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14-3-3蛋程中的互作靶蛋白鉴定及其对外源激素的响应

本站小编 Free考研考试/2021-12-26

张志兴,1,2, 敏秀梅1, 宋果1, 陈花1, 许海龙1, 林文雄,1,21福建农林大学生命科学学院,福州 350002
2福建农林大学/福建省农业生态过程与安全监控重点实验室,福州 350002

Identification of 14-3-3 Client Proteins in Rice Grains and Their Response to Exogenous Hormones During the Grain Filling Stage

ZHANG ZhiXing,1,2, MIN XiuMei1, SONG Guo1, CHEN Hua1, XU HaiLong1, LIN WenXiong,1,21College of Life Science, Fujian Agricultural & Forestry University, Fuzhou 350002
2Fujian Agriculture & Forestry University/ Fujian Provincial Key Laboratory of Agroecological Processing & Safety Monitoring, Fuzhou 350002

通讯作者: 林文雄,E-mail:wenxiong181@163.com

责任编辑: 杨鑫浩
收稿日期:2020-08-11接受日期:2021-01-5网络出版日期:2021-06-16
基金资助:国家自然科学基金.31871542
国家重点研发项目.2018YFD0301105


Received:2020-08-11Accepted:2021-01-5Online:2021-06-16
作者简介 About authors
张志兴,E-mail:zhangzhixingfz@163.com








摘要
【目的】籽粒灌浆对水稻产量及品质的形成至关重要。14-3-3蛋白是一种信号转导调节因子,在植物生长发育中发挥着重要调控作用。本研究通过分析14-3-3蛋白家族在籽粒灌浆过程中的基因表达模式及其互作靶蛋白,从而揭示其在籽粒灌浆过程中的功能。【方法】利用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)技术分析水稻14-3-3基因家族在籽粒灌浆过程中的表达变化模式,并从中选取GF14bGF14e进行后续的蛋白功能分析。利用KEGG数据库对GF14b及GF14e蛋白功能motif位点进行分析;构建GST-GF14b及GST-GF14e表达载体,利用亲和层析技术分别钓取籽粒中与GF14b及GF14e互作的靶蛋白,并借助LC-MS/MS对靶蛋白进行鉴定。采用GST pull-down方法验证靶蛋白与GF14b及GF14e间的蛋白互作关系。利用Kinasephos在线程序对靶蛋白的Ser和Thr磷酸化位点进行预测;采用MapMan 3.6.0软件对靶蛋白的功能及参与的代谢过程进行分析。在籽粒灌浆期(花后15 d),分别喷施25×10-6mol·L-1 ABA,10×10-6mol·L-1 IAA,100×10-6mol·L-1 GA,50×10-6mol·L-1 ZR和 2×10-4mol·L-1 BR,研究外源激素处理对籽粒灌浆过程中GF14b,GF14e及其互作靶基因表达的影响。【结果】14-3-3家族基因中,除GF14h外,其余7个家族成员在水稻籽粒中均有表达,其中GF14bGF14e在籽粒灌浆过程中的表达水平较高且变化幅度较大。通过蛋白序列分析发现,GF14b与GF14e间具有3个相同,2个差异的motif功能位点。通过亲和层析试验,在籽粒中共鉴定到59个与GF14b和72个与GF14e互作的靶蛋白,其中有43个靶蛋白与2个成员均有互作,分别有16个和29个靶蛋白与GF14b和GF14e特异结合。随机选取2个靶蛋白进行体外蛋白互作验证,结果表明靶蛋白SUS3与GF14b和GF14e均存在互作关系,而靶蛋白PSA仅与GF14e有相互作用关系,验证了亲和层析结果的准确性。蛋白功能的分析表明,GF14b和GF14e通过与靶蛋白的结合,共同参与了籽粒灌浆过程中蔗糖转化、淀粉合成、糖酵解、TCA循环等碳代谢途径。同时,GF14b及GF14e还具有特异的调控功能,其中GF14b与核酸代谢及物质转运密切相关,而GF14e与C1代谢中的关键蛋白存在互作。此外,大部分靶蛋白均鉴定到具有潜在的Ser和Thr磷酸化位点。外源激素处理下,籽粒中GF14bGF14e上调表达,而与淀粉合成代谢相关的靶基因(SUS2、 AGPS、AGPLPPDK2、SBE)大部分呈下调表达的趋势。【结论】14-3-3基因家族成员GF14bGF14e在水稻籽粒灌浆过程中的表达变化幅度较大,且会响应激素浓度的改变,并通过蛋白互作的形式负调控淀粉合成代谢相关基因的表达,从而对水稻籽粒淀粉的合成起到重要的调控作用。
关键词: 水稻;籽粒灌浆;14-3-3蛋白;蛋白互作;激素

Abstract
【Objective】Grain yield and quality of rice mainly depend on grain filling. The family of 14-3-3 proteins is the important regulator of signaling in plant, and plays an important role in plant growth and development. This study was performed to assess the gene expression pattern and to identify client proteins, which would result in important information toward understanding the functional mechanism of 14-3-3 protein during rice grain filling. 【Method】 The expression pattern of each 14-3-3 genes at different grain filling stages were examined by the Real-time RT-PCR (qRT-PCR), and the family members GF14b and GF14e were used for subsequent functional analysis. The function motif of GF14b and GF14e protein were analyzed by using the KEGG database. The amplified open reading frames of GF14b and GF14e were cloned into the PGEX-6P-1 expression vector for production of the N-terminal-tagged fusion proteins GST-GF14b and GST-GF14e. The client proteins of GF14b and GF14e were captured with the affinity chromatography approach and identified by the LC-MS/MS. The protein interaction between client proteins and GF14b and GF14e were validated by the GST Pull-down in vitro. Phosphorylation sites and functions of all client proteins were analyzed using the KinasePhos online website and MapMan software (Version 3.60), respectively. The exogenous hormones (25×10 -6mol·L-1 ABA,10×10-6mol·L-1 IAA,100×10-6mol·L-1 GA,50×10-6mol·L-1 ZR and 2×10-4mol·L-1 BR ) were sprayed on rice grains at 15 days after flowering to investigate the effects of exogenous hormones treatment on the expression of GF14b, GF14e and their interacting genes. 【Result】 Except for the GF14h, the remaining seven 14-3-3 family genes were expressed in rice grains, and the expression of GF14b and GF14e was high and highly variable during grain filling. Two same protein motifs and three differential motifs between GF14b and GF14e were identified with the protein sequence analysis. In total, 59 GF14b- and 72 GF14e-client proteins in rice grains were captured by affinity chromatography on a glutathione-agarose affinity column. Two randomly selected proteins from these client proteins, namely SUS3 and PSA, were further validated by GST Pull-down in vitro, and the results showed that the SUS3 interacted with GF14b and GF14e, whereas PSA specially interacted with GF14e, which confirmed the accuracy of the affinity chromatography assay. Among these client proteins, fourth-three were commonly affinity-identified by the GF14b and GF14e and were predicted to be implicated in the sucrose conversion, starch synthesis, glycolysis and TCA cycle. Meanwhile, it was found GF14b specifically bounded to the nucleotide metabolism and transporters, whilst GF14e tended to interact with the proteins involving C1 metabolism. In addition, most of the identified client proteins possess the phosphorylation sites of Ser or Thr. The present results also showed that the expression of GF14b and GF14e were up-regulated and most of the starch synthesis-related interacting genes (SUS2, AGPS, AGPL, PPDK2, SBE) were down-regulated after exogenous hormones treatment. 【Conclusion】 The magnitude of change in gene expression was greater in GF14b and GF14e than the other 14-3-3 gene family members during grain filling. The GF14b and GF14e could respond the change of hormones concentration and act as a regulator to negatively regulate the expression of starch synthesis related genes through protein-protein interaction, in turn, play an important role in starch synthesis during the grain filling stage.
Keywords:rice;grain filling;14-3-3 protein;protein-protein interactions;hormone


