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土壤氮磷添加下豆科草本植物生物固氮与磷获取策略的权衡机制

本站小编 Free考研考试/2022-01-01

李强,*, 黄迎新, 周道玮, 丛山中国科学院东北地理与农业生态研究所, 吉林省草地畜牧重点实验室, 长春 130102

Mechanism of the trade-off between biological nitrogen fixation and phosphorus acquisition strategies of herbaceous legumes under nitrogen and phosphorus addition

Qiang LI,*, Ying-Xin HUANG, Dao-Wei ZHOU, Shan CONGNortheast Institute of Geography and Agroecology, Chinese Academy of Sciences, Jilin Provincial Key Laboratory of Grassland Farming, Changchun 130102, China

通讯作者: * E-mail:liqiang@iga.ac.cn

编委: 吕晓涛
责任编辑: 赵航
收稿日期:2020-07-17接受日期:2020-10-22网络出版日期:2021-03-20
基金资助:中国科学院战略先导专项(XDA23060403)
国家自然科学基金(31600318)


Received:2020-07-17Accepted:2020-10-22Online:2021-03-20
Fund supported: Strategic Science and Technology Guide Project of CAS(XDA23060403)
National Natural Science Foundation of China(31600318)


摘要
豆科草本植物固氮是陆地生态系统重要的自然氮输入方式, 影响着草地生产的经济性和可持续性。为探讨氮磷交互作用影响豆科草本植物生物固氮率的潜在生理生态机制, 该研究选取8种豆科草本植物分别种植在对照、氮肥添加、磷肥添加和氮磷耦合添加处理的土壤中, 进行野外盆栽实验。测定了初花期植物生物量和营养含量、根部碳水化合物含量、根际pH、根际柠檬酸含量、根际有效磷含量、植物根瘤生物量、磷含量及其生物固氮率。主要结果: 依赖于豆科物种, 氮添加显著促进了豆科草本植物根际磷的活化, 降低了根生物量分配以及根系非结构性碳水化合物含量。在两种磷添加处理下, 氮添加导致8种豆科草本植物根瘤生物量平均下降27%-36%, 生物固氮率平均下降20%-33%。磷添加降低了根际的磷活化, 但促进了豆科草本植物根系发育和非结构性碳水化合物的积累。在施氮和不施氮条件下, 磷添加分别使8种豆科草本植物的生物固氮率提高了45%-69%和0-47%。氮添加降低豆科草本植物生物固氮率, 其原因是氮添加提高了植物磷需求, 为活化更多磷, 豆科草本植物降低根系生物量和根系非结构性碳水化合物的含量, 导致根瘤发育受到限制。在氮添加的同时进行磷添加, 能够改善土壤氮磷平衡, 促进根系生长和非结构性碳水化合物积累, 缓解了增氮对生物固氮的抑制作用。
关键词: 氮固定;磷活化;豆科饲草;根际;根瘤;共生

Abstract
Aims Nitrogen fixation of herbaceous legumes is not only an important natural nitrogen (N) input to terrestrial ecosystems, but also determines the economy and sustainability of grassland production. This study aimed to determine the underlying physiological and ecological mechanisms of the interaction between N and phosphorus (P) on biological N fixation rate of legumes.
Methods In a pot experiment, eight species of herbaceous legumes were separately grown in soils with four treatments including no fertiliser, N addition, P addition, and both N and P (NP) addition. Plant biomass and nutrients concentrations, root carbohydrate concentration, pH in rhizosphere, citric concentration in in rhizosphere, avaiable P concentration in rhizosphere, root nodule biomass, P concentration in root nodule, and N fixation rate of these legume plants were examined.
Important findings Depending on legume species, N addition significantly increased relative rhizosphere P mobilization, but reduced investment in root biomass and the concentration of non-structural carbohydrate (NSC) in roots. Averaged results of N addition and NP addition treatments indicated that N addition caused 27%-36% decline in nodule biomass and 20%-33% decline in biological N fixation rate for the studied eight legume species. By contrast, P addition significantly promoted root development and NSC accumulation associated with decreasing relative rhizosphere P mobilization. Consequently, P addition increased the biological N fixation rate of the eight legume species by 45%-69% and 0-47% with and without N fertilization, respectively. We concluded that N addition reduced biological N fixation rate via reducing root biomass and root NSC concentration and increasing rhizosphere P mobilization; P addition helped to improve soil N-P balance and promote root growth and NSC accumulation, which can alleviate the inhibition of biological N fixation by N fertilization.
Keywords:nitrogen fixation;phosphorus mobilization;legume forage;rhizosphere;root nodule;symbiotic


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引用本文
李强, 黄迎新, 周道玮, 丛山. 土壤氮磷添加下豆科草本植物生物固氮与磷获取策略的权衡机制. 植物生态学报, 2021, 45(3): 286-297. DOI: 10.17521/cjpe.2020.0241
LI Qiang, HUANG Ying-Xin, ZHOU Dao-Wei, CONG Shan. Mechanism of the trade-off between biological nitrogen fixation and phosphorus acquisition strategies of herbaceous legumes under nitrogen and phosphorus addition. Chinese Journal of Plant Ecology, 2021, 45(3): 286-297. DOI: 10.17521/cjpe.2020.0241




生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020)。外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013)。然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入。以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005)。这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005)。这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象。然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019)。

磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017)。因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014)。研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012)。尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏。基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制。在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用。先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003)。这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用。然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解。

磷限制影响豆科植物根瘤细胞的构建, 并影响生物固氮过程中的能量供应(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014)。然而, 并不清楚氮增加导致的相对磷匮乏是否已经经由降低植物和根瘤磷吸收来抑制根系结瘤和生物固氮率。此外, 在磷资源限制下, 许多陆地植物, 尤其豆科植物已经发展了物种特异性的适应机制, 诸如强化植物-菌根互作、刺激根际磷活化等来满足植物磷需求(Nuruzzaman, 2006; Zhou et al., 2009)。进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017)。然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知。

本研究利用8种豆科草本植物作为栽培实验材料, 通过氮磷交互添加实验, 探究氮磷交互作用影响豆科植物生物固氮率的生理和生态机制。本文主要阐明2个科学问题: 1)氮添加是否通过限制豆科草本植物及其根瘤磷吸收降低其生物固氮率? 2)如果豆科草本草植物磷吸收未受影响, 氮增加怎样刺激豆科草本植物的磷获取策略来满足磷吸收, 并导致豆科草本生理如何变化? 结果对生物固氮率有何影响?

1 材料和方法

1.1 研究地点

室外盆栽实验在中国科学院长岭草地农牧研究站(123.52° E, 44.55° N; 海拔145 m)执行。该地点2000-2016年间, 年平均气温5.5 ℃, 年降水量404 mm, 70%以上的降水发生在5-9月。土壤类型为草甸盐碱土, 羊草(Leymus chinensis)为该区域优势植物物种。

1.2 盆栽实验设计

利用在松嫩草甸种植的8种豆科草本植物为实验材料, 包括4个本地物种(花苜蓿(Medicago ruthenica)、兴安胡枝子(Lespedeza davurica)、草木樨(Melilotus officinalis)、野大豆(Glycine soja)), 以及4个引种物种(紫花苜蓿(Medicago sativa)、黄花苜蓿(Medicago falcata)、杂花苜蓿(Medicago varia)和百脉根(Lotus corniculatus))。本研究使用该研究区天然植被的优势物种, 并且和本研究中多数豆科草本植物有共存关系的羊草作为豆科草本植物固氮评估的参照植物。我们的前期实验表明使用羊草做参照植物获得的豆科草本植物固氮评估数据相近于使用多种参照植物获得的平均测量数据(Li et al., 2015)。所有植物种子于2016年收集自中国科学院长岭草地农牧生态研究站内的天然草地及豆科草本植物种子田。2017年6-9月间, 所有植物被分别种植生长在无渗漏的塑料花盆中(高30 cm, 直径25 cm)。实验土壤收集自天然草甸0-30 cm土层, 过2 mm筛后混匀。每盆装入等量的实验土壤, 实验土壤的初始理化性质为pH 8.74、有机质含量17.3 g·kg-1、总氮含量1.26 g·kg-1、总磷含量0.31 g·kg-1, 植物化学计量学的研究证据表明该研究位点土壤处于氮限制状态(宋彦涛等, 2012)。植物种植前, 所有种子进行表面消毒, 然后先置于浅沙盘中发芽。待种子发芽后, 同一物种4个发芽的种子被转移种植入一个花盆。为保障每种豆科草本植物生长和固氮不受土壤中相应根瘤菌的数量限制, 田间收集每种植物的新鲜根瘤, 采用破碎的根瘤菌液对每种植物进行根瘤接种。

实验采取完全随机区组设计, 所有实验花盆按重复分3组摆放, 每组内设置8个物种、2个氮添加水平(0、14 g·m-2, NH4NO3)和2个磷添加水平(0、3.5 g·m-2, Ca(H2PO4)2·H2O)交互处理, 组内各处理花盆位置随机摆放。相似气候区的研究认为14 g·m-2的氮添加量足够解除本区植物生长的氮限制(Bai et al., 2010; Zhan et al., 2017), 磷的添加率基于氮添加率和实验土壤N:P比例设置。氮磷肥料分3次溶解于水中施入花盆。整个实验期间, 花盆露天放置, 隔绝降水。基于花盆面积和当地正常降水量考量, 间隔3-4天, 每盆植物浇灌1 000 mL水(相当于每隔3-4天接受20 mm降水), 保证植物生长不受水分限制。为保证实验过程中各处理植物所接受的光等资源随机一致, 重复组内花盆位置每周随机调换一次。

1.3 测量和取样

参考邹长明等(2015)的研究, 当每种豆科草本植物生长至初花期(近于豆科草本植物最大地上生物量时期), 进行收获取样。取样时, 将长有植物的完整土壤与花盆小心分离。然后, 将土壤轻柔敲碎并分离携带根际土壤的植株。本研究中, 根际被定义为距根表面2 mm范围内的土壤, 这一范围被认为是豆科植物主要的根系磷吸收区(Hinsinger, 1998; Nuruzzaman et al., 2006)。使用一个柔软的小毛刷细致收集黏附在根上的根际土壤。每盆中所有植物的根际土壤组合为一个样品。然后, 将分离的植物个体在水龙头下小心清洗根部。然后, 将植株分为地上、根部和根瘤3部分, 查数根瘤数量。每盆随机选取1株植物的新鲜根系材料进行菌根侵染和根系磷酸酶活性检验。余下的植物材料在60 ℃下分别烘干、称质量。每个花盆中, 一株植株的所有部分组合并粉碎用于15N同位素分析。每盆植物剩余地上、根系和根瘤样品分类合并粉碎, 部分样品用于分析氮磷含量, 根系样品同时用于分析非结构性碳水化合物含量。植物和根际土壤取样后, 将非根际土壤混合均匀后取样。

