王欣怡¹, 艾先涛², 王俊铎², 梁亚军², 龚照龙², 郑巨云², 郭江平², 买买提·莫明², 李雪源^2,*
1新疆农业大学农学院/农业生物技术重点实验室, 新疆乌鲁木齐 830052

²新疆农业科学院经济作物研究所, 新疆乌鲁木齐 830091

^*通讯作者(Corresponding author): 李雪源, E-mail: xjmh2338@163.com 第一作者联系方式: E-mail: 15999173011@163.com, Tel: 15999173011
收稿日期:2016-12-20 接受日期:2017-05-10网络出版日期:2017-05-19基金:本研究由国家自然科学基金项目(31360351)资助

摘要利用SSR分子标记技术对棉花品种真实性和纯度进行分析研究, 旨在为棉花品种提供分子鉴定依据。以具有代表性的棉花品种为材料, 经过引物初筛和复筛, 确定26对均匀分布于棉花染色体上的SSR核心标记。结果表明, 26对核心标记在120份材料中筛选得到138个等位位点, 其中129个为多态性位点, 多态性比率达93.48%。以标准样品为对照, 利用26对核心标记对10份棉花常规种进行真实性鉴定, 发现仅有源棉6号与标准品种的DNA图谱高度一致, 其他9份常规种与标准品种均存在8~18个差异位点, 分子鉴定结果与田间鉴定相符。另外分别筛选5对特征引物作为纯度检测标记, 采用单位点平均法统计4份常规棉品种检测结果表明, 源棉6号纯度最高, 为98.0%, 源棉1号最低, 为90.5%, 检测结果与田间纯度鉴定呈现正相关性。研究表明利用SSR标记技术鉴定棉花品种真实性和纯度的方法完全可行。

关键词:棉花; 真实性鉴定; 纯度检测; SSR分子标记
Rapid Identification System of Purity and Authenticity in Cotton Varieties by SSR Markers
WANG Xin-Yi¹, AI Xian-Tao², WANG Jun-Duo², LIANG Ya-Jun², GONG Zhao-Long², ZHENG Ju-Yun², GUO Jiang-Ping², MAMAT Mo-Ming², LI Xue-Yuan^2,*
1 Key Laboratory of Agriculture Biological Technology / College of Agronomy, Xinjiang Agricultural University, Urumqi 830052, China

² Economic Crop Research Institute, Xinjiang Academy of Agricultural Sciences, Urumqi 830091, China

Fund:The study was supported by the National Natural Science Foundation of China (31360351).
AbstractSSR molecular markers were used to analyze the authenticity and purity of cotton varieties, providing a molecular basis for the identification of cotton varieties. Typical cotton varieties were used as materials, and 26 pairs of primers well-distributed on the cotton genome were ascertained as the core primers in SSR molecular identification by preliminary and multiple screening. A total of 138 alleles from 120 varieties were screened by using 26 pairs of core primers, 129 of which were polymorphic loci, with a polymorphism rate of 93.48%. Ten inbred cotton varieties were used with 26 pairs of SSR core primers to identify the variety purity. The DNA fingerprint of one variety (Yuanmian 6) shared high uniformity with that of the standard cultivar, and DNA fingerprints of other nine varieties had 8-18 loci different from those of standard cultivar. The results from SSR molecular marker matched with those from field experiments. Five specific primers were selected for testing authenticity of each cultivar from 26 core primers. The variety with highest purity was Yuanmian 6, with the purity of 98.0% and that with lowest purity was Yuanmian 1, with the purity of 90.5%. It suggests that identifying authenticity and purity of cotton varieties is feasible by SSR molecular markers.