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本文引用格式
张志兴, 敏秀梅, 宋果, 陈花, 许海龙, 林文雄. 14-3-3蛋程中的互作靶蛋白鉴定及其对外源激素的响应[J]. 中国农业科学, 2021, 54(12): 2523-2537 doi:10.3864/j.issn.0578-1752.2021.12.004
ZHANG ZhiXing, MIN XiuMei, SONG Guo, CHEN Hua, XU HaiLong, LIN WenXiong. Identification of 14-3-3 Client Proteins in Rice Grains and Their Response to Exogenous Hormones During the Grain Filling Stage[J]. Scientia Acricultura Sinica, 2021, 54(12): 2523-2537 doi:10.3864/j.issn.0578-1752.2021.12.004


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0 引言

【研究意义】14-3-3蛋白是植物中普遍存在的一类对生长发育及环境响应起重要作用的调节蛋白[1],探明14-3-3蛋白在水稻籽粒灌浆过程中的时空表达模式及功能,对揭示14-3-3蛋白调控水稻产量与品质的形成具有重要意义。【前人研究进展】14-3-3蛋白主要以同源或异源二聚体形式存在,可以同时与2个靶蛋白或者与1个靶蛋白的2个结构域相互作用,通过与靶蛋白上一小段共有序列的磷酸化丝氨/苏氨酸残基结合来发挥其调控功能,其主要结合模式有RSXpSXP(I型),RXXXpSXP(II型)和pS/TX-COOH(III型),其中pS和pT分别代表Ser和Thr[2]。14-3-3蛋白通过上述3种磷酸化结合模式与其靶蛋白互作,保证了14-3-3蛋白在生物体中的重要调节功能。在植物中,借助亲和层析和酵母双杂交等方法,已鉴定到300多种与14-3-3蛋白互作的靶蛋白,涉及植物体内多种激素信号转导途径和代谢过程[3,4]。例如,14-3-3蛋白作为一个接头因子能够将ABA效应因子VP1(viviparous 1)与受ABA诱导的顺式作用元件ABRE(ABA-responsive element)联系起来,共同调控下游ABA应答基因的表达[5]。14-3-3蛋白通过与转录因子BZR(BRASSINAZOLE-RESISTANT)的相互作用,在植物体内BR信号通路中起到负调控作用[6]。酵母双杂交系统证实水稻14-3-3蛋白能够和参与乙烯合成的ACC合成酶(1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase)互作[7]。在模式植物拟南芥中的研究表明,超表达14-3-3蛋白,会显著抑制TCA循环及糖酵解途径中关键酶的活性,从而导致植株糖及含氮化合物含量下降[8]。在鉴定到的14-3-3靶蛋白中,有很大一部分是与植物淀粉合成代谢相关的,例如蔗糖合成酶(SuS),淀粉合成酶I(SSI)、淀粉合成酶II (SSII),淀粉分支酶同工酶(SBEIIa、SBEIIb)及ADP焦磷酸化酶大亚基(AGPL)等 [9,10,11]。由此可见,14-3-3蛋白在植物激素信号转导及碳代谢中发挥着重要的作用。众所周知,淀粉合成是籽粒灌浆过程中最重要的代谢途径之一,在这过程中腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase)、淀粉合成酶(StS),SuS和淀粉分支酶(SBE)及淀粉去分支酶(DBE)等基因的表达变化及酶活性的高低对淀粉合成具有重要的影响[12,13]。此外,植物内源激素在籽粒的库容及千粒重的形成过程中起到了重要的调节作用。已有研究表明,籽粒中ABA/IAA、ABA/ GA1+3和ABA/(IAA+GA1+3+ ZRS+ABA)的比值与籽粒的灌浆充实密切相关[14]。ZHANG[15]及YANG等[16]研究表明灌浆期适度干旱胁迫能改变籽粒中ABA的含量,进而提高SuS、AGPase、StS及SBE的活性。一些****认为籽粒中较高浓度的GA会降低StS和SuS的活性,进而导致结实率和产量显著下降[17]。已如上述,植物14-3-3蛋白会通过与其互作靶蛋白结合,进而参与多种激素信号转导及淀粉合成过程。例如,水稻籽粒14-3-3蛋白会响应外源ABA处理而出现显著的蛋白表达及磷酸化修饰的变化,暗示着14-3-3蛋白参与了ABA调控籽粒灌浆的过程[18]。此外,笔者还发现14-3-3蛋白成员GF14f在弱势籽粒灌浆过程中蛋白表达量相对强势籽粒较大,是导致弱势籽粒灌浆结实差的一个重要的原因[19]。YOU等[20]发现移除穗顶端的强势籽粒后,底端的弱势籽粒中淀粉合成关键酶活性、千粒重及结实率显著得到提高,并进一步通过差异蛋白组学分析,发现弱势籽粒中14-3-3蛋白的表达量显著下降。可见,水稻14-3-3蛋白家族在籽粒灌浆过程中发挥着重要的作用。【本研究切入点】水稻籽粒灌浆完成情况对产量及品质的形成至关重要。目前为止,在水稻中共鉴定到8个14-3-3蛋白家族成员(命名为GF14a-h)[21,22,23],但对其在籽粒灌浆过程中的表达变化模式及其调控机制仍缺乏系统的分析。【拟解决的关键问题】本研究拟运用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析14-3-3基因家族在水稻籽粒灌浆不同时期的表达变化模式,并采用亲和层析技术鉴定籽粒中与14-3-3蛋白互作的靶蛋白,在此基础上,通过籽粒灌浆期外源激素的处理,探明14-3-3及其互作靶基因在籽粒灌浆过程中对激素调控的响应,以期揭示14-3-3蛋白在水稻籽粒灌浆过程中的调控机制。