1.4 植物土壤分析

为测量菌根侵染率, 依据Wu等(2015)的方法, 部分根被切为8个1 cm长根段, 经净化、软化、酸化、染色和去色等步骤后压片镜检。菌根侵染率根据下面公式计算:

菌根侵染率(%) = (侵染根长度/总镜检根长度) × 100
羊草和豆科草本植物的15N同位素丰度使用ThermoFisher MAT253同位素比质谱仪(ThermoFisher, Waltham, USA)分析。总氮含量采用凯氏定氮法(Sparks et al., 1996)测定, 总磷含量通过过硫酸氧化消解后采用分光光度计测定(Schade et al., 2003)。非结构性碳水化合物(NSC)含量依据Buysse和Merckx (1993)改进的比色法测定。部分根际土壤经由0.2 μmol·L -1CaCl2溶液浸提, 取悬浮液冷冻于-20 ℃。悬浮液经100 ℃水浴1 h, 然后在3 500 r·min-1下离心10 min, 再经0.45 μm滤膜过滤, 然后, 使用离子色谱测定柠檬酸含量(Baziramakenga et al., 1995)。剩余根际和非根际土壤样品于50 ℃下烘干, 然后研磨过0.2 mm筛, 土壤有效磷含量经NaHCO3溶液浸提后根据Olsen等(1954)的方法测定。根际土壤经超纯水浸提后采用PHS-25 pH计测定。部分非根际土壤样品冷冻于-20 ℃, 然后经2 mol·mol-1 KCl溶液浸提后, NH4+和NO3-含量使用Bran-Luebbe AA3自动分析仪(Bran-Luebbe, Hamburg, Germany)测定(Miller & Keeney, 1982)。所有养分含量特征基于土壤干质量计量。

1.5 数据计算和统计分析

豆科草本植物组织中生物固氮率(BNF,%)采用如下公式计算(Unkovich et al., 2008):

$BNF=100\ \ \times \ \ \left( \frac{{{\delta }^{15}}{{\text{N}}_{}}-{{\delta }^{\text{15}}}{{\text{N}}_{}}}{{{\delta }^{15}}{{\text{N}}_{}}-B} \right)$
式中,${{\delta }^{15}}$N表示植物组织相对大气的15N原子丰度变化。B代表豆科草本植物组织完全依赖大气氮生长时的${{\delta }^{\text{15}}}\text{N}$。本研究采用整株植物材料来评估生物固氮, 这时整株植株的15N丰度应与大气一致, 所以B等于0 (Unkovich et al., 2008)。根际磷活化效应定义为根际土壤有效磷含量与非根际土壤有效磷含量的比值(Zhan et al., 2017)。

所有数据在统计前先进行正态分布和方差齐性检验。采用混合线性模型分析氮磷添加及其交互作用对土壤养分特征的影响, 其中, 氮、磷添加及其交互作用作为固定效应, 豆科物种作为随机效应。采用一般线性模型分析氮、磷添加、物种及其交互作用对其他测量指标的影响。多重比较通过邓肯检验(Duncan’s test)实现。每个处理下所有8个豆草物种每个重复的平均值被用于进一步的回归分析, 检验根生物量、根碳水化合物含量和根系菌根侵染率及根际化学的相关性, 并检验根生物量、根碳水化合物含量、根际磷活化和豆草生物固氮率的相关关系。统计显著性水平设置为p< 0.05。所有数据分析通过SPSS 17.0实现。

2 结果

2.1 土壤氮磷有效性

氮添加使土壤有效氮含量平均增加93%, 并促使土壤有效氮磷比显著提高, 而磷添加促使土壤有效磷含量平均增加82%, 并导致土壤有效氮磷比显著下降(表1)。

Table 1
表1
表1氮、磷添加及其交互作用影响的土壤有效氮、磷含量和有效氮磷比例(平均值±标准误)
Table 1Effect of nitrogen (N) and phosphorus (P) addition and their interaction on available N and P concentration and available N:P ratio in bulk soil (mean ± SE)
处理
Treatment
有效氮
Available N (mg·kg-1)
有效磷
Available P (mg·kg-1)
N:P
Control37.05 ± 0.505.08 ± 0.07 a7.31 ± 0.13 c
N72.02 ± 1.15 a5.11 ± 0.05 a14.12 ± 0.25 a
P37.65 ± 0.64 b9.36 ± 0.11 b4.03 ± 0.07 d
NP71.91 ± 1.02 a9.18 ± 0.09 b7.84 ± 0.38 b
Control, 无肥料添加; N, 氮添加; P, 磷添加; NP, 氮磷耦合添加。不同小写字母代表施肥处理间差异显著(p < 0.05)。
Control, no fertiliser addition; N, nitrogen addition; P, phosphorus addition; NP, coupling nitrogen and phosphorus addition. Different lowercase letters indicate significant differences among fertilization treatments (p < 0.05).

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2.2 植物生物量和养分含量

平均两个磷添加处理, 氮添加促使8种豆科草本植物地上生物量增加25%-44% (图1A)。在无氮和氮添加下, 磷添加分别促使不同豆科草本植物根生物量增加11%-31%和20%-36% (图1B)。综合两个磷添加处理, 氮添加促使8种豆科草本植物氮含量提高14%-26%, 综合两个氮添加处理, 不同豆科草本植物氮含量在磷添加后的变化范围为-7%-9% (图2A)。依赖于豆科物种, 氮添加对豆科草本植物磷含量的作用从降低6.7% (紫花苜蓿)到增加5% (兴安胡枝子), 两种氮添加处理下, 磷添加促使8种豆科草本植物磷含量提高10%-22% (图2B)。不同豆科草本植物氮磷比的变化与土壤有效氮磷比保持一致(图2C)。

图1

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图1氮、磷添加及其交互作用对不同豆科草本植物地上生物量(A)和根生物量(B)(平均值±标准误)的影响。Control, 无养分添加; N, 氮添加; P, 磷添加; NP, 氮磷耦合添加; S, 物种。GS, 野大豆; LC, 百脉根; LD, 兴安胡枝子; MF, 黄花苜蓿; MO, 草木樨; MR, 花苜蓿; MS, 紫花苜蓿; MV, 杂花苜蓿。星号表示经一般线性模型统计分析得因子效应具有显著性。***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05。

Fig. 1Influence of nitrogen (N) and phosphorus (P) addition and their interaction on shoot biomass (A) and root biomass (B)(mean ± SE) of different herbaceous legumes. Control, no nutrient addition; N, N addition; P, P addition; NP, coupled addition of N and P; S, species. GS, Glycine soja; LC, Lotus corniculatus; LD, Lespedeza daurica; MF, Medicago falcata; MO, Melilotus officinalis; MR, Medicago ruthenica; MS, Medicago sativa; MV, Medicago varia. Asterisks indicate that factor effect was significant by general linear model analysis. ***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05.



图2

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图2氮、磷添加及其交互作用对不同豆科草本植物氮含量(A)、磷含量(B)和氮磷比(C)(平均值±标准误)的影响。Control, 无养分添加; N, 氮添加; P, 磷添加; NP, 氮磷耦合添加; S, 物种。GS, 野大豆; LC, 百脉根; LD, 兴安胡枝子; MF, 黄花苜蓿; MO, 草木樨; MR, 花苜蓿; MS, 紫花苜蓿; MV, 杂花苜蓿。星号表示经一般线性模型统计分析得因子效应具有显著性。***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05。

Fig. 2Influence of nitrogen (N) and phosphorus (P) addition and their interaction on plant N concentration (A), plant P concentration (B) and plant N:P ratio (C)(mean ± SE) of different herbaceous legumes. Control, no nutrient addition; N, N addition; P, P addition; NP, coupled addition of N and P; S, species. GS, Glycine soja; LC, Lotus corniculatus; LD, Lespedeza daurica; MF, Medicago falcata; MO, Melilotus officinalis; MR, Medicago ruthenica; MS, Medicago sativa; MV, Medicago varia. Asterisks indicate that factor effect was significant by general linear model analysis. ***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05.



2.3 根际磷活化、根生理和根际化学

在无磷和磷添加下, 氮添加分别导致8种豆科草本植物根际磷活化增加15%-33%和7%-21%, 综合两个氮添加处理, 磷添加促使8种豆科草本植物根际磷活化降低37%-41% (图3A、3B)。在无磷或磷添加下, 氮添加使豆科草本植物根部非结构性碳水化合物含量平均降低10%或增加3%, 不同豆科草本植物根非结构性碳水化合物含量对氮添加的响应存在差异。综合两个氮添加处理, 磷添加促使8种豆科草本植物根部非结构性碳水化合物含量增加25%-42% (图4A)。氮添加对豆科草本植物根系菌根侵染率无显著作用, 而磷添加降低豆科草本植物根系的菌根侵染率(图4B)。无磷/磷添加下, 氮添加分别促使8种豆科草本植物根际土壤pH下降0.52-0.80或0.03-0.37 (图4C), 磷添加显著增加豆科草本植物根际土壤pH。相反, 无磷/磷添加下, 氮添加平均促使豆科草本植物根际柠檬酸含量增加20%或4%, 磷添加显著降低豆科草本植物根际柠檬酸含量(图4D)。

图3

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图3氮、磷添加及其交互作用对不同豆科草本植物根际有效磷含量(A)和根际磷活化效应(B)(平均值±标准误)的影响。Control, 无养分添加; N, 氮添加; P, 磷添加; NP, 氮磷耦合添加; S, 物种。GS, 野大豆; LC, 百脉根; LD, 兴安胡枝子; MF, 黄花苜蓿; MO, 草木樨; MR, 花苜蓿; MS, 紫花苜蓿; MV, 杂花苜蓿。星号表示经一般线性模型统计分析得因子效应具有显著性。***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05。

Fig. 3Influence of nitrogen (N) and phosphorus (P) addition and their interaction on available P concentration in rhizosphere (A) and P mobilization in rhizosphere (B)(mean ± SE) of different herbaceous legumes. Control, no nutrient addition; N, N addition; P, P addition; NP, coupled addition of N and P; S, species. GS, Glycine soja; LC, Lotus corniculatus; LD, Lespedeza daurica; MF, Medicago falcata; MO, Melilotus officinalis; MR, Medicago ruthenica; MS, Medicago sativa; MV, Medicago varia. Asterisks indicate that factor effect was significant by general linear model analysis. ***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05.