Keyword:Cotton; Authenticity identification; Purity testing; SSR marker
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品种真实性和纯度是种子质量的重要指标。据《农作物种子检验规程》中定义, 品种真实性(cultivar genuineness或trueness)是指一批种子所属品种与文件(品种证书、标签等)是否相同; 而品种纯度(varietal purity)则是指品种在特征、特性方面典型一致的程度。品种混杂和纯度降低会明显降低作物产量、影响作物品质。Ashok等^[1]研究认为若种子纯度每降低1%, 那么每公顷棉花减产可达100 kg。近年来, 我国棉花品种“ 套牌” 、“ 冒牌” 现象严重, 品种质量较差, 严重影响棉花生产安全和健康发展, 因此, 生产和市场迫切需要一种科学有效的品种鉴定方法。长期以来, 国内外棉花品种真实性和纯度鉴定的权威方法, 是以形态学为基础的田间小区种植鉴定。由于许多形态学性状鉴定周期长、调查性状易受栽培条件及环境因素影响, 使其时效性和可靠性受到一定限制^[2], 难以及时监控市场上的种子质量问题和解决品种侵权等纠纷。
分子生物学的发展使农作物品种鉴定进入基因水平, 其中以微卫星序列为基础的SSR标记具有扩增稳定可靠、重复性好等优点, 因此被广泛应用于棉花品种鉴定^[3]。武耀廷等^[4]利用48对SSR标记检测了30个陆地棉栽培品种和4个高优势杂交种亲本的多态性, 并建立了杂交种的SSR指纹图谱用于分子鉴定和纯度检测。朱美霞等^[5]以5个棉花栽培品种为材料, 利用15对SSR引物确定了分析品种纯度所需引物数, 为棉花品种指纹图谱的建立提供了理论依据。殷剑美等^[6]从217对引物中筛选出21对多态性引物, 构建苏杂118的SSR指纹图谱, 实现了对苏杂118真实性和纯度的快速鉴定。Yu等^[7]选择105对均匀分布于染色体的引物, 对棉属6个种的12个基因型进行多态性分析, 揭示了棉属种间和陆地棉种内的DNA多态信息。刘国栋等^[8]利用78个SSR标记对12个棉花品种进行标记基因型分析, 通过分析非纯位点率和异型单株率对品种遗传纯度的影响, 建立了利用SSR标记鉴定棉花品种纯度的方法。
目前利用分子标记对棉花品种进行真实性鉴定和纯度检测的研究主要是针对杂交种, 有关常规种的研究报道还比较少。本研究利用26对均匀分布于染色体上的SSR标记对棉花品种真实性和纯度分析研究, 并针对如何提高检测效率、降低检测成本, 提出了合理混合DNA样品的方法, 确定了一种快速鉴定棉花常规品种真实性与纯度的SSR分子标记方法, 为今后棉花品种鉴定提供分子水平上的依据。
1 材料与方法1.1 试验材料与取样方法对于棉花品种真实性鉴定选用常规品种源棉6号、新陆早13、新陆早26、新陆早37、新陆中9、新陆中37、鲁棉研28、中棉所35、中棉所41、中棉所43共10个品种为材料, 随机选取每个品种15个单株, 将每5个单株DNA等量混合进行SSR分析, 以SSR位点有2个或2个以上等位变异的组, 对构成混样的5个单株DNA进行检测。
对于棉花品种纯度SSR检测与田间鉴定选用常规品种中棉所49、源棉1号、源棉2号和源棉6号为材料, 取每个品种100个单株, 对单株DNA进行SSR检测; 在盛铃期^[9]分别调查4个品种的株型、铃形、叶形等, 作为田间品种纯度鉴定的依据。
1.2 试验方法1.2.1 棉花基因组DNA的提取 采用改良CTAB法快速提取棉花基因组DNA^[10]。利用紫外分光光度计检测DNA纯度和浓度, 通过1%的琼脂糖凝胶电泳进一步确定其质量。
1.2.2 SSR扩增与电泳分析 SSR引物信息来源于CMD数据库(http://www.cottonmarker.org/)、CottonDB数据库(http://www.cottondb.org/)以及文献资料^{[8, 11, 12]}已公布的引物。采用10 µ L PCR体系, 包括DNA模板(60 ng µ L^-1) 1 µ L, 正、反向引物(4 pmol µ L^-1)各0.5 µ L, 10× 缓冲液1 µ L, dNTPs (2.5 mmol L^-1) 0.2 µ L, Taq酶(5 U µ L^-1) 0.1 µ L和ddH₂O 6.7 µ L。参考艾先涛等^[13] PCR方法, 产物经8%的非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳分离, 快速银染法^[14]染色(仅需12 min)。
1.2.3 数据记录与位点判读 利用均匀分布的26对核心标记, 将供试样本电泳谱带与标准样品比较, 根据谱带一致性判定供试样品的真实性, 结果用不同、近似、相同表示。当供试样品与标准样品差异位点> 2时, 判定为不同品种; 当差异位点≤ 2时, 判定为相似品种; 若供试样品与标准样品无差异位点, 则判定为相同品种^[15]。从供试样品中随机选取100个单株作为检测样本, 根据真实性鉴定时核心引物的扩增结果, 分别选取5对特征引物作为纯度检测标记。品种纯度P = (N_T-N_D)/N_T× 100%, 式中N_T为供检品种总株数, N_D为杂株数, 以平均值表示该品种的纯度值。