1 材料与方法

1.1 试验材料

选用大穗型常规水稻“金恢809”为试验材料,于2014年在福建农林大学(福建省福州市)的校内农场进行,采用桶栽土培的方法进行水稻的种植。水稻种子通过多菌灵灭菌清洗后,置于30℃恒温培养箱,保持其湿润状态。3月20日播种,采用旱育方式育秧,4月20日移栽至塑料桶(40 cm×40 cm)中,每桶移栽3株,单本插。桶栽所用的土壤取自大田水稻土,移栽水稻后的塑料桶放置于顶部覆盖有塑料薄膜的网室内。在水稻全生育期每桶施尿素3.9 g,磷酸钙6.56 g,氯化钾2.1 g,其中60%尿素,50%氯化钾和100%磷酸钙作为基肥,40%尿素和50%氯化钾作为穗肥施用,其他栽培措施与常规的水稻栽培一致。在水稻抽穗开花期,选取长势一致、同一天开花抽穗的主穗进行挂牌标记,在花后5—30 d,每隔5 d收集籽粒样品,液氮速冻后保存于-80℃冰箱中。在水稻花后15 d,分别对籽粒进行外源激素喷施处理,激素浓度的设置参照YAO[22],YANG[24],ZHANG[25]及李赞堂[26]等的研究报道,分别为25×10-6 mol·L-1ABA,10×10-6 mol·L-1 IAA,100×10-6 mol·L-1 GA,50×10-6 mol·L-1 ZR 和 2×10-4 mol·L-1 BR,在喷施激素3 h后,收集籽粒样品用于qRT-PCR分析。

1.2 主要试剂

大肠杆菌BL21和原核表达载体PGEX-6P-1,由笔者实验室保存提供。Trans1-T1 Phage Resistant Chemically Competent Cell感受态细胞购自北京全式金生物技术有限公司,基因克隆载体pMD18-T Vector购自TaKaRa公司。植物激素脱落酸(ABA)、赤霉素(GA)、油菜素内酯(BR)和吲哚乙酸(IAA)购自Sigma公司;玉米素(ZT)购自Aladdin公司。总RNA提取试剂Trizol购自TaKaRa公司;cDNA合成试剂盒TIANscript RT Kit、qRT-PCR试剂SuperReal PreMix Plus(SYBR Green)和质粒提取试剂盒购自TIANGEN公司;蛋白亲和吸附基质Glutathione SepharoseTM 4B及 Ni-Sepharose 6 Fast flow购自GE公司。

1.3 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析

选取灌浆不同时期的水稻籽粒,去壳后,采用Trizol法提取总RNA,cDNA第一条链合成按照TIANGEN公司TIANscript RT Kit试剂盒提供的操作步骤进行。依据NCBI数据库检索得到的8个水稻14-3-3基因的编码序列,利用Primer Premier 5.0设计相应的qRT-PCR引物,如表1所示。qRT-PCR采用TIANGEN公司SuperReal PreMix Plus(SYBR Green)试剂盒进行。β-actin作为内参,基因的相对表达量采用2- ΔΔCt的方法进行计算。

Table 1
表1
表1试验中用到的qRT-PCR和PCR的引物
Table 1qRT-PCR and PCR primers used in this study
基因
Gene
Accession No.正向引物序列
Forward primer sequence (5′-3′)
反向引物序列
Reverse primer sequence (5′-3′)
Primer for qRT-PCR
GF14aLOC_Os08g37490AGCCATGAAGGAGCTGTCGCGCTCATCCTCAGGCTTGGTT
GF14bLOC_Os04g38870GCTTGAATCCCACCTTGTCAATGTCCTGAGCAGCCTTG
GF14cLOC_Os08g33370CGTTTGACGAAGCCATCTCCCTAGTAGAACAGGAGAAGAATC
GF14dLOC_Os11g34450TGCTCTCGCAGATTTGGCTCATCCCCAGGCTCTTTTGGAG
GF14eLOC_Os02g36974GATATTGCCCTGGCAGAGTTGGAGATATCGGAAGTCCACAGC
GF14fLOC_Os03g50290AGCAGCTGAGAACACTCTTGCAGCAATAGCATCGTCGAAC
GF14gLOC_Os01g11110AGCGACGACCTCGTCTACATTGACTCTCCTTGCCCTTTGT
GF14hLOC_Os11g39540TTATGGCCTATCAGGCTTGGTTCTCCTTCAGGAGCTGCAT
AGPSLOC_Os08g25734TTACTGGGAAGACATTGGTACCCTCCCATGAGTAATGAGTCCTC
AGPLLOC_Os01g44220GGAAAGATTGAATATTGGGGGCTCAGAGGAAAGAGTTGAACTCC
SBELOC_Os02g32660GATCAGTATGAAGGAGGACTGGACCTACTAATGCTGCAGAATGT
SUS2LOC_Os06g09450GGAGAAAACCAAATACCCCAACCAGTGTGATTCATGGCGATAAG
PPDK2LOC_Os03g31750CTAGCGGAATTCTTCTCGTTTGCAAATGCCCACCTCTAAATCAG
β-actinLOC_4333919CTGCGGGTATCCATGAGACTGCAATGCCAGGGAACATAGT
Primer for PCR
GF14bLOC_Os04g38870TTTTTTGGATTCATGTCGGCACAGGCGGAGCTTTCCTATATATACTCGAGCTGCCCCTCGCTGGAGTCGCGCTT
GF14eLOC_Os02g36974TTTCGAATTCATGTCGCAGCCTGCTGAGCTTTCCCTTTCTCGAGCTGTCCATCTCCTGATTCGCCCTTGT
SUS3LOC_Os07g42490TCCGAATTCATGGGGGAAACTACTGGAGAACGTGCTTTTCTCGAGTTTGGTGGAGGCCTCTCCCTCAATG
PSALOC_Os02g12650GGGGGGGAATTCATGCATGGCTTCTACAGAAGTGTGGAGCTCGAGGTGGTCGTGAGAAATTTCCTTGAGGAC