图4

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图4氮、磷添加及其交互作用对不同豆科草本植物根系非结构性碳水化合物(NSC)含量(A)、根系的菌根(AM)侵染率(B)、根际pH (C)和根际柠檬酸含量(D)(平均值±标准误)的影响。Control, 无养分添加; N, 氮添加; P, 磷添加; NP, 氮磷耦合添加; S, 物种。GS, 野大豆; LC, 百脉根; LD, 兴安胡枝子; MF, 黄花苜蓿; MO, 草木樨; MR, 花苜蓿; MS, 紫花苜蓿; MV, 杂花苜蓿。星号表示经一般线性模型统计分析得因子效应具有显著性。***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05。

Fig. 4Influence of nitrogen (N) and phosphorus (P) addition and their interaction on non-structure carbohydrate (NSC) concentration in root (A), arbuscular mycorrhizal (AM) colonization rate of root (B), pH in rhizosphere (C) and citric concentration in rhizosphere (D)(mean ± SE) of different herbaceous legumes. Control, no nutrient addition; N, N addition; P, P addition; NP, coupled addition of N and P; S, species. GS, Glycine soja; LC, Lotus corniculatus; LD, Lespedeza daurica; MF, Medicago falcata; MO, Melilotus officinalis; MR, Medicago ruthenica; MS, Medicago sativa; MV, Medicago varia. Asterisks indicate that factor effect was significant by general linear model analysis. ***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05.



对于所有豆科草本植物, 平均根生物量及根非结构性碳水化合物含量与根部菌根侵染率、根际柠檬酸含量存在负相关关系, 然而, 平均根生物量及根非结构性碳水化合物含量与根际土壤pH存在显著正相关关系(图5)。

图5

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图5不同养分添加下8种豆科草本植物平均根生物量与根系菌根(AM)侵染率(A)、根际土壤pH (B)、根际柠檬酸含量(C)间相关关系, 及平均根系非结构性碳水化合物(NSC)含量与AM侵染率(D)、根际土壤pH (E)、根际柠檬酸含量(F)(平均值±标准误)间相关关系。

Fig. 5Correlation relationships between mean root biomass and arbuscular mycorrhizal (AM) colonization rate of root (A), soil pH in rhizosphere (B), citric concentration in rhizosphere (C), and between mean non-structure carbohydrate (NSC) concentration in root and AM colonization rate of root (D), soil pH in rhizosphere (E), citric concentration in rhizosphere (F)(mean ± SE) following different nutrient addition treatments on eight herbaceous legumes.



2.4 根瘤发育和生物固氮率

受限于磷资源的有效性和豆科物种, 氮添加降低豆科草本植物根瘤数量和生物量, 在无磷/磷添加下, 氮添加导致豆科草本植物生物固氮率分别下降了27%-47%和16%-22%, 综合两个氮添加处理, 磷添加促使8种豆科草本植物生物固氮率提高17%-57% (图6A、6B、6D)。然而, 氮添加对根瘤的磷含量并没有显著影响, 磷添加提高了豆科草本植物根瘤磷含量(图6C)。

图6

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图6氮、磷添加及其交互作用对不同豆科草本植物根瘤数目(A)、根瘤生物量(B)、根瘤磷含量(C)和生物固氮率(BNF)(D)(平均值±标准误)的影响。Control, 无养分添加; N, 氮添加; P, 磷添加; NP, 氮磷耦合添加; S, 物种。GS, 野大豆; LC, 百脉根; LD, 兴安胡枝子; MF, 黄花苜蓿; MO, 草木樨; MR, 花苜蓿; MS, 紫花苜蓿; MV, 杂花苜蓿。星号表示经一般线性模型统计分析得因子效应具有显著性。***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05。

Fig. 6Influence of nitrogen (N) and phosphorus (P) addition and their interaction on root nodule number (A), root nodule biomass (B), root nodule P concentration (C) and biological N fixation rate (BNF)(D)(mean ± SE) of different herbaceous legumes. Control, no nutrient addition; N, N addition; P, P addition; NP, coupled addition of N and P; S, species. GS, Glycine soja; LC, Lotus corniculatus; LD, Lespedeza daurica; MF, Medicago falcata; MO, Melilotus officinalis; MR, Medicago ruthenica; MS, Medicago sativa; MV, Medicago varia. Asterisks indicate that factor effect was significant by general linear model analysis. ***, p < 0.001; **, p < 0.01; *, p < 0.05.



回归分析表明, 随着不同的养分添加, 根生物量及其非结构性碳水化合物含量与豆科草本植物生物固氮率间存在显著正相关关系(图7), 而豆科草本植物根际的磷活化效应与其生物固氮率间存在显著负相关关系(图8)。

图7

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图7不同养分添加下8种豆科草本植物平均根生物量(A)、根非结构性碳水化合物(NSC)含量(B)与豆科草本植物生物固氮率(BNF)(平均值±标准误)间相关关系。

Fig. 7Correlation relationships between root biomass (A), root non-structure carbohydrate (NSC) concentration (B) and biological nitrogen fixation of legume (BNF)(mean ± SE) following different nutrient addition treatments on eight herbaceous legumes.



图8

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图8不同养分添加下8种豆科草本植物平均根际磷活化效应与豆科草本植物生物固氮率(BNF)(平均值±标准误)间相关关系。

Fig. 8Correlation relationships between phosphorus (P) mobilization effect in rhizosphere and biological nitrogen fixation rate of legume (BNF)(mean ± SE) following different nutrient addition treatments on eight herbaceous legumes.



3 讨论

3.1 根系生物量和根部非结构性碳水化合物含量的下降导致豆科草本植物固氮抑制

生物固氮和吸收土壤氮是豆科植物两个可供选择的氮获取策略(Ledgard et al., 2001)。如果排除其他环境限制, 土壤氮资源的状态是豆科植物氮获取策略选择的关键决定因素(West et al., 2005)。氮添加提高了土壤氮资源有效性, 可能降低豆科植物为获取大气氮而对根和根瘤发育的投资。再者, 增加的土壤氮有效性可能将豆科草本植物间竞争的压力从地下转移到地上(Farrer & Suding, 2016), 诱使植物投资更多资源到地上生物量用以捕获光, 并因此限制根系发育(Aerts et al., 1991)。本研究中, 对比无肥料添加, 氮添加提高了地上生物量, 并小幅降低根生物量, 已经表明了氮添加下豆科草本植物生物量分配的转移。同时, 我们的研究也发现氮添加降低了豆科草本植物根部非结构性碳水化合物的含量, 间接地表明土壤氮资源的增加可能改变了光合产物的分配, 促使豆科草本植物将更多的光合产物转移并储存在地上, 并导致根部碳水化合物营养储存的下降。

实际上, 本研究发现氮有效性并不是影响豆科草本植物根生物量和根非结构性碳水化合物的独立因素, 因为磷对氮添加效应有显著的调控作用(图1B, 图4A)。由增加的根际磷活化能够判断氮添加加剧了植物磷营养限制, 这一过程很可能通过改变豆科草本植物根部磷代谢生理影响根生物量和非结构性碳水化合物含量。而根据本研究结果, 磷活化的增加也可能同样降低根生物量和根非结构性碳水化合物含量(图5)。豆科植物根系为根瘤细菌提供了共生位点, 并将碳水化合物等养分输送至根瘤支持其生长代谢(Ledgard & Steele, 1992), 因此豆科植物根系的生物量和碳水化合物含量对根瘤固氮有重要的调控作用, 本研究的结果已经发现根生物量、根碳水化合物含量与豆科草本植物生物固氮率间存在显著的正相关关系(图7)。上述讨论表明不管单独的氮增加, 还是相对的磷限制, 氮添加都能够通过降低根生物量和根系碳水化合物含量降低豆科草本植物的生物固氮率。

3.2 氮增加下豆科草本植物生物固氮和磷吸收的权衡

本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证。氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017)。然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给。而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012)。因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收。已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012)。此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006)。当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略。众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019)。此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006)。因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5)。本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率。

最近的meta分析发现, 氮增加对生物固氮的作用随生态系统类型、地理位置、气候条件等的变化而发生改变(Zheng et al., 2019)。实际上这些大尺度环境因子可能已经通过改变土壤养分背景而调控了氮增加对生物固氮的影响。先前的研究发现氮增加有时并不下调豆科植物生物固氮率, 并将其归因为该生态系统具有较低的土壤氮水平, 导致该生态系统即使在氮增加情境下也处于持续的氮限制状态(Reed et al., 2007)。通过本研究, 我们进一步指出土壤磷有效性调控N:P平衡, 对氮增加下的豆科草本植物生物固氮率具有重要调节作用(Gentili & Huss-Danell, 2003)。实际上, 在陆地生态系统中, 磷对植物生长的限制可能远比之前认定的要普遍, 尤其在人类诱导的不平衡的氮、磷输入情景下(Mahowald et al., 2008; Vitousek et al., 2010; Li et al., 2016b), 由此磷对豆科植物生物固氮的调控功能将变得越来越重要。

3.3 磷添加缓解氮富集对豆科草本植物生物固氮的抑制作用

磷添加能够促进豆科植物生长和生物固氮(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 主要有两个原因。首先, 磷是固氮豆科植物及其根瘤细胞构建的主要元素, 并且是生物固氮过程中关键的能量驱动要素(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014)。此外, 磷的添加也促进豆科植物生长, 并相应增加其对氮的需求, 由此刺激根瘤生物量和生物固氮的增加以满足氮需要(Batterman et al., 2013)。本研究结果证实磷添加显著提高豆科草本植物生物固氮率。进一步地, 本研究阐述了磷添加促进豆科草本植物固氮的一个新机制, 即磷添加降低豆科草本植物根系-菌根互作和根际磷活化, 因此促进根生物量和根碳水化合物的累积, 间接提高生物固氮率。

更大的氮有效性提高植物磷需求, 增加了土壤磷对豆科草本植物生长和固氮的限制(Vitousek et al., 2010; Png et al., 2017)。因此, 氮富集下补充磷资源对缓解生物固氮的磷限制尤为重要。这一推断被我们的结果所支持, 因为本研究发现氮添加情境下补充磷对豆科草本植物生物固氮率有更大的提升。目前, 由于不成比例的氮磷输入(N >> P), 全球变化和农业活动正在改变许多生态系统的氮磷平衡(Vitousek et al., 2010)。根据我们的研究, 这样的氮富集可能导致豆科植物生物固氮发生不同程度的改变, 其变化程度取决于土壤磷状态。生态系统中磷有效性越低, 氮添加对生物固氮的抑制效应越大。因此, 在高土壤N:P或者高氮沉降速率的环境下, 为增加豆科草本植物生物固氮, 补充磷是明智的选择。本研究中, 平均所有豆科物种, 对比无营养添加, 氮和磷协同添加并未改变豆科草本植物生物固氮率(对照: 41% vs. 氮磷添加: 43%), 这一结果表明3.5 g·m-2的磷添加能够有效缓解14 g·m-2的氮添加对实验豆科草本植物生物固氮的抑制效应。这一结果对本研究区豆科草场的优化管理具有重要指导意义。