2 结果与分析2.1 SSR标记多态性分析以8份遗传背景差异较大的品种对分布于棉花全基因组的586对多态性引物进行初步筛选, 随后利用120份具有广泛代表性的材料复筛, 最终确定26对多态性高、带型清晰的SSR引物定为本次试验的核心引物(表1)。26对核心引物均匀分布于棉花26条染色体上, 在120份复筛材料上共检测到138个等位基因变异, 平均每个SSR有5.31个, 变幅为2~9, 其中具有多态性的位点为129个, 多态性比率达93.48%。26对核心引物总体上鉴别能力尚可, 进行棉花品种的鉴定是可行的。
表1
Table 1
表1(Table 1)

表1 用于棉花品种鉴定的26对SSR核心引物 Table 1 Twenty-six pairs of SSR core primers for cotton varieties identification 编号 No. 引物名称 Primer 染色体位置 Chromosome 正向引物序列 Forward primer sequence (5'-3') 反向引物序列 Reversed primer sequence(5'-3') 1 NAU2083 Chr.01 AGAAGAGGTTGACGGTGAAG TGAGTGAAGAACCTGCACAT 2 NAU2277 Chr.02 GAACTAGCCACATGATGCAC TTGTTGAGGCATTAGTTTGC 3 NAU1071 Chr.03 ACCAACAATGGTGACCTCTT CCCTCCATAACCAAAAGTTG 4 BNL530 Chr.04 CGTAGGATGGAAACGAAAGC GCCACACTTTTCCCTCTCAA 5 NAU1200 Chr.05 CAACAGCAACAACCACAA CTGCCTCGAGGACAAATAGT 6 CGR5651 Chr.06 TTTGGCTTAGCATTTGGAGG CCGATCACTGTCCGTCTCTT 7 BNL1694 Chr.07 CGTTTGTTTTCGTGTAACAGG TGGTGGATTCACATCCAAAG 8 DPL0111 Chr.08 CTTTCATAATACATACGCCTTGCC TCACAGCATCCTATCAGGTATCAG 9 CGR5707 Chr.09 AAACCCGATATCCTTAGCCTTT GGAAAGGAGGAAGAGGAGGA 10 NAU879 Chr.10 AGGAACCGATTCAAAGCTAA TTTCCCCATTCTTGGTTAAG 11 BNL3442 Chr.11 CATTAGCGGATTTGTCGTGA AACGAACAAAGCAAAGCGAT 12 BNL598 Chr.12 TATCTCCTTCACGATTCCATCAT AAAAGAAAACAGGGTCAAAAGAA 13 CGR5576 Chr.13 CGGTTCAACCCGACTGTTT GAGGAAAGAAAGGAAGAGAGGG 14 CIR246 Chr.14 TTAGGGTTTAGTTGAATGG ATGAACACACGCACG 15 NAU3736 Chr.15 CATGTGCATTTCATCCTGTC CCAAGTGAGAGGCATTTTCT 16 MUSS95 Chr.16 GCAACCATTAATTAAGCAAGTAACAA CGAAGAATATGTGAACCTACAGAAAC 17 HAU1413 Chr.17 CTGACTTGGACCGAGAACTT AACCAGGACCGATGAAATAA 18 TMB2295 Chr.18 TGAGTTCATGTTCCCCACTG CTAAACATACTCTGTCAAACAC 19 BNL3977 Chr.19 ATCCAAACCAACCATGCAAT GAAGGGGTTTTGCATTTCAA 20 JESPR190 Chr.20 GCCCGCCATCTTTGAGGATCCG GGCAAAACTTGACAATTTTCTCGGC 21 JESPR158 Chr.21 CACCATTCGGCAGCTATTTC CTGCAAACCCTAGCCTAGACG 22 NAU2026 Chr.22 GAATCTCGAAAACCCCATCT ATTTGGAAGCGAAGTACCAG 23 JESPR13 Chr.23 GCTCTCAAATTGGCCTGTGT GGTGGAGGCATTCCTGCTAAC 24 BNL3860 Chr.24 GAGGAATTGAGCATTGGGAA TGCTGCACATCATGAATGAA 25 BNL3937 Chr.25 ACATCAAACAAAGCAAGCCA ATCTCTGTTTTCTCCCCCGT 26 NAU1042 Chr.26 CATGCAAATCCATGCTAGAG GGTTTCTTTGGTGGTGAAAC