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1.4 亲和层析分析

以水稻籽粒cDNA为模板,按表1中的引物序列,扩增GF14bGF14e的开放阅读框(ORF),并克隆到表达载体PGEX-6P-1中,构建GST-GF14b及GST-GF14e融合蛋白表达载体。之后,将重组质粒转化大肠杆菌BL21,IPTG诱导蛋白表达,菌体超声破碎后,离心,将上清液转入Glutathione SepharoseTM 4B吸附柱中,加入15倍柱床体积的PBS缓冲液洗涤柱子,还原型谷胱甘肽洗脱液洗脱后,采用SDS-PAGE检测融合蛋白纯化结果。将灌浆不同时期的水稻籽粒样品去壳混合,液氮研磨,每1 g籽粒加入1 mL含有50 mmol·L-1 Tris-HCl(pH 7.5)、150 mmol·L-1 NaCl、4 mmol·L-1 MgCl2、0.5 mmol·L-1 EDTA、0.5% NP-40、2 mmol·L-1 DTT、1 mmol·L-1 PMSF提取缓冲液中,充分混匀,冰上30 min后,4°C 11 000 r/min离心20 min,取上清液,0.22 μm滤膜过滤除杂,获得籽粒非变性全蛋白粗提液。之后,将提取液分别加入GST-GF14b及GST-GF14e融合蛋白的亲和吸附柱中,4℃孵育过夜,加入15倍柱床体积的PBS洗涤5次,还原型谷胱甘肽洗脱后,进行冷冻浓缩处理,再采用SDS-PAGE检测结果。

1.5 靶蛋白质谱鉴定

切取SDS-PAGE胶上蛋白条带,装于1.5 mL离心管中,胰蛋白酶酶解后,用于LC-MS/MS质谱鉴定。液相采用高速液相色谱系统Ultimate 3000(ThermoFisher Scientific),利用色谱柱BioBasic C18 Column(100×0.18 mm,particle size:5 um)对肽段进行分离。LTQ-XL(Thermo Scientific)质谱的具体参数为:喷雾电压条件设为3.5 kV;母离子扫描的范围为400—2 000 m/z;Isolation width为2 Da。二级质谱条件:AGC Target 1e4,1 microscans;碰撞能量:35% CID,CID扫描后选择前10个最高丰度的离子进行PQD扫描。质谱分析所获得的原始数据用Proteome Discoverer1.2软件进行相对定量分析,并利用RGAP7.0蛋白数据库(http://rice.plantbiology.msu.edu)进行蛋白检索,选择至少有2个独立肽段匹配的蛋白作为可信蛋白,FDR阈值设为<5%。

1.6 体外GST-pull down验证

依据质谱鉴定结果,随机选择2个靶蛋白Sucrose synthase 3(SUS3)和Puromycin-sensitive aminopeptidase(PSA),以籽粒的cDNA为模板,按照表1中的引物序列,将扩增的SUS3PSA的序列克隆到表达载体pet32a中,构建His-SUS3及His-PSA融合表达载体。采用Ni-Sepharose 6 Fast flow对融合蛋白进行纯化,咪唑洗脱液洗脱,进行SDS-PAGE检测。将纯化好的His-SUS3及His-PSA融合表达蛋白,分别加入吸附有GST-GF14b及GST-GF14e融合蛋白的亲和吸附柱中,4℃孵育过夜,还原型谷胱甘肽洗脱后,采用商业化的His抗体(Abmart,中国上海),进行Western blot分析。

1.7 生物信息学及数据分析

蛋白功能motif位点借助KEGG(http://www.genome.jp/kegg/kegg2.html)数据库分析。利用检索得到的所有互作蛋白的氨基酸序列,以Fasta的形式通过Kinasephos(http://kinasephos.mbc.nctu.edu.tw/index.php)在线程序对靶蛋白的Ser和Thr磷酸化位点进行预测分析。采用MapMan 3.6.0软件对互作蛋白的功能及参与的代谢途径进行分析。通过Gene Ontology(http://geneontology.org/)数据库对互作蛋白的细胞组分进行分析。

采用Microsoft Excel 2007 整理数据和制作图表,DPS V7.05 软件统计分析,以LSD(P<0.05)检验平均数间的差异显著性。

2 结果

2.1 14-3-3基因在水稻籽粒灌浆过程中的表达变化分析

采用qRT-PCR动态分析了水稻14-3-3基因家族在花后5—30 d的基因表达变化情况。如图1所示,除了GF14h外,其余的7个14-3-3基因家族成员在籽粒灌浆的不同时期均有表达。在整个籽粒灌浆期,GF14a的表达变化不大,GF14d的表达水平随着灌浆的进行逐渐下降,GF14f在花后20 d和25 d的表达水平较高,其余时期的表达水平较低。GF14cGF14e的表达变化趋势一致,均是在灌浆前期表达变化不大,而在花后25 d和30 d表达水平迅速上升。GF14b基因表达水平从花后10 d就开始迅速上升。本研究进一步选取GF14bGF14e作为后续的研究对象。

图1

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图114-3-3基因在水稻籽粒灌浆不同时期的表达分析

DAF:开花后天数
Fig. 1Quantitative real the dynamic expression pattern of the 14-3-3 genes during the different stages of rice grain filling

DAF: Day after flowering


2.2 GF14b和GF14e蛋白功能motif分析

通过KEGG数据库对GF14b和GF14e的蛋白motif进行比对分析(表2),发现GF14b和GF14e具有3个相同的motif类型,分别为pf:DUF885、pf:14-3-3和pf:TPR_12。 pf:14-3-3和pf:TPR_12在GF14b和GF14e的氨基酸序列中所处的位置相同,而pf:DUF885所处的位置不同。此外,GF14b和GF14e也具有不同的motif类型,pf:IFT20为GF14b特有的功能motif,pf:FlaF则为GF14e特有的功能motif。