4 结论

氮添加下, 松嫩草甸主要豆科草本植物生物固氮率降低, 其潜在机制为氮添加提高了植物磷需求, 豆科草本植物为获取更多磷刺激根际酸化和根系-菌根互作, 因此增加了根部碳水化合物的消耗, 导致根生物量和碳水化合物累积的降低, 并由此限制了根瘤生长及其功能。相反, 磷肥的添加缓解了豆科草本植物的磷限制, 并通过促进根生物量和根碳水化合物的累积提高生物固氮率, 其效应在氮添加下尤为明显。

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In a 2-year experiment, the evergreen shrubsErica tetralix andCalluna vulgaris (dominant on nutrient-poor heathland soils) and the perennial deciduous grassMolinia caerulea (dominant on nutrient-rich heathland soils) were grown in replacement series in a factorial combination of four competition types (no competition, only aboveground competition, only belowground competition, full competition) and two levels of nutrient supply (no nutrients and 10 g N+2 g P+10 g K m yr). Both in the unfertilized and in the fertilized treatmentsMolinia allocated about twice as much biomass to its root system than didErica andCalluna. In all three species the relative amount of biomass allocated to the roots was lower at high than at low nutrient supply. The relative decrease was larger forMolinia than forErica andCalluna. In the fertilized monocultures biomass of all three species exceeded that in the unfertilized series.Molinia showed the greatest biomass increase. In the unfertilized series no effects of interspecific competition on the biomass of each species were observed in either of the competition treatments. In the fertilized mixtures where only belowground competition was possibleMolinia increased its biomass at the expense of bothErica andCalluna. When only aboveground competition was possible no effects of interspecific competition on the biomass of the competing species were observed. However, in contrast with the evergreens,Molinia responded by positioning its leaf layers relatively higher in the canopy. The effects of full competition were similar to those of only belowground competition, so in the fertilized series belowground competition determined the outcome of competition. The high competitive ability ofMolinia at high nutrient supply can be attributed to the combination of (1) a high potential productivity, (2) a high percentage biomass allocation to the roots, (3) an extensive root system exploiting a large soil volume, and (4) plasticity in the spatial arrangement of leaf layers over its tall canopy. In the species under study the allocation patterns entailed no apparent trade-off between the abilities to compete for above- and belowground resources. This study suggests that this trade-off can be overcome by: (1) plasticity in the spatial arrangement of leaf layers and roots, and (2) compensatory phenotypic and species-specific differences in specific leaf area and specific root length.

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Although ecologists have documented the effects of nitrogen enrichment on productivity, diversity and species composition, we know little about the relative importance of the mechanisms driving these effects. We propose that distinct aspects of environmental change associated with N enrichment (resource limitation, asymmetric competition, and interactions with soil microbes) drive different aspects of plant response. We test this in greenhouse mesocosms, experimentally manipulating each factor across three ecosystems: tallgrass prairie, alpine tundra and desert grassland. We found that resource limitation controlled productivity responses to N enrichment in all systems. Asymmetric competition was responsible for diversity declines in two systems. Plant community composition was impacted by both asymmetric competition and altered soil microbes, with some contributions from resource limitation. Results suggest there may be generality in the mechanisms of plant community change with N enrichment. Understanding these links can help us better predict N response across a wide range of ecosystems.? 2016 John Wiley & Sons Ltd/CNRS.

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Medicago truncatula is an important model plant for characterization of P deficiency on leguminous plants at the physiological and molecular levels. Growth optimization of this plant with regard to P supply is the first essential step for elucidation of the role of P in regulation of nodulation. Hence, a study was carried out to address the growth pattern of M. truncatula hydroponically grown at different gradual increases in P levels. The findings revealed that M. truncatula had a narrow P regime, with an optimum P level (12 μM P) which is relatively close to the concentration that induces P toxicity. The accumulated P concentration (2.7 mg g(-1) dry matter), which is normal for other crops and legumes, adversely affected the growth of M. truncatula plants. Under P deficiency, M. truncatula showed a higher symbiotic efficiency with Sinorhizobium meliloti 2011 in comparison with S. meliloti 102F51, partially as a result of higher electron allocation to N2 versus H(+). The total composition of free amino acids in the phloem was significantly affected by P deprivation. This pattern was found to be almost exclusively the result of the increase in the asparagine level, suggesting that asparagine might be the shoot-derived signal that translocates to the nodules and exerts the down-regulation of nitrogenase activity. Additionally, P deprivation was found to have a strong influence on the contents of the nodule carbon metabolites. While levels of sucrose and succinate tended to decrease, a higher accumulation of malate was observed. These findings have provided evidence that N2 fixation of M. truncatula is mediated through an N feedback mechanism which is closely related to nodule carbon metabolism.

Unkovich M, Herridge D, Peoples M, Cadisch G, Boddey B, Giller K, Alves B, Chalk P (2008). Measuring Plant- associated Nitrogen Fixation in Agricultural Systems
Australian Centre for International Agricultural Research, Canberra, Australia.

[本文引用: 2]

Vitousek PM, Cassman K, Cleveland C, Crews T, Field CB, Grimm NB, Howarth RW, Marino R, Martinelli L, Rastetter EB, Sprent JI (2002). Towards an ecological understanding of biological nitrogen fixation
//Boyer EW, Howarth RW. The Nitrogen Cycle at Regional to Global Scales. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, the Netherlands.1-45.

[本文引用: 1]

Vitousek PM, Menge DNL, Reed SC, Cleveland CC (2013). Biological nitrogen fixation: rates, patterns and ecological controls in terrestrial ecosystems
Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 368, 20130119. DOI: 10.1098/rstb.2013.0119.

DOI:10.1098/rstb.2013.0119URL [本文引用: 1]

Vitousek PM, Porder S, Houlton BZ, Chadwick OA (2010). Terrestrial phosphorus limitation: mechanisms, implications, and nitrogen-phosphorus interactions
Ecological Applications, 20, 5-15.

DOI:10.1890/08-0127.1URL [本文引用: 3]

West JB, HilleRisLambers J, Lee TD, Hobbie SE, Reich PB (2005). Legume species identity and soil nitrogen supply determine symbiotic nitrogen-fixation responses to elevated atmospheric [CO2]
New Phytologist, 167, 523-530.

DOI:10.1111/nph.2005.167.issue-2URL [本文引用: 3]

White PJ, Hammond JP (2008). Phosphorus nutrition of terrestrial plants
//White PJ, Hammond JP. The Ecophysiology of Plant-Phosphorus Interactions. Springer, Dordrecht, the Netherlands. 51-81.

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Wu N, Li Z, Liu H, Tang M (2015). Influence of arbuscular mycorrhiza on photosynthesis and water status of Populus cathayana Rehder males and females under salt stress
Acta Physiol Plant, 37, 183.

DOI:10.1007/s11738-015-1932-6URL [本文引用: 1]

Zhan S, Wang Y, Zhu Z, Li W, Bai Y (2017). Nitrogen enrichment alters plant N:P stoichiometry and intensifies phosphorus limitation in a steppe ecosystem
Environmental and Experimental Botany, 134, 21-32.

DOI:10.1016/j.envexpbot.2016.10.014URL [本文引用: 2]

Zheng M, Zhou Z, Luo Y, Zhao P, Mo J (2019). Global pattern and controls of biological nitrogen fixation under nutrient enrichment: a meta-analysis
Global Change Biology, 25, 3018-3030.

DOI:10.1111/gcb.v25.9URL [本文引用: 2]

Zhou LL, Cao J, Zhang FS, Li L (2009). Rhizosphere acidification of faba bean, soybean and maize
Science of the Total Environment, 407, 4356-4362.

DOI:10.1016/j.scitotenv.2009.02.006URL [本文引用: 1]

Zou CM, Wang YQ, Liu Y, Zhang XH, Tang S (2015). Responses of photosynthesis and growth to weak light regime in four legume species
Chinese Journal of Plant Ecology, 39, 909-916.

DOI:10.17521/cjpe.2015.0087URL [本文引用: 1]

[邹长明, 王允青, 刘英, 张晓红, 唐杉 (2015). 四种豆科作物的光合生理和生长发育对弱光的响应
植物生态学报, 39, 909-916.]

DOI:10.17521/cjpe.2015.0087 [本文引用: 1]
为了确定豆科作物作为林果行间套种作物的适宜性, 于2014年通过田间试验和盆栽试验对4种豆科作物的耐阴能力及其光合生理进行了研究。测定全光和弱光处理(全光的48%)下豆科作物在初花期的叶片光合特征参数、光合色素含量与核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶(RuBPCase)活性, 监测其生长发育对弱光的响应。结果表明: 弱光使供试作物的最大净光合速率、光饱和点、光补偿点、表观量子效率和暗呼吸速率不同程度地向耐阴植物变化; 弱光还使供试作物的净光合速率、气孔导度、蒸腾速率、瞬时水分利用效率和RuBPCase活性不同程度地下降, 而胞间CO<sub>2</sub>浓度显著上升; 遮阴后, 乌豇豆(Vigna cylindrica)和绿豆(Vigna radiata)的叶绿素(Chl) a和Chl b含量显著增加, Chl a/b值显著降低, 大猪屎豆(Crotalaria assamica)和望江南(Senna occidentalis)的光合色素含量也有不同程度的变化; 弱光使供试作物茎变细, 侧枝数减少, 生物量和干物质积累效率降低, 根冠比降低, 根瘤量减少, 叶片变小变薄, 叶片数减少, 叶面积指数降低; 弱光胁迫下, 大猪屎豆不开花, 望江南只开花不结实, 而绿豆和乌豇豆开花数减少, 花期缩短, 种子产量显著降低。根据供试作物的光合特性和生长发育对弱光的响应, 得出它们的耐阴能力排序是: 乌豇豆&#x0003E;绿豆&#x0003E;望江南&#x0003E;大猪屎豆, 其中乌豇豆和绿豆适宜与林果套种, 而望江南和大猪屎豆不适宜套种。
The relation between above- and belowground biomass allocation patterns and competitive ability
1
1991

... 生物固氮和吸收土壤氮是豆科植物两个可供选择的氮获取策略(Ledgard et al., 2001).如果排除其他环境限制, 土壤氮资源的状态是豆科植物氮获取策略选择的关键决定因素(West et al., 2005).氮添加提高了土壤氮资源有效性, 可能降低豆科植物为获取大气氮而对根和根瘤发育的投资.再者, 增加的土壤氮有效性可能将豆科草本植物间竞争的压力从地下转移到地上(Farrer & Suding, 2016), 诱使植物投资更多资源到地上生物量用以捕获光, 并因此限制根系发育(Aerts et al., 1991).本研究中, 对比无肥料添加, 氮添加提高了地上生物量, 并小幅降低根生物量, 已经表明了氮添加下豆科草本植物生物量分配的转移.同时, 我们的研究也发现氮添加降低了豆科草本植物根部非结构性碳水化合物的含量, 间接地表明土壤氮资源的增加可能改变了光合产物的分配, 促使豆科草本植物将更多的光合产物转移并储存在地上, 并导致根部碳水化合物营养储存的下降. ...