表1 用于棉花品种鉴定的26对SSR核心引物 Table 1 Twenty-six pairs of SSR core primers for cotton varieties identification

2.2 棉花品种真实性鉴定2.2.1 取样量的确定 单个植株无法代表整个品种群体的基因型信息, 综合考虑工作量及操作可行性, 将品种真实性鉴定的样品量确定为15个单株, 再将单株DNA合并为若干混合样本进行SSR分析。
为确定混合样本中个体DNA份数, 将A (新陆早26)和B (新陆中37) 2个品种按10∶ 0、9∶ 1、8∶ 2、7∶ 3、6∶ 4、5∶ 5、4∶ 6、3∶ 7、2∶ 8、1∶ 9、0∶ 10的比例混合DNA, 分别记作样1~样11, 利用多态性SSR引物对11个样本进行PCR扩增, 扩增产物表现为2个品种的杂合带型(图1)。随着2个品种DNA浓度在各个样本中比例的改变, 其PCR产物中2个品种的带纹清晰度也逐渐加强或减弱。
图1
Fig. 1

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	图1 A和B不同比例DNA混合样本标记扩增结果 M: marker; 1~11: 2个品种DNA按10:0、9:1、8:2、7:3、6:4、5:5、4:6、3:7、2:8、1:9、0:10比例混合的11个样品。Fig. 1 SSR bands of mixed DNA samples from Xinluzao 26 and Xinluzhong 37 M: marker; 1-11: DNA samples of two varieties mixed by the ratio of 10:0, 9:1, 8:2, 7:3, 6:4, 5:5, 4:6, 3:7, 2:8, 1:9, 0:10.

检测到供试品种和杂株的多态性位点时, 混合样本中的杂株达到20%, 杂株带型清晰可见。据此认为5个单株DNA合并为1个混合样本最为合理。只要该混合样本中有1个杂株, 此位点的带型将表现为测试品种与杂株的杂合带型, 进一步检测5个单株, 便能找出与其余4株带型不同的单株。
2.2.2 真实性鉴定的结果判定 选取10个棉花常规品种将其编号(表2), 随机选取15株源棉6号品种, 以5个单株DNA均匀混合为1组, 制成3个样本(A1、A2、A3)作为标准样品。将供试样品也按照上述方法制成3个样本(X1、X2、X3), 利用26对核心标记进行扩增分析, 通过对比供试样品与标准样品整体图谱的差异位点, 判断待检样品的真实性。
表2
Table 2
表2(Table 2)