Table 2
表2
表2GF14b 和GF14e蛋白功能motif对比
Table 2The functional motif analysis of GF14b and GF14e protein
功能位点
Functional site
功能位点位置 Functional site location
GF14bGF14e
pf:IFT205-55
pf:DUF88516-1496-150
pf:14-3-39-2459-245
pf:TPR_12135-207135-207
pf:FlaF192-254

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2.3 GF14b和GF14e互作靶蛋白鉴定

本研究采用亲和层析技术,筛选籽粒中与G14b及GF14e互作的靶蛋白,并利用SDS-PAGE对亲和层析获得的蛋白样品进行检测(图2),共进行了12次独立的生物学重复。之后,采用LC-MS/MS对SDS-PAGE胶上的蛋白条带进行鉴定。去除阴性及空白对照,选择至少在3次生物学重复试验中鉴定到的蛋白作为最终结果。依据此标准,本研究共鉴定到59个与GF14b结合的靶蛋白和72个与GF14e结合的靶蛋白,扣除2个家族成员间重复的结果,累计在籽粒中鉴定到88个与14-3-3蛋白结合的靶蛋白(表3)。

图2

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图2水稻籽粒中GF14b和GF14e靶蛋白的SDS-PAGE检测分析

A:F14b蛋白亲和层析结果的SDS-PAGE分析;B:GF14e蛋白的亲和层析结果的SDS-PAGE分析;条带1为空白对照;条带2为阴性对照; 图A中条带3和4为GF14b的亲和层析的洗脱蛋白液;图B中条带3和4为GF14e的亲和层析的洗脱蛋白液;图A中的条带5为纯化的GF14b蛋白;图B中的条带5为纯化的GF14e蛋白;条带6为籽粒非变性蛋白;条带7为marker
Fig. 2SDS-PAGE analysis of GF14b and GF14e client proteins in rice grain

A:SDS-PAGE analysis of GF14b client proteins; B: SDS-PAGE analysis of GF14e client proteins; Line 1 is the blank control; Line 2 is the negative control; Line 3 and line 4 in Fig. A are the elution protein of affinity chromatography of GF14b; Line 3 and line 4 in Fig. B are the elution protein of affinity chromatography of GF14e; Line 5 in Fig. A is the purified GST-GF14b protein; Line 5 in Fig. B is the purified GST-GF14e protein; Line 6 is the crude protein from developing rice grains; Line 7 is the marker