Global assessment of limitation to symbiotic nitrogen fixation by phosphorus availability in terrestrial ecosystems using a meta-analysis approach
3
2013

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 磷添加能够促进豆科植物生长和生物固氮(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 主要有两个原因.首先, 磷是固氮豆科植物及其根瘤细胞构建的主要元素, 并且是生物固氮过程中关键的能量驱动要素(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).此外, 磷的添加也促进豆科植物生长, 并相应增加其对氮的需求, 由此刺激根瘤生物量和生物固氮的增加以满足氮需要(Batterman et al., 2013).本研究结果证实磷添加显著提高豆科草本植物生物固氮率.进一步地, 本研究阐述了磷添加促进豆科草本植物固氮的一个新机制, 即磷添加降低豆科草本植物根系-菌根互作和根际磷活化, 因此促进根生物量和根碳水化合物的累积, 间接提高生物固氮率. ...

Tradeoffs and thresholds in the effects of nitrogen addition on biodiversity and ecosystem functioning: evidence from Inner Mongolia grasslands
1
2010

... 实验采取完全随机区组设计, 所有实验花盆按重复分3组摆放, 每组内设置8个物种、2个氮添加水平(0、14 g·m-2, NH4NO3)和2个磷添加水平(0、3.5 g·m-2, Ca(H2PO4)2·H2O)交互处理, 组内各处理花盆位置随机摆放.相似气候区的研究认为14 g·m-2的氮添加量足够解除本区植物生长的氮限制(Bai et al., 2010; Zhan et al., 2017), 磷的添加率基于氮添加率和实验土壤N:P比例设置.氮磷肥料分3次溶解于水中施入花盆.整个实验期间, 花盆露天放置, 隔绝降水.基于花盆面积和当地正常降水量考量, 间隔3-4天, 每盆植物浇灌1 000 mL水(相当于每隔3-4天接受20 mm降水), 保证植物生长不受水分限制.为保证实验过程中各处理植物所接受的光等资源随机一致, 重复组内花盆位置每周随机调换一次. ...

Key role of symbiotic dinitrogen fixation in tropical forest secondary succession
2
2013

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 磷添加能够促进豆科植物生长和生物固氮(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 主要有两个原因.首先, 磷是固氮豆科植物及其根瘤细胞构建的主要元素, 并且是生物固氮过程中关键的能量驱动要素(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).此外, 磷的添加也促进豆科植物生长, 并相应增加其对氮的需求, 由此刺激根瘤生物量和生物固氮的增加以满足氮需要(Batterman et al., 2013).本研究结果证实磷添加显著提高豆科草本植物生物固氮率.进一步地, 本研究阐述了磷添加促进豆科草本植物固氮的一个新机制, 即磷添加降低豆科草本植物根系-菌根互作和根际磷活化, 因此促进根生物量和根碳水化合物的累积, 间接提高生物固氮率. ...

Determination of organic acids in soil extracts by ion chromatography
1
1995

... 羊草和豆科草本植物的15N同位素丰度使用ThermoFisher MAT253同位素比质谱仪(ThermoFisher, Waltham, USA)分析.总氮含量采用凯氏定氮法(Sparks et al., 1996)测定, 总磷含量通过过硫酸氧化消解后采用分光光度计测定(Schade et al., 2003).非结构性碳水化合物(NSC)含量依据Buysse和Merckx (1993)改进的比色法测定.部分根际土壤经由0.2 μmol·L -1CaCl2溶液浸提, 取悬浮液冷冻于-20 ℃.悬浮液经100 ℃水浴1 h, 然后在3 500 r·min-1下离心10 min, 再经0.45 μm滤膜过滤, 然后, 使用离子色谱测定柠檬酸含量(Baziramakenga et al., 1995).剩余根际和非根际土壤样品于50 ℃下烘干, 然后研磨过0.2 mm筛, 土壤有效磷含量经NaHCO3溶液浸提后根据Olsen等(1954)的方法测定.根际土壤经超纯水浸提后采用PHS-25 pH计测定.部分非根际土壤样品冷冻于-20 ℃, 然后经2 mol·mol-1 KCl溶液浸提后, NH4+和NO3-含量使用Bran-Luebbe AA3自动分析仪(Bran-Luebbe, Hamburg, Germany)测定(Miller & Keeney, 1982).所有养分含量特征基于土壤干质量计量. ...

Intercropping promotes the ability of durum wheat and chickpea to increase rhizosphere phosphorus availability in a low P soil
5
2012

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 磷限制影响豆科植物根瘤细胞的构建, 并影响生物固氮过程中的能量供应(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).然而, 并不清楚氮增加导致的相对磷匮乏是否已经经由降低植物和根瘤磷吸收来抑制根系结瘤和生物固氮率.此外, 在磷资源限制下, 许多陆地植物, 尤其豆科植物已经发展了物种特异性的适应机制, 诸如强化植物-菌根互作、刺激根际磷活化等来满足植物磷需求(Nuruzzaman, 2006; Zhou et al., 2009).进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017).然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知. ...

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

... ., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

... ., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

An improved colorimetric method to quantify sugar content of plant tissue
1
1993

... 羊草和豆科草本植物的15N同位素丰度使用ThermoFisher MAT253同位素比质谱仪(ThermoFisher, Waltham, USA)分析.总氮含量采用凯氏定氮法(Sparks et al., 1996)测定, 总磷含量通过过硫酸氧化消解后采用分光光度计测定(Schade et al., 2003).非结构性碳水化合物(NSC)含量依据Buysse和Merckx (1993)改进的比色法测定.部分根际土壤经由0.2 μmol·L -1CaCl2溶液浸提, 取悬浮液冷冻于-20 ℃.悬浮液经100 ℃水浴1 h, 然后在3 500 r·min-1下离心10 min, 再经0.45 μm滤膜过滤, 然后, 使用离子色谱测定柠檬酸含量(Baziramakenga et al., 1995).剩余根际和非根际土壤样品于50 ℃下烘干, 然后研磨过0.2 mm筛, 土壤有效磷含量经NaHCO3溶液浸提后根据Olsen等(1954)的方法测定.根际土壤经超纯水浸提后采用PHS-25 pH计测定.部分非根际土壤样品冷冻于-20 ℃, 然后经2 mol·mol-1 KCl溶液浸提后, NH4+和NO3-含量使用Bran-Luebbe AA3自动分析仪(Bran-Luebbe, Hamburg, Germany)测定(Miller & Keeney, 1982).所有养分含量特征基于土壤干质量计量. ...

How do phosphorus, potassium and sulphur affect plant growth and biological nitrogen fixation in crop and pasture legumes? A meta-analysis
3
2014

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 磷限制影响豆科植物根瘤细胞的构建, 并影响生物固氮过程中的能量供应(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).然而, 并不清楚氮增加导致的相对磷匮乏是否已经经由降低植物和根瘤磷吸收来抑制根系结瘤和生物固氮率.此外, 在磷资源限制下, 许多陆地植物, 尤其豆科植物已经发展了物种特异性的适应机制, 诸如强化植物-菌根互作、刺激根际磷活化等来满足植物磷需求(Nuruzzaman, 2006; Zhou et al., 2009).进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017).然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知. ...

... 磷添加能够促进豆科植物生长和生物固氮(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 主要有两个原因.首先, 磷是固氮豆科植物及其根瘤细胞构建的主要元素, 并且是生物固氮过程中关键的能量驱动要素(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).此外, 磷的添加也促进豆科植物生长, 并相应增加其对氮的需求, 由此刺激根瘤生物量和生物固氮的增加以满足氮需要(Batterman et al., 2013).本研究结果证实磷添加显著提高豆科草本植物生物固氮率.进一步地, 本研究阐述了磷添加促进豆科草本植物固氮的一个新机制, 即磷添加降低豆科草本植物根系-菌根互作和根际磷活化, 因此促进根生物量和根碳水化合物的累积, 间接提高生物固氮率. ...

Teasing apart plant community responses to N enrichment: the roles of resource limitation, competition and soil microbes
1
2016

... 生物固氮和吸收土壤氮是豆科植物两个可供选择的氮获取策略(Ledgard et al., 2001).如果排除其他环境限制, 土壤氮资源的状态是豆科植物氮获取策略选择的关键决定因素(West et al., 2005).氮添加提高了土壤氮资源有效性, 可能降低豆科植物为获取大气氮而对根和根瘤发育的投资.再者, 增加的土壤氮有效性可能将豆科草本植物间竞争的压力从地下转移到地上(Farrer & Suding, 2016), 诱使植物投资更多资源到地上生物量用以捕获光, 并因此限制根系发育(Aerts et al., 1991).本研究中, 对比无肥料添加, 氮添加提高了地上生物量, 并小幅降低根生物量, 已经表明了氮添加下豆科草本植物生物量分配的转移.同时, 我们的研究也发现氮添加降低了豆科草本植物根部非结构性碳水化合物的含量, 间接地表明土壤氮资源的增加可能改变了光合产物的分配, 促使豆科草本植物将更多的光合产物转移并储存在地上, 并导致根部碳水化合物营养储存的下降. ...

The global nitrogen cycle: changes and consequences
1
1998

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

The interaction of nitrogen and phosphorus on the growth, nutrient status and nodulation of Stylosanthes humilis H.B.K. (townsville stylo)
1
1974

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

Local and systemic effects of phosphorus and nitrogen on nodulation and nodule function in Alnus incana
2
2003

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 最近的meta分析发现, 氮增加对生物固氮的作用随生态系统类型、地理位置、气候条件等的变化而发生改变(Zheng et al., 2019).实际上这些大尺度环境因子可能已经通过改变土壤养分背景而调控了氮增加对生物固氮的影响.先前的研究发现氮增加有时并不下调豆科植物生物固氮率, 并将其归因为该生态系统具有较低的土壤氮水平, 导致该生态系统即使在氮增加情境下也处于持续的氮限制状态(Reed et al., 2007).通过本研究, 我们进一步指出土壤磷有效性调控N:P平衡, 对氮增加下的豆科草本植物生物固氮率具有重要调节作用(Gentili & Huss-Danell, 2003).实际上, 在陆地生态系统中, 磷对植物生长的限制可能远比之前认定的要普遍, 尤其在人类诱导的不平衡的氮、磷输入情景下(Mahowald et al., 2008; Vitousek et al., 2010; Li et al., 2016b), 由此磷对豆科植物生物固氮的调控功能将变得越来越重要. ...