表2 用于真实性鉴定的10个常规棉花品种 Table 2 List of 10 inbred cotton varieties for authenticity identification 编号 Code 品种名称 Cultivar name 系谱来源 Pedigree 标准样品 Sample 源棉6号 Yuanmian 6 自育品系AY4系统选育 Developed line AY4 by systematic breeding A 源棉6号 Yuanmian 6 自育品系AY4系统选育 Developed line AY4 by systematic breeding B 新陆早13 Xinluzao 13 自育83-14× (中无5601+1693) Developed line 83-14× (Zhongwu 5601+1693) C 新陆早26 Xinluzao 26 新陆早8系选 Xinluzao 8 by systematic breeding D 新陆早37 Xinluzao 37 (辽83421× 系5)× (辽9001+系5+90-2) (Liao 83421× Xi 5)× (Liao 9001+Xi 5+90-2) E 新陆中9 Xinluzhong 9 新陆中4系选 Xinluzhong 4 by systematic breeding F 新陆中37 Xinluzhong 37 B23× 渝棉1号 B23× Yumian 1 G 鲁棉研28 Lumianyan 28 (鲁棉14× 石远321)F1× (5186系+豫棉19、中12、中19, 秦远142、鲁8784等混合花粉)后代系统选育 (Lumian 14× Shiyuan 321) F1× (5186Xi+Mix of Yumian 19, Zhong 12, Zhong 19, Qinyuan 142, Lu 8784) offspring H 中棉所35 Zhongmiansuo 35 中23021× (中棉12× 川1704) Zhong 23021× (Zhongmian 12× Chuan 1704) I 中棉所41 Zhongmiansuo 41 Bt+CpTI双价抗虫基因, 通过花粉管通道法导入中棉所23中, 经过多年选育而成 Bt+CpTI Bivalent insect-resistant gene was introduced into Zhongmiansuo 23 by pollen tube path, by several years breeding J 中棉所43 Zhongmiansuo 43 石远321× 5716 Shiyuan 321× 5716

表2 用于真实性鉴定的10个常规棉花品种 Table 2 List of 10 inbred cotton varieties for authenticity identification

2.2.3 同一样品3组混样间差异位点分析 通过对比同一样品3组混合样本电泳图谱发现(图2), 源棉6号和中棉所43的3组混合样本在26个标记中谱带均一致; 其余8个品种3组混合样本之间存在4~13个差异位点。对于相同位点谱带不一致的3组混合样本, 进一步分析构成该混样的15个单株图谱(图3), 确定非本品材料。
2.2.4 供试样品与标准样品间差异位点分析 10个供试样品中, 仅A1~A3样品与标准样品在26个位点上扩增图谱完全一致, 判定为相同品种; 其余样品与标准样品间存在8~18个差异位点(图4), 判定为不同品种。事实上A1~A3样品即为源棉6号品种的3个分样。
图2
Fig. 2

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	图2 引物NAU2083在不同品种3组混合样本中的扩增结果M: marker; 1~30: 不同品种混合样本电泳扩增效果图; A~J: 10个参试品种。Fig. 2 Amplified bands of three mixed samples by the different varieties with primer NAU2083 M: marker; 1-30: electrophorogram of mixed samples of different varieties; A-J: 10 tested varieties.

图3
Fig. 3

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	图3 引物NAU2083在15个单株(新陆早13和新陆中37)的扩增结果 M: marker; a: 新陆早13的电泳扩增图; b: 新陆中37的电泳扩增图。Fig. 3 Amplified result of 15 single plants (Xinluzao 13 and Xinluzhong 37) with primer NAU2083 M: marker; a: electrophorogram of Xinluzao 13; b: electrophorogram of Xinluzhong 37.

图4

Amplified result of standard sample and 10 detection varieties with primer CGR5707 M: marker; A~J: 10个供试品种。M: marker; A-J: 10 tested varieties.