Table 3
表3
表3水稻籽粒中与14-3-3家族成员GF14b和GF14e互作的靶蛋白
Table 314-3-3 species GF14b and GF14e client proteins in developing rice grains
登入号
Accession numbera
蛋白名称
Protein name
细胞定位
Localizationb
预测的磷酸化位点
Predicted phosphorylated sitec
互作结合
Interaction withd
Serine (S)Threonine (T)GF14bGF14e
01 Sugar conversion and starch synthesis
LOC_Os01g44220ADP-glucose pyrophosphorylase large subunit (AGPL)Chloroplast01idid
LOC_Os03g28330Sucrose synthase 1 (SUS1)Cytoplasm54idid
LOC_Os06g09450Sucrose synthase 2 (SUS2)Chloroplast34idid
LOC_Os07g42490Sucrose synthase 3 (SUS3)Chloroplast55idid
LOC_Os05g33570Pyruvate, phosphate dikinase 1 (PPDK1)Chloroplast54idid
LOC_Os03g31750Pyruvate, phosphate dikinase 2 (PPDK2)Cytoplasm73idid
LOC_Os03g55090Alpha-1,4 glucan phosphorylase (GP)Cytoplasm123idid
LOC_Os06g510841,4-alpha-glucan-branching enzyme (GBE)Chloroplast123idid
LOC_Os02g32660Starch branching enzyme (SBE)Chloroplast.92idid
LOC_Os08g25734Glucose-1-phosphate adenylyltransferase small subunit (AGPS)Chloroplast71idid
02 Photosynthesis
LOC_Os01g31690Oxygen-evolving enhancer protein 1 (OEE1)Chloroplast30idid
LOC_Os07g04840PsbP (PSBP)Chloroplast20id
LOC_Os12g19470Ribulose bisphosphate carboxylase small chain (RBCS)Chloroplast41id
LOC_Os10g21268Ribulose bisphosphate carboxylase large chain (RBCL)Cytoplasm11idid
LOC_Os12g10580Ribulose bisphosphate carboxylase large chain (RBCL)Chloroplast42id
LOC_Os06g04270Putative transketolase (TK)Chloroplast74id
03 Glycolysis
LOC_Os01g67860Fructose-bisphosphate aldolase (FBA)Cytoplasm41idid
LOC_Os08g02120Fructokinase-2 (FRK2)Cytoplasm01idid
LOC_Os05g33380Fructose-bisphosphate aldolase cytoplasmic isozyme (FBA)Cytoplasm32idid
LOC_Os03g03720Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH)Mitochondrion00id
LOC_Os08g03290Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 1 (GAPDH1)Mitochondrion22idid
LOC_Os04g40950Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 2 (GAPDH2)Mitochondrion02idid
LOC_Os02g38920Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase 3 (GAPDH3)Cytoplasm02idid
LOC_Os03g50480Phosphoglucomutase (PGM)Chloroplast83idid
LOC_Os06g45710Phosphoglycerate kinase (PGK)Cytoplasm33idid
LOC_Os02g07260Phosphoglycerate kinase (PGK)Mitochondrion34idid
LOC_Os05g41640Phosphoglycerate kinase (PGK)Chloroplast31idid
LOC_Os09g38030UDP-glucose pyrophosphorylase (UGP)Cytoplasm36idid
LOC_Os02g02560UTP--glucose-1-phosphate uridylyltransferase (UGPU)Cytoplasm53id
04 Amino acid metabolism
LOC_Os01g55540Aspartate aminotransferase (ASAT)Mitochondrion22idid
LOC_Os02g14110Aspartate aminotransferase (ASAT)Chloroplast11id
LOC_Os10g25130Alanine aminotransferase (ALAT)Cytoplasm22idid
LOC_Os12g428765-methyltetrahydropteroyltriglutamate--homocysteine methyltransferase 1 (MLG1)Chloroplast61idid
登入号
Accession numbera
蛋白名称
Protein name
细胞定位
Localizationb
预测的磷酸化位点
Predicted phosphorylated sitec
互作结合
Interaction withd
Serine (S)Threonine (T)GF14bGF14e
LOC_Os04g55720D-3-phosphoglycerate dehydrogenase (PGDH)Chloroplast52id
LOC_Os08g09250Lactoylglutathione lyase (GLX-I)Cytoplasm01id
05 nucleotide metabolism
LOC_Os10g41410Nucleoside diphosphate kinase (NDK)Chloroplastid
06 TCA
LOC_Os10g33800Malate dehydrogenase (MDH)Cytoplasm31idid
LOC_Os08g09200Aconitate hydratase protein (AHP)Chloroplast50id
07 Fermentation
LOC_Os08g43190Sorbitol dehydrogenase (SDH)Cytoplasm41idid
08 Protein synthesis
LOC_Os02g32030Elongation factor (EF)Nucleus102idid
LOC_Os01g53900Elongation factor (EF)Cytoplasm45id
LOC_Os04g02820Elongation factor (EF)Nucleus102id
LOC_Os03g08010Elongation factor 1-alpha (EFA1)Cytoplasm22idid
LOC_Os06g37440Elongation factor 1-gamma 3 (EFG3)Chloroplastid
LOC_Os11g21990Expressed protein (EP)Nucleus23id
LOC_Os06g48750DEAD-box ATP-dependent RNA helicase (DEAD)Nucleusid
LOC_Os01g13430Importin-alpha re-exporter (IAE)Cytoplasm308id
LOC_Os09g07510HEAT repeat family protein (HR)Cytoplasm92id
LOC_Os08g39140Heat shock protein 81-1 (HSP81-1)Cytoplasm53idid
LOC_Os09g30412Heat shock protein 81-2 (HSP81-2)Cytoplasm22idid
LOC_Os08g06100O-methyltransferase 1 (ROMT-9)Cytoplasm02idid
LOC_Os07g4295040S ribosomal protein S6 (RPS6)Cytoplasm65id
LOC_Os02g01280T-complex protein (TCP)Chloroplast64id
LOC_Os06g02380T-complex protein (TCP)Chloroplast93id
LOC_Os03g64210T-complex protein (TCP)Chloroplast00idid
09 Transporters
LOC_Os02g10800Mitochondrial carrier protein (MCP)Chloroplast22id
LOC_Os01g25065Putative ATPase beta subunit (ATPG)Mitochondrion32id
LOC_Os11g47970AAA-type ATPase family protein (AAA)Cytoplasm34id
10 Disease and defense
LOC_Os11g47760DnaK family protein (DNAK)Cytoplasm67idid
LOC_Os12g14070DnaK family protein (DNAK)Chloroplast78idid
LOC_Os03g16860DnaK family protein (DNAK)Cytoplasm65id
LOC_Os02g02410DnaK family protein (DNAK)Mitochondrion128idid
LOC_Os08g09770DnaK family protein (DNAK)Mitochondrion67id
LOC_Os11g09280Protein disulfide isomerase-like 1-1 (PDIL1-1)Endoplasmic reticulum33id
登入号
Accession numbera
蛋白名称
Protein name
细胞定位
Localizationb
预测的磷酸化位点
Predicted phosphorylated sitec
互作结合
Interaction withd
Serine (S)Threonine (T)GF14bGF14e
11 Signal transduction
LOC_Os02g3697414-3-3-like protein GF14-e (GF14e)Cytoplasm52idid
LOC_Os03g5029014-3-3-like protein GF14-f (GF14f)Cytoplasm20idid
LOC_Os04g3887014-3-3-like protein GF14-b (GF14b)Cytoplasm62idid
LOC_Os08g3337014-3-3-like protein GF14-c (GF14c)Cytoplasm21idid
LOC_Os08g3749014-3-3-like protein GF14-a (GF14a)Cytoplasm20idid
LOC_Os11g3445014-3-3-like protein GF14-d (GF14d)Cytoplasm51id
12 Cell growth and division
LOC_Os02g12650Puromycin-sensitive aminopeptidase (PSA)Cytoplasm62id
LOC_Os08g30810Puromycin-sensitive aminopeptidase (PSA)Cytoplasm54id
LOC_Os02g02890Peptidyl-prolyl cis-trans isomerase (CYP2)Mitochondrion34id
LOC_Os01g59790ADP-ribosylation factor 1 (ARF1)Mitochondrion00id
LOC_Os03g51600Tubulin alpha-1 chain (TUBA1)Mitochondrion61id
LOC_Os05g34170Tubulin beta-6 chain (TUBB6)Cytoplasm62idid
LOC_Os06g46000Tubulin beta-3 chain (TUBB3)Cytoplasm53id
LOC_Os11g14220Tubulin alpha-2 chain (TUBA2)Cytoplasm71id
LOC_Os12g44350Actin-1 (ACTIN1)Cytoplasm23id
LOC_Os03g50885Actin-1 (ACTIN1)Cytoplasm42id
LOC_Os11g06390Actin-7 (ACTIN7)Cytoplasm72id
LOC_Os10g36650Actin-2 (ACTIN2)Cytoplasm72id
LOC_Os01g73310Putative actin (ACTIN)Cytoplasm52id
LOC_Os05g01600Actin-97(ACTIN97)Cytoplasm52id
13 C1-metabolism
LOC_Os09g27420Formate--tetrahydrofolate ligase (FTL)Chloroplast105id
LOC_Os06g29180Formate dehydrogenase 1 (FDH1)Mitochondrion03id
14 Unknown classification
LOC_Os03g49190Oleosin 18 kDa (OLE18)Cytoplasm10id
LOC_Os06g49650Harpin-induced protein 1 domain containing (HIP1)Nucleus31id
a:水稻基因组学注释数据库的LOC登入号(http://rice.plantbiology.msu.edu/);b:蛋白定位采用Gene Ontology数据库的细胞组分分析(http://geneontology.org/);c:蛋白磷酸化位点预测采用Kinasepho在线软件(http://kinasephos.mbc.nctu.edu.tw/index.php); d:id 表示通过亲和层析鉴定到的与GF14b或GF14e互作的靶蛋白
a: LOC accession numbers refer to database entries at the Rice Genome Annotation Project (http://rice.plantbiology.msu.edu/); b: Protein localization was forecasted by using Gene Ontology cellular component analysis; c: Prediction of phosphorylation sites by Kinasepho software (http://kinasephos.mbc.nctu.edu.tw/ index.php); d: Functional proteins eluted from the affinity chromatographic column were identified to interact with either GF14b or GF14e and labeled as “id”