N:P ratios in terrestrial plants: variation and functional significance
1
2004

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

How do plant roots acquire mineral nutrients? Chemical processes involved in the rhizosphere
2
1998

... 参考邹长明等(2015)的研究, 当每种豆科草本植物生长至初花期(近于豆科草本植物最大地上生物量时期), 进行收获取样.取样时, 将长有植物的完整土壤与花盆小心分离.然后, 将土壤轻柔敲碎并分离携带根际土壤的植株.本研究中, 根际被定义为距根表面2 mm范围内的土壤, 这一范围被认为是豆科植物主要的根系磷吸收区(Hinsinger, 1998; Nuruzzaman et al., 2006).使用一个柔软的小毛刷细致收集黏附在根上的根际土壤.每盆中所有植物的根际土壤组合为一个样品.然后, 将分离的植物个体在水龙头下小心清洗根部.然后, 将植株分为地上、根部和根瘤3部分, 查数根瘤数量.每盆随机选取1株植物的新鲜根系材料进行菌根侵染和根系磷酸酶活性检验.余下的植物材料在60 ℃下分别烘干、称质量.每个花盆中, 一株植株的所有部分组合并粉碎用于15N同位素分析.每盆植物剩余地上、根系和根瘤样品分类合并粉碎, 部分样品用于分析氮磷含量, 根系样品同时用于分析非结构性碳水化合物含量.植物和根际土壤取样后, 将非根际土壤混合均匀后取样. ...

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

Origins of root-mediated pH changes in the rhizosphere and their responses to environmental constraints: a review
1
2003

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

Nitrogen fixation by white clover in pastures grazed by dairy cows: temporal variation and effects of nitrogen fertilization
1
2001

... 生物固氮和吸收土壤氮是豆科植物两个可供选择的氮获取策略(Ledgard et al., 2001).如果排除其他环境限制, 土壤氮资源的状态是豆科植物氮获取策略选择的关键决定因素(West et al., 2005).氮添加提高了土壤氮资源有效性, 可能降低豆科植物为获取大气氮而对根和根瘤发育的投资.再者, 增加的土壤氮有效性可能将豆科草本植物间竞争的压力从地下转移到地上(Farrer & Suding, 2016), 诱使植物投资更多资源到地上生物量用以捕获光, 并因此限制根系发育(Aerts et al., 1991).本研究中, 对比无肥料添加, 氮添加提高了地上生物量, 并小幅降低根生物量, 已经表明了氮添加下豆科草本植物生物量分配的转移.同时, 我们的研究也发现氮添加降低了豆科草本植物根部非结构性碳水化合物的含量, 间接地表明土壤氮资源的增加可能改变了光合产物的分配, 促使豆科草本植物将更多的光合产物转移并储存在地上, 并导致根部碳水化合物营养储存的下降. ...

Biological nitrogen fixation in mixed legume/grass pastures
1
1992

... 实际上, 本研究发现氮有效性并不是影响豆科草本植物根生物量和根非结构性碳水化合物的独立因素, 因为磷对氮添加效应有显著的调控作用(图1B, 图4A).由增加的根际磷活化能够判断氮添加加剧了植物磷营养限制, 这一过程很可能通过改变豆科草本植物根部磷代谢生理影响根生物量和非结构性碳水化合物含量.而根据本研究结果, 磷活化的增加也可能同样降低根生物量和根非结构性碳水化合物含量(图5).豆科植物根系为根瘤细菌提供了共生位点, 并将碳水化合物等养分输送至根瘤支持其生长代谢(Ledgard & Steele, 1992), 因此豆科植物根系的生物量和碳水化合物含量对根瘤固氮有重要的调控作用, 本研究的结果已经发现根生物量、根碳水化合物含量与豆科草本植物生物固氮率间存在显著的正相关关系(图7).上述讨论表明不管单独的氮增加, 还是相对的磷限制, 氮添加都能够通过降低根生物量和根系碳水化合物含量降低豆科草本植物的生物固氮率. ...

Grass-legume mixtures impact soil N, species recruitment, and productivity in temperate steppe grassland
1
2015

... 利用在松嫩草甸种植的8种豆科草本植物为实验材料, 包括4个本地物种(花苜蓿(Medicago ruthenica)、兴安胡枝子(Lespedeza davurica)、草木樨(Melilotus officinalis)、野大豆(Glycine soja)), 以及4个引种物种(紫花苜蓿(Medicago sativa)、黄花苜蓿(Medicago falcata)、杂花苜蓿(Medicago varia)和百脉根(Lotus corniculatus)).本研究使用该研究区天然植被的优势物种, 并且和本研究中多数豆科草本植物有共存关系的羊草作为豆科草本植物固氮评估的参照植物.我们的前期实验表明使用羊草做参照植物获得的豆科草本植物固氮评估数据相近于使用多种参照植物获得的平均测量数据(Li et al., 2015).所有植物种子于2016年收集自中国科学院长岭草地农牧生态研究站内的天然草地及豆科草本植物种子田.2017年6-9月间, 所有植物被分别种植生长在无渗漏的塑料花盆中(高30 cm, 直径25 cm).实验土壤收集自天然草甸0-30 cm土层, 过2 mm筛后混匀.每盆装入等量的实验土壤, 实验土壤的初始理化性质为pH 8.74、有机质含量17.3 g·kg-1、总氮含量1.26 g·kg-1、总磷含量0.31 g·kg-1, 植物化学计量学的研究证据表明该研究位点土壤处于氮限制状态(宋彦涛等, 2012).植物种植前, 所有种子进行表面消毒, 然后先置于浅沙盘中发芽.待种子发芽后, 同一物种4个发芽的种子被转移种植入一个花盆.为保障每种豆科草本植物生长和固氮不受土壤中相应根瘤菌的数量限制, 田间收集每种植物的新鲜根瘤, 采用破碎的根瘤菌液对每种植物进行根瘤接种. ...

Grass-legume ratio can change soil carbon and nitrogen storage in a temperate steppe grassland
1
2016a

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

Forage nitrogen yield and soil nitrogen in artificial grasslands with varied Medicago seedling proportion
1
2020

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

Aggravated phosphorus limitation on biomass production under increasing nitrogen loading: a meta-analysis
1
2016b

... 最近的meta分析发现, 氮增加对生物固氮的作用随生态系统类型、地理位置、气候条件等的变化而发生改变(Zheng et al., 2019).实际上这些大尺度环境因子可能已经通过改变土壤养分背景而调控了氮增加对生物固氮的影响.先前的研究发现氮增加有时并不下调豆科植物生物固氮率, 并将其归因为该生态系统具有较低的土壤氮水平, 导致该生态系统即使在氮增加情境下也处于持续的氮限制状态(Reed et al., 2007).通过本研究, 我们进一步指出土壤磷有效性调控N:P平衡, 对氮增加下的豆科草本植物生物固氮率具有重要调节作用(Gentili & Huss-Danell, 2003).实际上, 在陆地生态系统中, 磷对植物生长的限制可能远比之前认定的要普遍, 尤其在人类诱导的不平衡的氮、磷输入情景下(Mahowald et al., 2008; Vitousek et al., 2010; Li et al., 2016b), 由此磷对豆科植物生物固氮的调控功能将变得越来越重要. ...

Global distribution of atmospheric phosphorus sources, concentrations and deposition rates, and anthropogenic impacts
1
2008

... 最近的meta分析发现, 氮增加对生物固氮的作用随生态系统类型、地理位置、气候条件等的变化而发生改变(Zheng et al., 2019).实际上这些大尺度环境因子可能已经通过改变土壤养分背景而调控了氮增加对生物固氮的影响.先前的研究发现氮增加有时并不下调豆科植物生物固氮率, 并将其归因为该生态系统具有较低的土壤氮水平, 导致该生态系统即使在氮增加情境下也处于持续的氮限制状态(Reed et al., 2007).通过本研究, 我们进一步指出土壤磷有效性调控N:P平衡, 对氮增加下的豆科草本植物生物固氮率具有重要调节作用(Gentili & Huss-Danell, 2003).实际上, 在陆地生态系统中, 磷对植物生长的限制可能远比之前认定的要普遍, 尤其在人类诱导的不平衡的氮、磷输入情景下(Mahowald et al., 2008; Vitousek et al., 2010; Li et al., 2016b), 由此磷对豆科植物生物固氮的调控功能将变得越来越重要. ...

N and P colimitation of N2-fixing and N-supplied fynbos legumes from the Cape Floristic Region
2
2013

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 磷添加能够促进豆科植物生长和生物固氮(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 主要有两个原因.首先, 磷是固氮豆科植物及其根瘤细胞构建的主要元素, 并且是生物固氮过程中关键的能量驱动要素(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).此外, 磷的添加也促进豆科植物生长, 并相应增加其对氮的需求, 由此刺激根瘤生物量和生物固氮的增加以满足氮需要(Batterman et al., 2013).本研究结果证实磷添加显著提高豆科草本植物生物固氮率.进一步地, 本研究阐述了磷添加促进豆科草本植物固氮的一个新机制, 即磷添加降低豆科草本植物根系-菌根互作和根际磷活化, 因此促进根生物量和根碳水化合物的累积, 间接提高生物固氮率. ...

1
1982

... 羊草和豆科草本植物的15N同位素丰度使用ThermoFisher MAT253同位素比质谱仪(ThermoFisher, Waltham, USA)分析.总氮含量采用凯氏定氮法(Sparks et al., 1996)测定, 总磷含量通过过硫酸氧化消解后采用分光光度计测定(Schade et al., 2003).非结构性碳水化合物(NSC)含量依据Buysse和Merckx (1993)改进的比色法测定.部分根际土壤经由0.2 μmol·L -1CaCl2溶液浸提, 取悬浮液冷冻于-20 ℃.悬浮液经100 ℃水浴1 h, 然后在3 500 r·min-1下离心10 min, 再经0.45 μm滤膜过滤, 然后, 使用离子色谱测定柠檬酸含量(Baziramakenga et al., 1995).剩余根际和非根际土壤样品于50 ℃下烘干, 然后研磨过0.2 mm筛, 土壤有效磷含量经NaHCO3溶液浸提后根据Olsen等(1954)的方法测定.根际土壤经超纯水浸提后采用PHS-25 pH计测定.部分非根际土壤样品冷冻于-20 ℃, 然后经2 mol·mol-1 KCl溶液浸提后, NH4+和NO3-含量使用Bran-Luebbe AA3自动分析仪(Bran-Luebbe, Hamburg, Germany)测定(Miller & Keeney, 1982).所有养分含量特征基于土壤干质量计量. ...