	Figure OptionViewDownloadNew Window
	图4 引物CGR5707在标准样品与10个供试样品的扩增结果Fig. 4

利用该方法不仅实现了供试样品与标准样品的鉴定, 而且10个供试样品也能够相互区分, 统计结果如表3。26对核心引物成功鉴定出了10份棉花材料的真实性, 说明所选核心引物具有鉴别能力和区分能力。
表3
Table 3
表3(Table 3)

表3 10份供试样品真实性鉴定结果统计表 Table 3 Authenticity identification result of ten varieties 编号 Code 3组混样间差异位点数 Number of different loci among the 3 mixed samples 供试样品与标准样品间差异位点数 Number of different loci between detection varieties and sample A 0 0 B 8 14 C 10 13 D 6 8 E 13 17 F 8 16 G 11 11 H 5 15 I 10 18 J 4 10

表3 10份供试样品真实性鉴定结果统计表 Table 3 Authenticity identification result of ten varieties

2.3 棉花品种纯度检测2.3.1 SSR分子检测 分别从26对核心引物中筛选5对特征引物作为纯度检测标记(表4), 采用单位点平均法统计4份常规棉品种100个单株的纯度检测结果(图5)。带型统计结果表明, 同一品种不同引物的一致性带型存在较大的差异, 中棉所49在5对引物中的一致性变化范围在94%~98%之间, 平均95.3%, 经统计, 源棉1号品种的纯度为90.5%, 源棉2号品种的纯度为94.7%, 源棉6号品种的纯度为98%。
图5
Fig. 5

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	图5 引物BNL3860在100个单株(中棉所49)的纯度扩增结果M: marker; 1~100: 100个单株的电泳扩增效果图; ▲: 检出的杂株。Fig. 5 Amplified result of 100 plants of Zhongmiansuo 49 with primer NAU2083 M: marker; 1-100: banding patterns of 100 plants; ▲: detected variant strains.

表4
Table 4
表4(Table 4)

表4 常规棉品种纯度检测引物信息表 Table 4 Primer information of purity test in inbred cotton varieties 品种 Variety 特征引物 Specific primer 中棉所49 Zhongmiansuo 49 BNL3442, BNL3860, JESPR190, JESPR158, BNL1694 源棉1号 Yuanmian 1 BNL530, BNL598, CGR5707, CGR5576, DPL0111 源棉2号 Yuanmian 2 HAUl413, MUSS95, NAU2277, NAU2083, NAU1071 源棉6号 Yuanmian 6 JESPR13, CGR5651, CIR246, TMB2295, NAU1200

表4 常规棉品种纯度检测引物信息表 Table 4 Primer information of purity test in inbred cotton varieties

2.3.2 SSR分子检测与田间种植鉴定分析 为了进一步验证分子检测结果的可靠性, 根据中棉所49、源棉1号、源棉2号、源棉6号品种区域试验和审定所描述的田间表型性状, 在盛铃期对其进行调查(表5)。
表5
Table 5
表5(Table 5)

表5 4个棉花品种纯度的田间形态鉴定结果 Table 5 Purity of four cotton varieties identified by morphological method 品种名称 Variety name 杂株数 Abnormal plants number 总株数 Total plants number 纯度值 Purity (%) 中棉所49 Zhongmiansuo 49 3 100 97 源棉1号Yuanmian 1 8 100 92 源棉2号Yuanmian 2 4 100 96 源棉6号Yuanmian 6 1 100 99

表5 4个棉花品种纯度的田间形态鉴定结果 Table 5 Purity of four cotton varieties identified by morphological method

结果显示两种方法鉴定结果一致, 其纯度由高到低均为源棉6号> 中棉所49> 源棉2号> 源棉1号, 但对同一品种的纯度, 田间种植鉴定结果均高于分子标记检测结果(表6)。
表6
Table 6
表6(Table 6)

