estimates of population structure based on cpDNA polymorphism should be especially sensitive to the impact of seed movement on gene flow, because cpDNA is often maternally inherited.

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Since its introduction in 2001, MrBayes has grown in popularity as a software package for Bayesian phylogenetic inference using Markov chain Monte Carlo (MCMC) methods. With this note, we announce the release of version 3.2, a major upgrade to the latest official release presented in 2003. The new version provides convergence diagnostics and allows multiple analyses to be run in parallel with convergence progress monitored on the fly. The introduction of new proposals and automatic optimization of tuning parameters has improved convergence for many problems. The new version also sports significantly faster likelihood calculations through streaming single-instruction-multiple-data extensions (SSE) and support of the BEAGLE library, allowing likelihood calculations to be delegated to graphics processing units (GPUs) on compatible hardware. Speedup factors range from around 2 with SSE code to more than 50 with BEAGLE for codon problems. Checkpointing across all models allows long runs to be completed even when an analysis is prematurely terminated. New models include relaxed clocks, dating, model averaging across time-reversible substitution models, and support for hard, negative, and partial (backbone) tree constraints. Inference of species trees from gene trees is supported by full incorporation of the Bayesian estimation of species trees (BEST) algorithms. Marginal model likelihoods for Bayes factor tests can be estimated accurately across the entire model space using the stepping stone method. The new version provides more output options than previously, including samples of ancestral states, site rates, site d(N)/d(S) rations, branch rates, and node dates. A wide range of statistics on tree parameters can also be output for visualization in FigTree and compatible software.

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Although the chloroplast genome contains many noncoding regions, relatively few have been exploited for interspecific phylogenetic and intraspecific phylogeographic studies. In our recent evaluation of the phylogenetic utility of 21 noncoding chloroplast regions, we found the most widely used noncoding regions are among the least variable, but the more variable regions have rarely been employed. That study led us to conclude that there may be unexplored regions of the chloroplast genome that have even higher relative levels of variability. To explore the potential variability of previously unexplored regions, we compared three pairs of single-copy chloroplast genome sequences in three disparate angiosperm lineages: Atropa vs. Nicotiana (asterids); Lotus vs. Medicago (rosids); and Saccharum vs. Oryza (monocots). These three separate sequence alignments highlighted 13 mutational hotspots that may be more variable than the best regions of our former study. These 13 regions were then selected for a more detailed analysis. Here we show that nine of these newly explored regions (rpl32-trnL((UAG)), trnQ((UUG))-5'rps16, 3'trnV((UAC))-ndhC, ndhF-rpl32, psbD-trnT((GGU)), psbJ-petA, 3'rps16-5'trnK((UUU)), atpI-atpH, and petL-psbE) offer levels of variation better than the best regions identified in our earlier study and are therefore likely to be the best choices for molecular studies at low taxonomic levels.

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We announce the release of the fourth version of MEGA software, which expands on the existing facilities for editing DNA sequence data from autosequencers, mining Web-databases, performing automatic and manual sequence alignment, analyzing sequence alignments to estimate evolutionary distances, inferring phylogenetic trees, and testing evolutionary hypotheses. Version 4 includes a unique facility to generate captions, written in figure legend format, in order to provide natural language descriptions of the models and methods used in the analyses. This facility aims to promote a better understanding of the underlying assumptions used in analyses, and of the results generated. Another new feature is the Maximum Composite Likelihood (MCL) method for estimating evolutionary distances between all pairs of sequences simultaneously, with and without incorporating rate variation among sites and substitution pattern heterogeneities among lineages. This MCL method also can be used to estimate transition/transversion bias and nucleotide substitution pattern without knowledge of the phylogenetic tree. This new version is a native 32-bit Windows application with multi-threading and multi-user supports, and it is also available to run in a Linux desktop environment (via the Wine compatibility layer) and on Intel-based Macintosh computers under the Parallels program. The current version of MEGA is available free of charge at (http://www.megasoftware.net).

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新疆产药用植物黑果枸杞有性生殖产出差异的繁殖生态学研究
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... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

新疆产药用植物黑果枸杞有性生殖产出差异的繁殖生态学研究
1
2014

... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

新疆产药用植物黑果枸杞遗传多样性的ISSR分析
1
2013

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

新疆产药用植物黑果枸杞遗传多样性的ISSR分析
1
2013

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

Estimating mutation parameters, population history and genealogy simultaneously from temporally spaced sequence data
1
2002

... 选择与黑果枸杞近缘的茄科茄属龙葵(Solanum nigrum)作为外类群(Fukuda et al., 2001), 基于cpDNA序列组合(psbA-trnH + psbK-psbI + trnV), 利用软件Network 5.0基于中接法(median-joining)分析单倍型的网络关系.利用MEGA 7.0 (Tamura et al., 2007)基于Kimura-2参数模型和最大似然法构建单倍型的系统发育树.利用BEAST 1.7.4 (Ronquist et al., 2012), 构建单倍型的贝叶斯系统发育树.方法是: 利用ModelTest v3.7软件(Drummond et al., 2002)选取HKY碱基替换模型作为最优模型; 采用松弛分子钟, 其他各项参数的先验值均采用系统默认值; 利用Tracer v1.5计算贝叶斯因子(BF), 检查马尔科夫链蒙特卡洛(MCMC)的收敛, 在舍弃初始的10%的老化样本后, 检测有效样本量(ESS > 200); 独立运算2次, 每次运算1 000万代, 每1 000代抽样1次.基于合并后的样本, 利用BEAST程序包的Tree Annotator 1.7.4软件, 计算最大进化支可信性系统发育树. ...