Distribution of carboxylates and acid phosphatase and depletion of different phosphorus fractions in the rhizosphere of a cereal and three grain legumes
6
2006

... 磷限制影响豆科植物根瘤细胞的构建, 并影响生物固氮过程中的能量供应(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).然而, 并不清楚氮增加导致的相对磷匮乏是否已经经由降低植物和根瘤磷吸收来抑制根系结瘤和生物固氮率.此外, 在磷资源限制下, 许多陆地植物, 尤其豆科植物已经发展了物种特异性的适应机制, 诸如强化植物-菌根互作、刺激根际磷活化等来满足植物磷需求(Nuruzzaman, 2006; Zhou et al., 2009).进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017).然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知. ...

... ).进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017).然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知. ...

... 参考邹长明等(2015)的研究, 当每种豆科草本植物生长至初花期(近于豆科草本植物最大地上生物量时期), 进行收获取样.取样时, 将长有植物的完整土壤与花盆小心分离.然后, 将土壤轻柔敲碎并分离携带根际土壤的植株.本研究中, 根际被定义为距根表面2 mm范围内的土壤, 这一范围被认为是豆科植物主要的根系磷吸收区(Hinsinger, 1998; Nuruzzaman et al., 2006).使用一个柔软的小毛刷细致收集黏附在根上的根际土壤.每盆中所有植物的根际土壤组合为一个样品.然后, 将分离的植物个体在水龙头下小心清洗根部.然后, 将植株分为地上、根部和根瘤3部分, 查数根瘤数量.每盆随机选取1株植物的新鲜根系材料进行菌根侵染和根系磷酸酶活性检验.余下的植物材料在60 ℃下分别烘干、称质量.每个花盆中, 一株植株的所有部分组合并粉碎用于15N同位素分析.每盆植物剩余地上、根系和根瘤样品分类合并粉碎, 部分样品用于分析氮磷含量, 根系样品同时用于分析非结构性碳水化合物含量.植物和根际土壤取样后, 将非根际土壤混合均匀后取样. ...

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

... ., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

... ., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

Grass-legume mixtures can yield more nitrogen than legume pure stands due to mutual stimulation of nitrogen uptake from symbiotic and non-symbiotic sources
1
2011

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

1
1954

... 羊草和豆科草本植物的15N同位素丰度使用ThermoFisher MAT253同位素比质谱仪(ThermoFisher, Waltham, USA)分析.总氮含量采用凯氏定氮法(Sparks et al., 1996)测定, 总磷含量通过过硫酸氧化消解后采用分光光度计测定(Schade et al., 2003).非结构性碳水化合物(NSC)含量依据Buysse和Merckx (1993)改进的比色法测定.部分根际土壤经由0.2 μmol·L -1CaCl2溶液浸提, 取悬浮液冷冻于-20 ℃.悬浮液经100 ℃水浴1 h, 然后在3 500 r·min-1下离心10 min, 再经0.45 μm滤膜过滤, 然后, 使用离子色谱测定柠檬酸含量(Baziramakenga et al., 1995).剩余根际和非根际土壤样品于50 ℃下烘干, 然后研磨过0.2 mm筛, 土壤有效磷含量经NaHCO3溶液浸提后根据Olsen等(1954)的方法测定.根际土壤经超纯水浸提后采用PHS-25 pH计测定.部分非根际土壤样品冷冻于-20 ℃, 然后经2 mol·mol-1 KCl溶液浸提后, NH4+和NO3-含量使用Bran-Luebbe AA3自动分析仪(Bran-Luebbe, Hamburg, Germany)测定(Miller & Keeney, 1982).所有养分含量特征基于土壤干质量计量. ...

The human-induced imbalance between C, N and P in Earth?s life system
1
2012

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

Greater root phosphatase activity in nitrogen-fixing rhizobial but not actinorhizal plants with declining phosphorus availability
5
2017

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... ., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 磷限制影响豆科植物根瘤细胞的构建, 并影响生物固氮过程中的能量供应(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).然而, 并不清楚氮增加导致的相对磷匮乏是否已经经由降低植物和根瘤磷吸收来抑制根系结瘤和生物固氮率.此外, 在磷资源限制下, 许多陆地植物, 尤其豆科植物已经发展了物种特异性的适应机制, 诸如强化植物-菌根互作、刺激根际磷活化等来满足植物磷需求(Nuruzzaman, 2006; Zhou et al., 2009).进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017).然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知. ...

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

... 更大的氮有效性提高植物磷需求, 增加了土壤磷对豆科草本植物生长和固氮的限制(Vitousek et al., 2010; Png et al., 2017).因此, 氮富集下补充磷资源对缓解生物固氮的磷限制尤为重要.这一推断被我们的结果所支持, 因为本研究发现氮添加情境下补充磷对豆科草本植物生物固氮率有更大的提升.目前, 由于不成比例的氮磷输入(N >> P), 全球变化和农业活动正在改变许多生态系统的氮磷平衡(Vitousek et al., 2010).根据我们的研究, 这样的氮富集可能导致豆科植物生物固氮发生不同程度的改变, 其变化程度取决于土壤磷状态.生态系统中磷有效性越低, 氮添加对生物固氮的抑制效应越大.因此, 在高土壤N:P或者高氮沉降速率的环境下, 为增加豆科草本植物生物固氮, 补充磷是明智的选择.本研究中, 平均所有豆科物种, 对比无营养添加, 氮和磷协同添加并未改变豆科草本植物生物固氮率(对照: 41% vs. 氮磷添加: 43%), 这一结果表明3.5 g·m-2的磷添加能够有效缓解14 g·m-2的氮添加对实验豆科草本植物生物固氮的抑制效应.这一结果对本研究区豆科草场的优化管理具有重要指导意义. ...

Controls over leaf litter and soil nitrogen fixation in two lowland tropical rain forests
2
2007

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

... 最近的meta分析发现, 氮增加对生物固氮的作用随生态系统类型、地理位置、气候条件等的变化而发生改变(Zheng et al., 2019).实际上这些大尺度环境因子可能已经通过改变土壤养分背景而调控了氮增加对生物固氮的影响.先前的研究发现氮增加有时并不下调豆科植物生物固氮率, 并将其归因为该生态系统具有较低的土壤氮水平, 导致该生态系统即使在氮增加情境下也处于持续的氮限制状态(Reed et al., 2007).通过本研究, 我们进一步指出土壤磷有效性调控N:P平衡, 对氮增加下的豆科草本植物生物固氮率具有重要调节作用(Gentili & Huss-Danell, 2003).实际上, 在陆地生态系统中, 磷对植物生长的限制可能远比之前认定的要普遍, 尤其在人类诱导的不平衡的氮、磷输入情景下(Mahowald et al., 2008; Vitousek et al., 2010; Li et al., 2016b), 由此磷对豆科植物生物固氮的调控功能将变得越来越重要. ...

Acquisition of phosphorus and nitrogen in the rhizosphere and plant growth promotion by microorganisms
1
2009

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

Nitrogen uptake, fixation and response to fertilizer N in soybeans: a review
1
2008

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

Stoichiometric tracking of soil nutrients by a desert insect herbivore
1
2003

... 羊草和豆科草本植物的15N同位素丰度使用ThermoFisher MAT253同位素比质谱仪(ThermoFisher, Waltham, USA)分析.总氮含量采用凯氏定氮法(Sparks et al., 1996)测定, 总磷含量通过过硫酸氧化消解后采用分光光度计测定(Schade et al., 2003).非结构性碳水化合物(NSC)含量依据Buysse和Merckx (1993)改进的比色法测定.部分根际土壤经由0.2 μmol·L -1CaCl2溶液浸提, 取悬浮液冷冻于-20 ℃.悬浮液经100 ℃水浴1 h, 然后在3 500 r·min-1下离心10 min, 再经0.45 μm滤膜过滤, 然后, 使用离子色谱测定柠檬酸含量(Baziramakenga et al., 1995).剩余根际和非根际土壤样品于50 ℃下烘干, 然后研磨过0.2 mm筛, 土壤有效磷含量经NaHCO3溶液浸提后根据Olsen等(1954)的方法测定.根际土壤经超纯水浸提后采用PHS-25 pH计测定.部分非根际土壤样品冷冻于-20 ℃, 然后经2 mol·mol-1 KCl溶液浸提后, NH4+和NO3-含量使用Bran-Luebbe AA3自动分析仪(Bran-Luebbe, Hamburg, Germany)测定(Miller & Keeney, 1982).所有养分含量特征基于土壤干质量计量. ...

1
2008

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

松嫩草地80种草本植物叶片氮磷化学计量特征
1
2012

... 利用在松嫩草甸种植的8种豆科草本植物为实验材料, 包括4个本地物种(花苜蓿(Medicago ruthenica)、兴安胡枝子(Lespedeza davurica)、草木樨(Melilotus officinalis)、野大豆(Glycine soja)), 以及4个引种物种(紫花苜蓿(Medicago sativa)、黄花苜蓿(Medicago falcata)、杂花苜蓿(Medicago varia)和百脉根(Lotus corniculatus)).本研究使用该研究区天然植被的优势物种, 并且和本研究中多数豆科草本植物有共存关系的羊草作为豆科草本植物固氮评估的参照植物.我们的前期实验表明使用羊草做参照植物获得的豆科草本植物固氮评估数据相近于使用多种参照植物获得的平均测量数据(Li et al., 2015).所有植物种子于2016年收集自中国科学院长岭草地农牧生态研究站内的天然草地及豆科草本植物种子田.2017年6-9月间, 所有植物被分别种植生长在无渗漏的塑料花盆中(高30 cm, 直径25 cm).实验土壤收集自天然草甸0-30 cm土层, 过2 mm筛后混匀.每盆装入等量的实验土壤, 实验土壤的初始理化性质为pH 8.74、有机质含量17.3 g·kg-1、总氮含量1.26 g·kg-1、总磷含量0.31 g·kg-1, 植物化学计量学的研究证据表明该研究位点土壤处于氮限制状态(宋彦涛等, 2012).植物种植前, 所有种子进行表面消毒, 然后先置于浅沙盘中发芽.待种子发芽后, 同一物种4个发芽的种子被转移种植入一个花盆.为保障每种豆科草本植物生长和固氮不受土壤中相应根瘤菌的数量限制, 田间收集每种植物的新鲜根瘤, 采用破碎的根瘤菌液对每种植物进行根瘤接种. ...