表6 分子标记鉴定法与田间形态鉴定纯度结果比较 Table 6 Comparison of purity by molecular marker identification and morphological identification (%) 鉴定方法 Identification method 中棉所49 Zhongmiansuo 49 源棉1号 Yuanmian 1 源棉2号 Yuanmian 2 源棉6号 Yuanmian 6 田间形态鉴定Morphological identification 97.0 92.0 96.0 99 分子标记鉴定Molecular marker identification 95.3 90.5 94.7 98

表6 分子标记鉴定法与田间形态鉴定纯度结果比较 Table 6 Comparison of purity by molecular marker identification and morphological identification (%)

3 讨论棉花品种真实性和纯度鉴定结果是棉花质量监控和品种权保护的依据。利用SSR标记进行品种真实性鉴定和纯度检测在大多作物中已有报道^{[16, 17, 18]}, 在棉花品种鉴定研究中也取得了一定进展。随着分子标记技术不断简化, 完成1个品种鉴定的试验仅需1 d左右, 与形态标记相比, 具有准确、快速、经济的优势。
利用SSR标记进行品种鉴定, 引物的筛选是关键。刘国栋等^[8]认为选择标记时, 应尽量覆盖到棉花的26条染色体。本研究以具有典型代表性的材料, 从分布于棉花全基因组的586对SSR标记中筛选出26对具有稳定多态性的引物, 作为SSR分子鉴定的核心标记, 26对核心标记均匀分布于棉花26条染色体上。每条染色体上选择一对引物, 能最大限度地减少位点间的连锁, 以保证真实性和纯度鉴定时结果的可靠性。
真实性鉴定涉及不同样品之间的关系, 检测结果用不同、近似、相同表示。结果判读时, 设定不同棉花品种界定以2个差异标记为限: 当两个品种混样图谱之间2个以上差异标记时, 可判读为不同品种; 当两品种混样图谱之间有小于等于2个差异标记时, 可判读为近似品种或相同品种。26个核心标记不仅实现了不同供试样品与标准对照的鉴定, 且不同样品间也能相互区分。这与王俊芳^[18]在棉花上的研究结果一致。棉花是常异花授粉作物, 天然异交率达5%~20%^[19], 种群内遗传多样性丰富, 刘文献等^[20]认为最佳取样量应包含品种95%以上的遗传变异类型。研究
发现, 当取样量为3个单株时, 所包含的遗传变异占比为82.4%~92.3%, 随着取样量的增加, 所包含的遗传变异占比也随之增加。当取样量在12个及12个以上单株时, 品种包含的遗传变异占比均超过95%, 且随着取样量的增加占比变化幅度不显著^[11]。本文选定的15个单株取样量, 既能较好地满足群体遗传信息的要求, 又能合理控制工作量。混合样品法能够提高鉴定效率, 本试验先对5个单株叶片的DNA等量混合进行SSR鉴定, 对于同一位点上谱带不一致的组, 再对构成各组混样的单株进行检测。这种先采用混合取样鉴定, 再对表现杂合组个体鉴定的方法, 使工作量减少了4/5, 远比对单株进行检测节省时间和成本。
品种纯度的鉴定则以本品种的株数占供检样品总株数的百分率表示, 匡猛等^[21]认为用SSR标记鉴定棉花品种纯度时, 不同的统计方法与标记类型获得的分子标记检测结果差异较大; 朱美霞等^[5]认为对于纯度较高的品种只需要2~4对引物即可获得满意的检测结果; 但对于纯度较低的棉花品种, 则至少需要5对引物, 甚至10对引物才可以获得较为精确的检测结果。本研究利用5个核心标记及单位点平均法统计样品纯度。SSR标记检测结果均低于田间检测结果, 且SSR标记检测纯度较低的品种, 田间检测纯度也相对较低, 反过来也是如此, 两者呈正相关性, 表明SSR标记检测结果在一定程度上可以反应形态学检测的品种纯度高低。
The authors have declared that no competing interests exist.

作者已声明无竞争性利益关系。


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被引期刊影响因子

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