Chloroplast simple sequence repeats (cpSSRs): technical resources and recommendations for expanding cpSSR discovery and applications to a wide array of plant species
1
2009

... AMOVA分析结果和种群间较高的遗传分化系数都表明黑果枸杞种群间以及两个种群组间存在显著的遗传分化(表3).叶绿体单倍型网络和PCoA分析均表明两个种群组间无共享单倍型, 具有显著的聚类关系(图2, 图3).柴达木盆地黑果枸杞种群表型性状的分析也表明格尔木、德令哈与诺木洪的种群呈现2组(刘桂英等, 2016).本研究中, 两个种群组相比, 诺木洪采样种群分布于荒漠盐土生境, 人类活动干扰较少, 黑果枸杞植株/灌丛长势较好.最大似然树和贝叶斯树均支持德令哈和格尔木的种群组与诺木洪的种群组之间显著的谱系分化(图3).但基于核DNA标记对柴达木黑果枸杞种群的遗传研究表明种群间遗传分化较低, 绝大多数的遗传变异来源于种群内(王锦楠等, 2015).这可能是因为叶绿体非编码区序列, 具有单亲遗传特点, 不仅在种间种内被频繁地检测到了较高的遗传变异(Ebert & Peakall, 2009), 还能显示出显著不同的地理分布和种群遗传分化(Flannery et al., 2006). ...

Arlequin suite ver 3.5: a new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows
1
2010

... 测序的cpDNA序列数据利用BioEdit 7.0进行多重比对、人工校对及序列编辑与拼接.利用DnaSP 6.0对psbA-trnH、psbK-psbI和trnV的拼接序列进行分析: 统计插入或缺失碱基的个数, 鉴别不同的单倍型序列, 并计算单倍型多样性(Hd)和核苷酸多样性(π).序列中的每一个插入或缺失都作为一个进化事件处理(Simmons & Ochoterena, 2000), 用于后面的单倍型网络分析、最大似然分析和贝叶斯分析.利用Permut (Pons & Petit, 1996)计算种群间总的遗传多样性(hT)、种群内平均遗传多样性(hS)和种群间遗传分化系数(GST)和碱基替换类型数(NST).利用U检验检测NSTGST的显著性, NST显著高于GST表明物种分布范围内存在显著的谱系地理结构(Pons & Petit, 1996).利用Arlequin 3.5分子方差分析(Excoffier & Lischer, 2010)计算自定义的组间和种群间的遗传变异来源, 估算遗传变异指数(FST, FCTFSC).为研究种群间的相似性与遗传结构, 利用R 3.6.2的“vegan”包(Peakall & Smouse, 2006), 基于cpDNA的成对遗传距离矩阵, 进行种群水平的主坐标分析(PCoA), 并利用“scatter plot 3d”包进行3D结果可视化.利用Alleles In Space (Miller, 2005)进行Mantel test分析, 检测种群间的遗传距离和地理距离之间的相关性. ...

Plastid genome characterisation in Brassica and Brassicaceae using a new set of nine SSRs
1
2006

... AMOVA分析结果和种群间较高的遗传分化系数都表明黑果枸杞种群间以及两个种群组间存在显著的遗传分化(表3).叶绿体单倍型网络和PCoA分析均表明两个种群组间无共享单倍型, 具有显著的聚类关系(图2, 图3).柴达木盆地黑果枸杞种群表型性状的分析也表明格尔木、德令哈与诺木洪的种群呈现2组(刘桂英等, 2016).本研究中, 两个种群组相比, 诺木洪采样种群分布于荒漠盐土生境, 人类活动干扰较少, 黑果枸杞植株/灌丛长势较好.最大似然树和贝叶斯树均支持德令哈和格尔木的种群组与诺木洪的种群组之间显著的谱系分化(图3).但基于核DNA标记对柴达木黑果枸杞种群的遗传研究表明种群间遗传分化较低, 绝大多数的遗传变异来源于种群内(王锦楠等, 2015).这可能是因为叶绿体非编码区序列, 具有单亲遗传特点, 不仅在种间种内被频繁地检测到了较高的遗传变异(Ebert & Peakall, 2009), 还能显示出显著不同的地理分布和种群遗传分化(Flannery et al., 2006). ...

Phylogeny and Biogeography of the Genus Lycium (Solanaceae): inferences from chloroplast DNA sequences
1
2001

... 选择与黑果枸杞近缘的茄科茄属龙葵(Solanum nigrum)作为外类群(Fukuda et al., 2001), 基于cpDNA序列组合(psbA-trnH + psbK-psbI + trnV), 利用软件Network 5.0基于中接法(median-joining)分析单倍型的网络关系.利用MEGA 7.0 (Tamura et al., 2007)基于Kimura-2参数模型和最大似然法构建单倍型的系统发育树.利用BEAST 1.7.4 (Ronquist et al., 2012), 构建单倍型的贝叶斯系统发育树.方法是: 利用ModelTest v3.7软件(Drummond et al., 2002)选取HKY碱基替换模型作为最优模型; 采用松弛分子钟, 其他各项参数的先验值均采用系统默认值; 利用Tracer v1.5计算贝叶斯因子(BF), 检查马尔科夫链蒙特卡洛(MCMC)的收敛, 在舍弃初始的10%的老化样本后, 检测有效样本量(ESS > 200); 独立运算2次, 每次运算1 000万代, 每1 000代抽样1次.基于合并后的样本, 利用BEAST程序包的Tree Annotator 1.7.4软件, 计算最大进化支可信性系统发育树. ...