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为了验证亲和层析的结果,随机选取2个靶蛋白 (SUS3和PS)采用体外GST pull-down的方法,分别验证上述2个靶蛋白与GF14b及GF14e间的蛋白互作关系。构建His-SUS3及His-PSA融合表达蛋白,诱导表达纯化后,分别与纯化后的GST-GF14b及GST-GF14e融合表达蛋白孵育,洗脱后,采用His抗体检测。结果表明,SUS3与GF14b和GF14e有很高的亲和力,PSA仅与GF14e有相互作用条带,证实了亲和层析结果鉴定的准确性(图3)。

图3

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图3GST pull-down 验证鉴定到的14-3-3互作靶蛋白

Fig. 3GST pull-down validated the identified client proteins of 14-3-3 protein



细胞定位分析表明,鉴定到的88个靶蛋白主要定位于细胞核(5.7%)、细胞质(50%)、叶绿体(29.5%)、线粒体(13.6%)和内质网(1.1%)(表3)。此外,通过磷酸化位点预测,发现在GF14b的59个互作靶蛋白中,96.7%具有Ser或Thr磷酸化位点;GF14e的72个互作靶蛋白中,97.2%具有Ser或Thr磷酸化位点(表3)。

2.4 GF14b和GF14e互作靶蛋白功能分析

通过对鉴定到的88个靶蛋白的功能分析,发现有11.36%参与糖转化和淀粉合成,6.82%参与光合作用,14.77%参与糖酵解,6.82%参与氨基酸代谢,18.18%参与蛋白质合成,6.82%参与疾病和防御,6.82%参与信号转导,15.91%参与细胞生长和分裂。少部分靶蛋白与核苷酸代谢(1.14%)、TCA(2.27%)、发酵(1.14%)、转运蛋白(3.41%)和C1代谢(2.27%)有关,2.27%功能未知(图4)。此外,本研究还发现14-3-3蛋白不同家族成员间也存在着互作关系,例如GF14b与GF14a,GF14c,GF14d,GF14e,GF14f互作,而GF14e与GF14b,GF14c和GF14d存在互作。

图4

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图4GF14b及GF14e互作靶蛋白功能分类

Fig. 4Functional characterization of GF14b and GF14e client proteins



2.5 GF14b与GF14e互作靶蛋白差异分析

本研究发现GF14b及GF14e共同互作的靶蛋白有43个,而与GF14b特异结合的靶蛋白有16个,与GF14e特异结合的有29个(图5)。GF14b特异性互作蛋白主要分布于7个功能类别,包括光合作用(2个)、核苷酸代谢(1个)、蛋白质合成(2个)、转运蛋白(3个)、疾病与防御(2个)、细胞生长与分裂(4个)和未知分类(2个),而GF14e特异性互作蛋白涉及9个功能类别,包括光合作用(2个)、糖酵解(2个)、氨基酸代谢(3个)、TCA(1个)、蛋白质合成(8个)、疾病与防御(1个)、信号转导(1个)、细胞生长与分裂(9个)和C1代谢(2个)。

图5

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图5GF14b和GF14e互作靶蛋白差异分析

A:GF14b和GF14e互作靶蛋白韦恩图分析;B:14-3-3蛋白家族成员靶蛋白的互作网络分析。用Cytoscape V3.3绘制了相互作用网络图。14-3-3靶蛋白的缩写见表3
Fig. 5Differential analysis between GF14b and GF14e client proteins

A: The Venn analysis between GF14b binding proteins and GF14e binding proteins; B: Interaction analysis of respective 14-3-3 isoforms and client proteins. The interaction network was plotted using Cytoscape V3.3. All the abbreviation were showed in Table 3


2.6 GF14bGF14e及其互作靶基因对外源激素的响应

为了明确14-3-3蛋白在籽粒发育过程中对激素的响应机制,运用qRT-PCR,在转录水平分析了GF14bGF14e及其互作的靶基因对外源激素ABA、IAA、GA、ZT和BR的响应。结果表明,不同外源激素处理下GF14bGF14e基因均呈上调表达的变化趋势,而蔗糖合成酶基因(SUS2),ADP-葡萄糖焦磷酸化酶基因(AGPS、AGPL),丙酮酸磷酸二激酶基因(PPDK2),淀粉分支酶基因(SBE)这5个与淀粉合成密切相关的靶基因大部分呈现下调表达的趋势,仅AGPL在外源IAA的处理下呈上调表达趋势(图6)。

图6

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图6不同外源激素处理下水稻籽粒GF14bGF14e及其互作靶基因的表达模式

Fig. 6The expression patterns of the GF14b, GF14e and their interacting genes in response to different exogenous hormone treatment



3 讨论

14-3-3蛋白是作物籽粒发育过程中的一个重要的信号调节因子,例如在玉米籽粒中鉴定到的zmgf14-4zmgf14-6[9],在拟南芥种子中鉴定到的14-3-3χ14-3-3ε[8],在大麦籽粒中鉴定到的14-3-3a[27],均在籽粒发育过程中发挥着重要的作用。本研究发现水稻14-3-3基因的8个家族成员中GF14bGF14cGF14eGF14fGF14g随着籽粒灌浆的进行均有着不同程度的上调表达趋势,暗示着上述5个14-3-3基因家族成员参与到水稻籽粒灌浆充实的生理过程中。进一步选取在籽粒灌浆期表达变化幅度较大的GF14b GF14e,通过互作靶蛋白的鉴定,解析14-3-3蛋白在籽粒灌浆过程中的蛋白调控网络。蛋白功能motif分析表明,GF14b和GF14e具有3个相同类型功能motif,暗示着2个不同成员间具有相同的蛋白功能,亲和层析的结果证实GF14b及GF14e间共有43个相同的互作靶蛋白。蛋白功能分析发现,在蔗糖转化、淀粉合成、糖酵解代谢及TCA循环途径中,GF14b及GF14e互作的靶蛋白大多数是一致的,例如蔗糖转化及淀粉合成的限速酶AGPase和SuS,糖酵解过程的关键酶甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)、果糖激酶(FRK)、磷酸甘油酸激酶(PGK)和UDP-葡萄糖焦磷酸化酶(UGPase)以及TCA循环的苹果酸脱氢酶(MDH)。在拟南芥[8]、大麦[27]、小麦[10]及玉米[9]籽粒(种子)中也鉴定到大量与14-3-3蛋白互作的碳代谢相关靶蛋白。据此,笔者认为水稻籽粒灌浆过程中,14-3-3蛋白家族通过与碳代谢相关靶蛋白互作,进而参与了水稻籽粒灌浆过程中碳代谢的调控。