荒漠黑果枸杞研究进展
1
2016

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

荒漠黑果枸杞研究进展
1
2016

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

新疆焉耆盆地黑果枸杞自然分布特点及其生物特性
2
2015

... 于2016-2018年, 在柴达木盆地黑果枸杞的自然分布范围内, 对该植物进行了全面的野外调查与采样.在柴达木盆地, 野生黑果枸杞仅集中分布于盆地腹部以格尔木市为中心, 半径200 km的区域范围内, 多分布于诺木洪、德令哈、格尔木等地的戈壁荒滩上(祁银燕等, 2018).本研究在德令哈、格尔木和诺木洪共采集了5个自然种群, 每个种群采集10-15份样品, 共采样60份, 覆盖了该植物在青海省柴达木盆地的自然分布范围(表1).野外采样过程中, 考虑到黑果枸杞存在克隆生长特性(何文革等, 2015), 每个种群所采集的个体至少间距20 m以上, 利用GPS定位经纬度和海拔.采样的5个野生黑果枸杞种群间的地理距离介于23-247 km之间, 德令哈红光村(DLH)与格尔木新乐村(GEM1)之间的地理间距最大(247 km), 诺木洪林业站(NMH1)与诺木洪田格力村(NMH2)的距离最小, 约为23 km.其中, 格尔木和德令哈采样的黑果枸杞种群片段化分布于市郊的公路边、乡村房前屋后和小路旁, 种群个体较少, 分布的间隔区较大; 诺木洪农场和林业站附近的两个种群的个体数相对较多, 受人类活动干扰较少.采集新鲜、幼嫩、无病斑的叶片, 就地用硅胶迅速干燥保存于自封袋, 带回实验室后置于-20 ℃冷藏. ...

... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

新疆焉耆盆地黑果枸杞自然分布特点及其生物特性
2
2015

... 于2016-2018年, 在柴达木盆地黑果枸杞的自然分布范围内, 对该植物进行了全面的野外调查与采样.在柴达木盆地, 野生黑果枸杞仅集中分布于盆地腹部以格尔木市为中心, 半径200 km的区域范围内, 多分布于诺木洪、德令哈、格尔木等地的戈壁荒滩上(祁银燕等, 2018).本研究在德令哈、格尔木和诺木洪共采集了5个自然种群, 每个种群采集10-15份样品, 共采样60份, 覆盖了该植物在青海省柴达木盆地的自然分布范围(表1).野外采样过程中, 考虑到黑果枸杞存在克隆生长特性(何文革等, 2015), 每个种群所采集的个体至少间距20 m以上, 利用GPS定位经纬度和海拔.采样的5个野生黑果枸杞种群间的地理距离介于23-247 km之间, 德令哈红光村(DLH)与格尔木新乐村(GEM1)之间的地理间距最大(247 km), 诺木洪林业站(NMH1)与诺木洪田格力村(NMH2)的距离最小, 约为23 km.其中, 格尔木和德令哈采样的黑果枸杞种群片段化分布于市郊的公路边、乡村房前屋后和小路旁, 种群个体较少, 分布的间隔区较大; 诺木洪农场和林业站附近的两个种群的个体数相对较多, 受人类活动干扰较少.采集新鲜、幼嫩、无病斑的叶片, 就地用硅胶迅速干燥保存于自封袋, 带回实验室后置于-20 ℃冷藏. ...

... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

1
1978

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

1
1978

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

柴达木盆地野生黑果枸杞的表型多样性
4
2016

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

... ; 刘桂英等, 2016). ...

... AMOVA分析结果和种群间较高的遗传分化系数都表明黑果枸杞种群间以及两个种群组间存在显著的遗传分化(表3).叶绿体单倍型网络和PCoA分析均表明两个种群组间无共享单倍型, 具有显著的聚类关系(图2, 图3).柴达木盆地黑果枸杞种群表型性状的分析也表明格尔木、德令哈与诺木洪的种群呈现2组(刘桂英等, 2016).本研究中, 两个种群组相比, 诺木洪采样种群分布于荒漠盐土生境, 人类活动干扰较少, 黑果枸杞植株/灌丛长势较好.最大似然树和贝叶斯树均支持德令哈和格尔木的种群组与诺木洪的种群组之间显著的谱系分化(图3).但基于核DNA标记对柴达木黑果枸杞种群的遗传研究表明种群间遗传分化较低, 绝大多数的遗传变异来源于种群内(王锦楠等, 2015).这可能是因为叶绿体非编码区序列, 具有单亲遗传特点, 不仅在种间种内被频繁地检测到了较高的遗传变异(Ebert & Peakall, 2009), 还能显示出显著不同的地理分布和种群遗传分化(Flannery et al., 2006). ...

... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

柴达木盆地野生黑果枸杞的表型多样性
4
2016

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

... ; 刘桂英等, 2016). ...

... AMOVA分析结果和种群间较高的遗传分化系数都表明黑果枸杞种群间以及两个种群组间存在显著的遗传分化(表3).叶绿体单倍型网络和PCoA分析均表明两个种群组间无共享单倍型, 具有显著的聚类关系(图2, 图3).柴达木盆地黑果枸杞种群表型性状的分析也表明格尔木、德令哈与诺木洪的种群呈现2组(刘桂英等, 2016).本研究中, 两个种群组相比, 诺木洪采样种群分布于荒漠盐土生境, 人类活动干扰较少, 黑果枸杞植株/灌丛长势较好.最大似然树和贝叶斯树均支持德令哈和格尔木的种群组与诺木洪的种群组之间显著的谱系分化(图3).但基于核DNA标记对柴达木黑果枸杞种群的遗传研究表明种群间遗传分化较低, 绝大多数的遗传变异来源于种群内(王锦楠等, 2015).这可能是因为叶绿体非编码区序列, 具有单亲遗传特点, 不仅在种间种内被频繁地检测到了较高的遗传变异(Ebert & Peakall, 2009), 还能显示出显著不同的地理分布和种群遗传分化(Flannery et al., 2006). ...

... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

不同的生长调节剂对黑果枸杞硬枝扦插育苗的影响
1
2011

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

不同的生长调节剂对黑果枸杞硬枝扦插育苗的影响
1
2011

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

1
1996

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

1
1996

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

黑果枸杞资源调查及其原花青素含量差异分析
1
2018

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

黑果枸杞资源调查及其原花青素含量差异分析
1
2018

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

Genetic diversity of the endangered and medically important Lycium ruthenicum Murr. revealed by sequence-related amplified polymorphism (SRAP) markers
2
2012

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

Genetic structure of the endangered, relict shrub Amygdalus mongolica(Rosaceae) in arid Northwest China
1
2019

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

The use of chloroplast DNA polymorphism in studies of gene flow in plants
1
1995

... 叶绿体基因组(cpDNA)可有效检测植物物种的遗传变异、评估种子迁移对总基因流的贡献、重建有价值的系统发生格局(McCauley, 1995), 被广泛应用于植物系统分类与进化、种群遗传学、生物系统地理学等研究领域.本研究利用已筛选的3对多态性较高的叶绿体DNA序列(psbA-trnH、psbK-psbI和trnV), 整合利用多种群体遗传学分析方法, 对柴达木盆地黑果枸杞自然分布范围内的5个种群共60个个体进行遗传研究.旨在解决以下科学问题: 1)基于叶绿体序列变异的柴达木盆地黑果枸杞种群间和种群内的遗传变异分布; 2)黑果枸杞的空间遗传结构和单倍型的进化关系; 3)柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传保护对策与建议. ...

Alleles in space (AIS): computer software for the joint analysis of interindividual spatial and genetic information
1
2005

... 测序的cpDNA序列数据利用BioEdit 7.0进行多重比对、人工校对及序列编辑与拼接.利用DnaSP 6.0对psbA-trnH、psbK-psbI和trnV的拼接序列进行分析: 统计插入或缺失碱基的个数, 鉴别不同的单倍型序列, 并计算单倍型多样性(Hd)和核苷酸多样性(π).序列中的每一个插入或缺失都作为一个进化事件处理(Simmons & Ochoterena, 2000), 用于后面的单倍型网络分析、最大似然分析和贝叶斯分析.利用Permut (Pons & Petit, 1996)计算种群间总的遗传多样性(hT)、种群内平均遗传多样性(hS)和种群间遗传分化系数(GST)和碱基替换类型数(NST).利用U检验检测NSTGST的显著性, NST显著高于GST表明物种分布范围内存在显著的谱系地理结构(Pons & Petit, 1996).利用Arlequin 3.5分子方差分析(Excoffier & Lischer, 2010)计算自定义的组间和种群间的遗传变异来源, 估算遗传变异指数(FST, FCTFSC).为研究种群间的相似性与遗传结构, 利用R 3.6.2的“vegan”包(Peakall & Smouse, 2006), 基于cpDNA的成对遗传距离矩阵, 进行种群水平的主坐标分析(PCoA), 并利用“scatter plot 3d”包进行3D结果可视化.利用Alleles In Space (Miller, 2005)进行Mantel test分析, 检测种群间的遗传距离和地理距离之间的相关性. ...

Genalex 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research
1
2006

... 测序的cpDNA序列数据利用BioEdit 7.0进行多重比对、人工校对及序列编辑与拼接.利用DnaSP 6.0对psbA-trnH、psbK-psbI和trnV的拼接序列进行分析: 统计插入或缺失碱基的个数, 鉴别不同的单倍型序列, 并计算单倍型多样性(Hd)和核苷酸多样性(π).序列中的每一个插入或缺失都作为一个进化事件处理(Simmons & Ochoterena, 2000), 用于后面的单倍型网络分析、最大似然分析和贝叶斯分析.利用Permut (Pons & Petit, 1996)计算种群间总的遗传多样性(hT)、种群内平均遗传多样性(hS)和种群间遗传分化系数(GST)和碱基替换类型数(NST).利用U检验检测NSTGST的显著性, NST显著高于GST表明物种分布范围内存在显著的谱系地理结构(Pons & Petit, 1996).利用Arlequin 3.5分子方差分析(Excoffier & Lischer, 2010)计算自定义的组间和种群间的遗传变异来源, 估算遗传变异指数(FST, FCTFSC).为研究种群间的相似性与遗传结构, 利用R 3.6.2的“vegan”包(Peakall & Smouse, 2006), 基于cpDNA的成对遗传距离矩阵, 进行种群水平的主坐标分析(PCoA), 并利用“scatter plot 3d”包进行3D结果可视化.利用Alleles In Space (Miller, 2005)进行Mantel test分析, 检测种群间的遗传距离和地理距离之间的相关性. ...

Measuring and testing genetic differentiation with ordered versus unordered alleles
2
1996

... 测序的cpDNA序列数据利用BioEdit 7.0进行多重比对、人工校对及序列编辑与拼接.利用DnaSP 6.0对psbA-trnH、psbK-psbI和trnV的拼接序列进行分析: 统计插入或缺失碱基的个数, 鉴别不同的单倍型序列, 并计算单倍型多样性(Hd)和核苷酸多样性(π).序列中的每一个插入或缺失都作为一个进化事件处理(Simmons & Ochoterena, 2000), 用于后面的单倍型网络分析、最大似然分析和贝叶斯分析.利用Permut (Pons & Petit, 1996)计算种群间总的遗传多样性(hT)、种群内平均遗传多样性(hS)和种群间遗传分化系数(GST)和碱基替换类型数(NST).利用U检验检测NSTGST的显著性, NST显著高于GST表明物种分布范围内存在显著的谱系地理结构(Pons & Petit, 1996).利用Arlequin 3.5分子方差分析(Excoffier & Lischer, 2010)计算自定义的组间和种群间的遗传变异来源, 估算遗传变异指数(FST, FCTFSC).为研究种群间的相似性与遗传结构, 利用R 3.6.2的“vegan”包(Peakall & Smouse, 2006), 基于cpDNA的成对遗传距离矩阵, 进行种群水平的主坐标分析(PCoA), 并利用“scatter plot 3d”包进行3D结果可视化.利用Alleles In Space (Miller, 2005)进行Mantel test分析, 检测种群间的遗传距离和地理距离之间的相关性. ...

... 表明物种分布范围内存在显著的谱系地理结构(Pons & Petit, 1996).利用Arlequin 3.5分子方差分析(Excoffier & Lischer, 2010)计算自定义的组间和种群间的遗传变异来源, 估算遗传变异指数(FST, FCTFSC).为研究种群间的相似性与遗传结构, 利用R 3.6.2的“vegan”包(Peakall & Smouse, 2006), 基于cpDNA的成对遗传距离矩阵, 进行种群水平的主坐标分析(PCoA), 并利用“scatter plot 3d”包进行3D结果可视化.利用Alleles In Space (Miller, 2005)进行Mantel test分析, 检测种群间的遗传距离和地理距离之间的相关性. ...

青海省野生黑果枸杞种质资源调查
2
2018

... 于2016-2018年, 在柴达木盆地黑果枸杞的自然分布范围内, 对该植物进行了全面的野外调查与采样.在柴达木盆地, 野生黑果枸杞仅集中分布于盆地腹部以格尔木市为中心, 半径200 km的区域范围内, 多分布于诺木洪、德令哈、格尔木等地的戈壁荒滩上(祁银燕等, 2018).本研究在德令哈、格尔木和诺木洪共采集了5个自然种群, 每个种群采集10-15份样品, 共采样60份, 覆盖了该植物在青海省柴达木盆地的自然分布范围(表1).野外采样过程中, 考虑到黑果枸杞存在克隆生长特性(何文革等, 2015), 每个种群所采集的个体至少间距20 m以上, 利用GPS定位经纬度和海拔.采样的5个野生黑果枸杞种群间的地理距离介于23-247 km之间, 德令哈红光村(DLH)与格尔木新乐村(GEM1)之间的地理间距最大(247 km), 诺木洪林业站(NMH1)与诺木洪田格力村(NMH2)的距离最小, 约为23 km.其中, 格尔木和德令哈采样的黑果枸杞种群片段化分布于市郊的公路边、乡村房前屋后和小路旁, 种群个体较少, 分布的间隔区较大; 诺木洪农场和林业站附近的两个种群的个体数相对较多, 受人类活动干扰较少.采集新鲜、幼嫩、无病斑的叶片, 就地用硅胶迅速干燥保存于自封袋, 带回实验室后置于-20 ℃冷藏. ...

... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

青海省野生黑果枸杞种质资源调查
2
2018

... 于2016-2018年, 在柴达木盆地黑果枸杞的自然分布范围内, 对该植物进行了全面的野外调查与采样.在柴达木盆地, 野生黑果枸杞仅集中分布于盆地腹部以格尔木市为中心, 半径200 km的区域范围内, 多分布于诺木洪、德令哈、格尔木等地的戈壁荒滩上(祁银燕等, 2018).本研究在德令哈、格尔木和诺木洪共采集了5个自然种群, 每个种群采集10-15份样品, 共采样60份, 覆盖了该植物在青海省柴达木盆地的自然分布范围(表1).野外采样过程中, 考虑到黑果枸杞存在克隆生长特性(何文革等, 2015), 每个种群所采集的个体至少间距20 m以上, 利用GPS定位经纬度和海拔.采样的5个野生黑果枸杞种群间的地理距离介于23-247 km之间, 德令哈红光村(DLH)与格尔木新乐村(GEM1)之间的地理间距最大(247 km), 诺木洪林业站(NMH1)与诺木洪田格力村(NMH2)的距离最小, 约为23 km.其中, 格尔木和德令哈采样的黑果枸杞种群片段化分布于市郊的公路边、乡村房前屋后和小路旁, 种群个体较少, 分布的间隔区较大; 诺木洪农场和林业站附近的两个种群的个体数相对较多, 受人类活动干扰较少.采集新鲜、幼嫩、无病斑的叶片, 就地用硅胶迅速干燥保存于自封袋, 带回实验室后置于-20 ℃冷藏. ...

... 本研究基于叶绿体变异检测了黑果枸杞受限的种子流对种群间显著遗传分化的贡献.柴达木盆地野生黑果枸杞的果实为浆果, 种子很小且轻, 主要依靠鸟类和噬齿动物进行传播.因受风沙侵扰, 沉积的沙石容易导致柱头污染和堵塞, 造成传粉质量降低, 加上分布区气候干旱、土壤盐渍化和人为活动干扰等, 野生黑果枸杞普遍具有较低的结实率 (刘桂英等, 2016; 祁银燕等, 2018).而且, 野生黑果枸杞的种皮较厚, 存在浆果层, 种子只有在强降雨后才能萌发, 而且萌芽期的抗旱性较弱, 幼苗成活率和成株率都较低(阿力同·其米克等, 2014; 何文革等, 2015).因此, 野生黑果枸杞较低的结实能力和种子萌发率都在很大程度上限制了种群间的种子流, 促进了种群间的遗传分化.另外, 根据野外调查, 格尔木和德令哈的采样种群分布生境严重片段化、破碎化.因此, 黑果枸杞的种群片段化, 分布的间隔区增大也进一步限制了种群间的基因交流, 加强了种群组间和种群间的遗传分化. ...

MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space
1
2012

... 选择与黑果枸杞近缘的茄科茄属龙葵(Solanum nigrum)作为外类群(Fukuda et al., 2001), 基于cpDNA序列组合(psbA-trnH + psbK-psbI + trnV), 利用软件Network 5.0基于中接法(median-joining)分析单倍型的网络关系.利用MEGA 7.0 (Tamura et al., 2007)基于Kimura-2参数模型和最大似然法构建单倍型的系统发育树.利用BEAST 1.7.4 (Ronquist et al., 2012), 构建单倍型的贝叶斯系统发育树.方法是: 利用ModelTest v3.7软件(Drummond et al., 2002)选取HKY碱基替换模型作为最优模型; 采用松弛分子钟, 其他各项参数的先验值均采用系统默认值; 利用Tracer v1.5计算贝叶斯因子(BF), 检查马尔科夫链蒙特卡洛(MCMC)的收敛, 在舍弃初始的10%的老化样本后, 检测有效样本量(ESS > 200); 独立运算2次, 每次运算1 000万代, 每1 000代抽样1次.基于合并后的样本, 利用BEAST程序包的Tree Annotator 1.7.4软件, 计算最大进化支可信性系统发育树. ...

Chloroplast DNA phylogeny, reticulate evolution, and biogeography of Paeonia(Paeoniaceae)
1
1997

... 总基因组DNA利用天根公司新型植物基因组提取试剂盒(DP320)进行提取.利用Thermo核酸检测仪(Nanodrop 2000/2000c, 北京博恒科创生物科技有限公司)测定DNA的浓度.选用所采集的部分代表样品进行cpDNA引物筛选, 选取多态性较高的3个区段psbA-trnH (Sang et al., 1997), psbK-psbI (Shaw et al., 2007)和trnV (Shaw et al., 2007)进行PCR扩增.PCR扩增反应体系25 μL, 反应程序: 94 ℃预变性5 min; 94 ℃变性1 min, 退火30 s (退火温度, psbA-trnH为56 ℃, psbK-psbI为50 ℃, trnV为54 ℃), 72 ℃延伸45 s, 35个循环; 72 ℃延伸 10 min.获得的PCR产物利用1%的琼脂糖进行凝胶电泳, EB染色观察.将扩增产物和测序引物送上海生物工程技术有限公司进行正反向测序, 测序引物同PCR扩增引物. ...

Gaps as characters in sequence-based phylogenetic analyses
1
2000

... 测序的cpDNA序列数据利用BioEdit 7.0进行多重比对、人工校对及序列编辑与拼接.利用DnaSP 6.0对psbA-trnH、psbK-psbI和trnV的拼接序列进行分析: 统计插入或缺失碱基的个数, 鉴别不同的单倍型序列, 并计算单倍型多样性(Hd)和核苷酸多样性(π).序列中的每一个插入或缺失都作为一个进化事件处理(Simmons & Ochoterena, 2000), 用于后面的单倍型网络分析、最大似然分析和贝叶斯分析.利用Permut (Pons & Petit, 1996)计算种群间总的遗传多样性(hT)、种群内平均遗传多样性(hS)和种群间遗传分化系数(GST)和碱基替换类型数(NST).利用U检验检测NSTGST的显著性, NST显著高于GST表明物种分布范围内存在显著的谱系地理结构(Pons & Petit, 1996).利用Arlequin 3.5分子方差分析(Excoffier & Lischer, 2010)计算自定义的组间和种群间的遗传变异来源, 估算遗传变异指数(FST, FCTFSC).为研究种群间的相似性与遗传结构, 利用R 3.6.2的“vegan”包(Peakall & Smouse, 2006), 基于cpDNA的成对遗传距离矩阵, 进行种群水平的主坐标分析(PCoA), 并利用“scatter plot 3d”包进行3D结果可视化.利用Alleles In Space (Miller, 2005)进行Mantel test分析, 检测种群间的遗传距离和地理距离之间的相关性. ...