水稻14-3-3蛋白不同家族成员具有各自特异的调控功能,例如,GF14b与抗旱性相关 [28],GF14c被认为是开花的负调控因子 [29],GF14e负调控细胞死亡及抗病响应 [30]。本研究在籽粒中分别鉴定到16个与GF14b及29个与GF14e特异结合的靶蛋白,这或许是由于2个成员间所具备的不同功能motif所导致的。例如,GF14b蛋白能够特异与核酸代谢相关的Nucleoside diphosphate kinase以及转运相关的mitochondrial carrier protein结合,而GF14e能够与C1代谢中的Formate dehydrogenase 1和Formate-- tetrahydrofolate ligase相互作用。此外,GF14b和GF14e在籽粒灌浆过程中的同一生理代谢过程也具有特异的调控机制,例如,在蛋白合成中,GF14e特异与40S ribosomal protein S6及Importin-alpha re-exporter结合,而GF14b特异与DEAD-box ATP-dependent RNA helicase结合;在细胞生长分裂中,GF14b特异与ADP-ribosylation factor1结合,而GF14e特异与Puromycin-sensitive aminopeptidase 结合。14-3-3蛋白在玉米的籽粒发育过程中也有类似的结果,玉米14-3-3蛋白ZmGF14-4在胚乳发育过程中能特异地与抗病及抗逆相关蛋白结合,而ZmGF14-6主要与代谢及细胞结构相关蛋白互作[9]。上述结果表明GF14b和GF14e通过调节各自独有的互作靶蛋白,进而在水稻籽粒灌浆过程中发挥着特异的调控功能。此外,本研究还发现GF14b及GF14e不仅能够与对方相互作用,其自身也会自我结合,说明14-3-3蛋白家族的这2个成员间存在着蛋白二聚化(dimerization)。已有的研究也发现14-3-3蛋白能通过形成同质或异质二聚体[31],从而使其能够同时与2个靶蛋白或者1个靶蛋白的2个不同的结构域结合[32]。虽然,14-3-3蛋白主要是通过与靶蛋白互作进而发挥其调控作用的,但GF14b及GF14e的这种自我结合及不同成员间相互结合的方式(inter- and/or intra-species bindings),或许会增强其在水稻籽粒灌浆过程中的调控效果。

已有研究表明,14-3-3蛋白通过参与激素的信号转导,从而在植物发育及逆境胁迫响应的过程中起到了重要的作用[3, 33]。本研究发现,籽粒14-3-3基因家族的2个成员GF14bGF14e均会响应激素ABA、IAA、GA、ZT、BR的处理而出现不同程度的上调表达趋势,说明在籽粒灌浆过程中,14-3-3家族基因在激素信号调控网络中也发挥着重要的作用。ZHU等[34]研究发现在籽粒灌浆期外源喷施ABA及乙烯能够降低SUSAGPaseStS基因的表达及相应的酶活性。可见,植物激素会通过调控籽粒灌浆过程中淀粉合成相关酶的基因表达及活性,从而调控籽粒的灌浆充实。本研究从GF14bGF14e共同互作靶基因中,选取了SUS2, AGPS, AGPL,PPDK2,SBE 这5个与淀粉合成密切相关的基因,发现上述5个靶基因在激素的处理下大部分呈下调表达的趋势,这与GF14bGF14e的表达变化趋势相反,暗示着14-3-3基因与淀粉合成相关基因的表达呈负相关的调控关系。在大麦籽粒中的研究发现,SuS酶的活性受外源14-3-3蛋白的抑制[27]。在拟南芥中的研究也表明,抑制14-3-3蛋白的表达会导致淀粉的积累增加[35]。笔者前期通过RNAi干扰技术也发现特异减少14-3-3家族成员的GF14f在籽粒中的表达,有利于提高籽粒灌浆过程中淀粉合成相关酶的活性[19]。据此,笔者认为14-3-3蛋白家族在籽粒灌浆过程中会响应激素浓度的改变,进而对淀粉的合成起到负调控作用。

14-3-3蛋白主要是通过磷酸化作用与其互作靶蛋白结合,进而调控靶蛋白的功能,其对互作靶蛋白的结构要求是含有磷酸化的Ser或Thr序列[2],而本研究所鉴定到籽粒靶蛋白,大部分也是具有潜在的Ser或Thr磷酸化结合位点。蛋白的磷酸化修饰是调节植物碳代谢中的许多关键酶活性的一个重要的机制,其具体的调控过程是酶自身发生蛋白磷酸化修饰,之后与14-3-3蛋白结合形成复合体,从而改变其自身的酶活性[35,36]。例如,拟南芥叶片中的StSase III家族具有保守的磷酸化位点(RYGSIP),使其能够与14-3-3蛋白结合[37]。拟南芥GAPDH磷酸化后与14-3-3蛋白结合后,其酶活性受到抑制[38]。14-3-3蛋白也主要通过磷酸化作用参与激素的信号转导。例如,14-3-3蛋白能够与Ca2+-依赖的CDPK激酶磷酸化转录因子RSG(repression of shoot growth)的Ser114磷酸化位点结合,使得RSG滞留在细胞质中而不能进入细胞核调控编码GA生物合成相关蛋白的基因,从而控制植株体内GA含量[39,40]。此外,本研究也发现水稻14-3-3蛋白自身也具有潜在的Ser或Thr磷酸化结合位点。前人的研究也证实14-3-3蛋白除了会与磷酸化靶蛋白结合进而调控其活性外,其自身磷酸化作用在信号调节的过程中也起到了极为重要的作用,且不同的家族成员间的磷酸化位点具有特异性[41,42]。由此可见,14-3-3蛋白或许会通过自身磷酸化及与磷酸化后的靶蛋白结合,进而在籽粒的碳代谢及激素信号转导的过程中发挥着重要的作用,但其具体的调控机制及磷酸化位点还需进一步研究。

4 结论

14-3-3家族成员中的GF14bGF14e基因在水稻籽粒灌浆过程中表达变化幅度较大,且会响应外源激素处理而出现表达变化。GF14b蛋白和GF14e蛋白具有相同及各自特异的互作靶蛋白,通过磷酸化的作用方式与其靶蛋白结合,参与籽粒灌浆过程中的碳代谢及激素的信号转导,并作为负调控因子参与淀粉的合成过程。

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文献年度倒序
文中引用次数倒序
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