Comparison of whole chloroplast genome sequences to choose noncoding regions for phylogenetic studies in angiosperms: the tortoise and the hare III
2
2007

... 总基因组DNA利用天根公司新型植物基因组提取试剂盒(DP320)进行提取.利用Thermo核酸检测仪(Nanodrop 2000/2000c, 北京博恒科创生物科技有限公司)测定DNA的浓度.选用所采集的部分代表样品进行cpDNA引物筛选, 选取多态性较高的3个区段psbA-trnH (Sang et al., 1997), psbK-psbI (Shaw et al., 2007)和trnV (Shaw et al., 2007)进行PCR扩增.PCR扩增反应体系25 μL, 反应程序: 94 ℃预变性5 min; 94 ℃变性1 min, 退火30 s (退火温度, psbA-trnH为56 ℃, psbK-psbI为50 ℃, trnV为54 ℃), 72 ℃延伸45 s, 35个循环; 72 ℃延伸 10 min.获得的PCR产物利用1%的琼脂糖进行凝胶电泳, EB染色观察.将扩增产物和测序引物送上海生物工程技术有限公司进行正反向测序, 测序引物同PCR扩增引物. ...

... V (Shaw et al., 2007)进行PCR扩增.PCR扩增反应体系25 μL, 反应程序: 94 ℃预变性5 min; 94 ℃变性1 min, 退火30 s (退火温度, psbA-trnH为56 ℃, psbK-psbI为50 ℃, trnV为54 ℃), 72 ℃延伸45 s, 35个循环; 72 ℃延伸 10 min.获得的PCR产物利用1%的琼脂糖进行凝胶电泳, EB染色观察.将扩增产物和测序引物送上海生物工程技术有限公司进行正反向测序, 测序引物同PCR扩增引物. ...

基于ITS和cpDNA序列的梭梭和白梭梭物种分化
1
2019

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

基于ITS和cpDNA序列的梭梭和白梭梭物种分化
1
2019

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

MEGA4: molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0
1
2007

... 选择与黑果枸杞近缘的茄科茄属龙葵(Solanum nigrum)作为外类群(Fukuda et al., 2001), 基于cpDNA序列组合(psbA-trnH + psbK-psbI + trnV), 利用软件Network 5.0基于中接法(median-joining)分析单倍型的网络关系.利用MEGA 7.0 (Tamura et al., 2007)基于Kimura-2参数模型和最大似然法构建单倍型的系统发育树.利用BEAST 1.7.4 (Ronquist et al., 2012), 构建单倍型的贝叶斯系统发育树.方法是: 利用ModelTest v3.7软件(Drummond et al., 2002)选取HKY碱基替换模型作为最优模型; 采用松弛分子钟, 其他各项参数的先验值均采用系统默认值; 利用Tracer v1.5计算贝叶斯因子(BF), 检查马尔科夫链蒙特卡洛(MCMC)的收敛, 在舍弃初始的10%的老化样本后, 检测有效样本量(ESS > 200); 独立运算2次, 每次运算1 000万代, 每1 000代抽样1次.基于合并后的样本, 利用BEAST程序包的Tree Annotator 1.7.4软件, 计算最大进化支可信性系统发育树. ...

青海省人民政府办公厅关于加强野生黑果枸杞资源管理工作的指导意见
1
2017

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

青海省人民政府办公厅关于加强野生黑果枸杞资源管理工作的指导意见
1
2017

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

柴达木地区野生黑果枸杞种群遗传多样性的AFLP分析
5
2015

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

... 基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

... ).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

... AMOVA分析结果和种群间较高的遗传分化系数都表明黑果枸杞种群间以及两个种群组间存在显著的遗传分化(表3).叶绿体单倍型网络和PCoA分析均表明两个种群组间无共享单倍型, 具有显著的聚类关系(图2, 图3).柴达木盆地黑果枸杞种群表型性状的分析也表明格尔木、德令哈与诺木洪的种群呈现2组(刘桂英等, 2016).本研究中, 两个种群组相比, 诺木洪采样种群分布于荒漠盐土生境, 人类活动干扰较少, 黑果枸杞植株/灌丛长势较好.最大似然树和贝叶斯树均支持德令哈和格尔木的种群组与诺木洪的种群组之间显著的谱系分化(图3).但基于核DNA标记对柴达木黑果枸杞种群的遗传研究表明种群间遗传分化较低, 绝大多数的遗传变异来源于种群内(王锦楠等, 2015).这可能是因为叶绿体非编码区序列, 具有单亲遗传特点, 不仅在种间种内被频繁地检测到了较高的遗传变异(Ebert & Peakall, 2009), 还能显示出显著不同的地理分布和种群遗传分化(Flannery et al., 2006). ...

柴达木地区野生黑果枸杞种群遗传多样性的AFLP分析
5
2015

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

... 基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

... 柴达木盆地黑果枸杞种群间总的遗传多样性(hT = 0.916)显著高于种群内遗传多样性(hS = 0.512).相关****基于核DNA标记对西北部分黑果枸杞种群及对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传多样性研究, 也表明该植物种群具有较高的遗传多样性水平(Liu et al., 2012; 王锦楠等, 2015).另外, 对柴达木盆地黑果枸杞种群开展的表型性状变异研究, 也表明该植物存在丰富的形态变异(刘桂英等, 2016).一方面, 黑果枸杞是丝绸之路盐碱地、荒漠地最具有开发价值的特色资源物种, 也是枸杞原生态区遗传多样性相对丰富的原始物种(郝媛媛等, 2016).另一方面, 采样区黑果枸杞的生境多样性较高, 包括湖泊盆地、冲积扇、河流沿岸、风积沙丘边缘和山间盐土平原, 环境的异质性利于遗传突变的产生和遗传变异的累积(Ma et al., 2019; 孙芳芳等, 2019).而且, 基于叶绿体序列变异还揭示出诺木洪组的两个种群表现出了相对较高的遗传多样性水平(表1).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

... ).这可能是由于诺木洪农场和林业站黑果枸杞种群的个体数相对较多, 受干扰较小, 利于遗传变异的产生与积累.诺木洪也被推测为柴达木地区野生黑果枸杞种质资源的中心分布区(王锦楠等, 2015; 刘桂英等, 2016). ...

... AMOVA分析结果和种群间较高的遗传分化系数都表明黑果枸杞种群间以及两个种群组间存在显著的遗传分化(表3).叶绿体单倍型网络和PCoA分析均表明两个种群组间无共享单倍型, 具有显著的聚类关系(图2, 图3).柴达木盆地黑果枸杞种群表型性状的分析也表明格尔木、德令哈与诺木洪的种群呈现2组(刘桂英等, 2016).本研究中, 两个种群组相比, 诺木洪采样种群分布于荒漠盐土生境, 人类活动干扰较少, 黑果枸杞植株/灌丛长势较好.最大似然树和贝叶斯树均支持德令哈和格尔木的种群组与诺木洪的种群组之间显著的谱系分化(图3).但基于核DNA标记对柴达木黑果枸杞种群的遗传研究表明种群间遗传分化较低, 绝大多数的遗传变异来源于种群内(王锦楠等, 2015).这可能是因为叶绿体非编码区序列, 具有单亲遗传特点, 不仅在种间种内被频繁地检测到了较高的遗传变异(Ebert & Peakall, 2009), 还能显示出显著不同的地理分布和种群遗传分化(Flannery et al., 2006). ...

柴达木盆地不同盐生境下黑果枸杞形态结构比较
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2015

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...

柴达木盆地不同盐生境下黑果枸杞形态结构比较
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2015

... 黑果枸杞(Lycium ruthenicum)隶属于茄科枸杞属(Lycium), 是多年生多棘刺灌木, 在我国主要分布于新疆、甘肃、青海、宁夏和西藏等地的干旱和半干旱的盐碱荒漠地、沙地、干河床或渠路旁(匡可任和路安民, 1978; 刘尚武, 1996).野生黑果枸杞为珍贵的药食同源植物, 具有水土保持和改良土壤盐碱化等重要生态作用(刘荣丽等, 2011).近年来, 人类活动干扰对野生黑果枸杞资源及其生境造成了严重破坏, 加上气候变化和生态环境恶化的影响, 导致野生黑果枸杞生境隔离和片段化, 种群分布面积逐渐缩小, 严重威胁了该植物的生存和生长(刘增根等, 2018).因此, 开展野生黑果枸杞的种群遗传多样性研究对该植物的有效保护具有重要的理论与现实意义.目前, 基于核DNA标记对西北干旱区部分野生黑果枸杞种群开展的遗传研究结果表明, 该植物具有较高的种群遗传多样性, 但种群间遗传分化较低(ISSR, 阿力同·其米克等, 2013; SRAP, Liu et al., 2012).王锦楠等(2015)基于AFLP分子标记对柴达木盆地黑果枸杞种群的遗传研究表明, 该地区野生黑果枸杞具有较高的遗传多样性, 但种群间聚类关系不明显.柴达木盆地(90.27°-99.27° E, 35.00°-39.33° N)被昆仑山、阿尔金山、祁连山等山脉环抱的荒漠区, 是野生黑果枸杞在青海省的主要分布区, 也是西北野生黑果枸杞的中心分布区(王锦楠等, 2015; 辛菊平和朱春云, 2015).为保护当地的野生黑果枸杞资源, 青海省已于2017年将黑果枸杞列入《青海省重点保护野生植物名录》(青海省人民政府办公厅, 2017).但是, 基于叶绿体DNA基因间隔区序列, 柴达木盆地野生黑果枸杞种群的遗传多样性水平、遗传分化、空间遗传结构、单倍型间的进化关系并不清楚, 成为深入理解该区黑果枸杞的分布、进化和保护的瓶颈. ...




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