松嫩草地80种草本植物叶片氮磷化学计量特征
1
2012

... 利用在松嫩草甸种植的8种豆科草本植物为实验材料, 包括4个本地物种(花苜蓿(Medicago ruthenica)、兴安胡枝子(Lespedeza davurica)、草木樨(Melilotus officinalis)、野大豆(Glycine soja)), 以及4个引种物种(紫花苜蓿(Medicago sativa)、黄花苜蓿(Medicago falcata)、杂花苜蓿(Medicago varia)和百脉根(Lotus corniculatus)).本研究使用该研究区天然植被的优势物种, 并且和本研究中多数豆科草本植物有共存关系的羊草作为豆科草本植物固氮评估的参照植物.我们的前期实验表明使用羊草做参照植物获得的豆科草本植物固氮评估数据相近于使用多种参照植物获得的平均测量数据(Li et al., 2015).所有植物种子于2016年收集自中国科学院长岭草地农牧生态研究站内的天然草地及豆科草本植物种子田.2017年6-9月间, 所有植物被分别种植生长在无渗漏的塑料花盆中(高30 cm, 直径25 cm).实验土壤收集自天然草甸0-30 cm土层, 过2 mm筛后混匀.每盆装入等量的实验土壤, 实验土壤的初始理化性质为pH 8.74、有机质含量17.3 g·kg-1、总氮含量1.26 g·kg-1、总磷含量0.31 g·kg-1, 植物化学计量学的研究证据表明该研究位点土壤处于氮限制状态(宋彦涛等, 2012).植物种植前, 所有种子进行表面消毒, 然后先置于浅沙盘中发芽.待种子发芽后, 同一物种4个发芽的种子被转移种植入一个花盆.为保障每种豆科草本植物生长和固氮不受土壤中相应根瘤菌的数量限制, 田间收集每种植物的新鲜根瘤, 采用破碎的根瘤菌液对每种植物进行根瘤接种. ...

Nitrogen fixation and foliar nitrogen do not predict phosphorus acquisition strategies in tropical trees
1
2019

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

Methods of Soil Analysis. Part 3. Chemical Methods
1
1996

... 羊草和豆科草本植物的15N同位素丰度使用ThermoFisher MAT253同位素比质谱仪(ThermoFisher, Waltham, USA)分析.总氮含量采用凯氏定氮法(Sparks et al., 1996)测定, 总磷含量通过过硫酸氧化消解后采用分光光度计测定(Schade et al., 2003).非结构性碳水化合物(NSC)含量依据Buysse和Merckx (1993)改进的比色法测定.部分根际土壤经由0.2 μmol·L -1CaCl2溶液浸提, 取悬浮液冷冻于-20 ℃.悬浮液经100 ℃水浴1 h, 然后在3 500 r·min-1下离心10 min, 再经0.45 μm滤膜过滤, 然后, 使用离子色谱测定柠檬酸含量(Baziramakenga et al., 1995).剩余根际和非根际土壤样品于50 ℃下烘干, 然后研磨过0.2 mm筛, 土壤有效磷含量经NaHCO3溶液浸提后根据Olsen等(1954)的方法测定.根际土壤经超纯水浸提后采用PHS-25 pH计测定.部分非根际土壤样品冷冻于-20 ℃, 然后经2 mol·mol-1 KCl溶液浸提后, NH4+和NO3-含量使用Bran-Luebbe AA3自动分析仪(Bran-Luebbe, Hamburg, Germany)测定(Miller & Keeney, 1982).所有养分含量特征基于土壤干质量计量. ...

Growth and nodulation of symbiotic Medicago truncatula at different levels of phosphorus availability
2
2013

... 磷限制影响豆科植物根瘤细胞的构建, 并影响生物固氮过程中的能量供应(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).然而, 并不清楚氮增加导致的相对磷匮乏是否已经经由降低植物和根瘤磷吸收来抑制根系结瘤和生物固氮率.此外, 在磷资源限制下, 许多陆地植物, 尤其豆科植物已经发展了物种特异性的适应机制, 诸如强化植物-菌根互作、刺激根际磷活化等来满足植物磷需求(Nuruzzaman, 2006; Zhou et al., 2009).进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017).然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知. ...

... 磷添加能够促进豆科植物生长和生物固氮(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 主要有两个原因.首先, 磷是固氮豆科植物及其根瘤细胞构建的主要元素, 并且是生物固氮过程中关键的能量驱动要素(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).此外, 磷的添加也促进豆科植物生长, 并相应增加其对氮的需求, 由此刺激根瘤生物量和生物固氮的增加以满足氮需要(Batterman et al., 2013).本研究结果证实磷添加显著提高豆科草本植物生物固氮率.进一步地, 本研究阐述了磷添加促进豆科草本植物固氮的一个新机制, 即磷添加降低豆科草本植物根系-菌根互作和根际磷活化, 因此促进根生物量和根碳水化合物的累积, 间接提高生物固氮率. ...

Measuring Plant- associated Nitrogen Fixation in Agricultural Systems
2
2008

... 豆科草本植物组织中生物固氮率(BNF,%)采用如下公式计算(Unkovich et al., 2008): ...

... 式中,${{\delta }^{15}}$N表示植物组织相对大气的15N原子丰度变化.B代表豆科草本植物组织完全依赖大气氮生长时的${{\delta }^{\text{15}}}\text{N}$.本研究采用整株植物材料来评估生物固氮, 这时整株植株的15N丰度应与大气一致, 所以B等于0 (Unkovich et al., 2008).根际磷活化效应定义为根际土壤有效磷含量与非根际土壤有效磷含量的比值(Zhan et al., 2017). ...

Towards an ecological understanding of biological nitrogen fixation
1
2002

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

Biological nitrogen fixation: rates, patterns and ecological controls in terrestrial ecosystems
1
2013

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

Terrestrial phosphorus limitation: mechanisms, implications, and nitrogen-phosphorus interactions
3
2010

... 最近的meta分析发现, 氮增加对生物固氮的作用随生态系统类型、地理位置、气候条件等的变化而发生改变(Zheng et al., 2019).实际上这些大尺度环境因子可能已经通过改变土壤养分背景而调控了氮增加对生物固氮的影响.先前的研究发现氮增加有时并不下调豆科植物生物固氮率, 并将其归因为该生态系统具有较低的土壤氮水平, 导致该生态系统即使在氮增加情境下也处于持续的氮限制状态(Reed et al., 2007).通过本研究, 我们进一步指出土壤磷有效性调控N:P平衡, 对氮增加下的豆科草本植物生物固氮率具有重要调节作用(Gentili & Huss-Danell, 2003).实际上, 在陆地生态系统中, 磷对植物生长的限制可能远比之前认定的要普遍, 尤其在人类诱导的不平衡的氮、磷输入情景下(Mahowald et al., 2008; Vitousek et al., 2010; Li et al., 2016b), 由此磷对豆科植物生物固氮的调控功能将变得越来越重要. ...

... 更大的氮有效性提高植物磷需求, 增加了土壤磷对豆科草本植物生长和固氮的限制(Vitousek et al., 2010; Png et al., 2017).因此, 氮富集下补充磷资源对缓解生物固氮的磷限制尤为重要.这一推断被我们的结果所支持, 因为本研究发现氮添加情境下补充磷对豆科草本植物生物固氮率有更大的提升.目前, 由于不成比例的氮磷输入(N >> P), 全球变化和农业活动正在改变许多生态系统的氮磷平衡(Vitousek et al., 2010).根据我们的研究, 这样的氮富集可能导致豆科植物生物固氮发生不同程度的改变, 其变化程度取决于土壤磷状态.生态系统中磷有效性越低, 氮添加对生物固氮的抑制效应越大.因此, 在高土壤N:P或者高氮沉降速率的环境下, 为增加豆科草本植物生物固氮, 补充磷是明智的选择.本研究中, 平均所有豆科物种, 对比无营养添加, 氮和磷协同添加并未改变豆科草本植物生物固氮率(对照: 41% vs. 氮磷添加: 43%), 这一结果表明3.5 g·m-2的磷添加能够有效缓解14 g·m-2的氮添加对实验豆科草本植物生物固氮的抑制效应.这一结果对本研究区豆科草场的优化管理具有重要指导意义. ...

... ., 2010).根据我们的研究, 这样的氮富集可能导致豆科植物生物固氮发生不同程度的改变, 其变化程度取决于土壤磷状态.生态系统中磷有效性越低, 氮添加对生物固氮的抑制效应越大.因此, 在高土壤N:P或者高氮沉降速率的环境下, 为增加豆科草本植物生物固氮, 补充磷是明智的选择.本研究中, 平均所有豆科物种, 对比无营养添加, 氮和磷协同添加并未改变豆科草本植物生物固氮率(对照: 41% vs. 氮磷添加: 43%), 这一结果表明3.5 g·m-2的磷添加能够有效缓解14 g·m-2的氮添加对实验豆科草本植物生物固氮的抑制效应.这一结果对本研究区豆科草场的优化管理具有重要指导意义. ...

Legume species identity and soil nitrogen supply determine symbiotic nitrogen-fixation responses to elevated atmospheric [CO2]
3
2005

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

... ., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

... 生物固氮和吸收土壤氮是豆科植物两个可供选择的氮获取策略(Ledgard et al., 2001).如果排除其他环境限制, 土壤氮资源的状态是豆科植物氮获取策略选择的关键决定因素(West et al., 2005).氮添加提高了土壤氮资源有效性, 可能降低豆科植物为获取大气氮而对根和根瘤发育的投资.再者, 增加的土壤氮有效性可能将豆科草本植物间竞争的压力从地下转移到地上(Farrer & Suding, 2016), 诱使植物投资更多资源到地上生物量用以捕获光, 并因此限制根系发育(Aerts et al., 1991).本研究中, 对比无肥料添加, 氮添加提高了地上生物量, 并小幅降低根生物量, 已经表明了氮添加下豆科草本植物生物量分配的转移.同时, 我们的研究也发现氮添加降低了豆科草本植物根部非结构性碳水化合物的含量, 间接地表明土壤氮资源的增加可能改变了光合产物的分配, 促使豆科草本植物将更多的光合产物转移并储存在地上, 并导致根部碳水化合物营养储存的下降. ...

Phosphorus nutrition of terrestrial plants
2
2008

... 磷(P)对植物生长和代谢具有关键调控作用(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).因为根瘤发育和生物固氮过程的高磷消耗, 豆科植物对磷的供应尤为敏感(Batterman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).研究表明磷添加能够提高豆科植物根瘤发育和生物固氮率(Augusto et al., 2013; Maistry et al., 2013), 尤其在磷资源限制环境中(Betencourt et al., 2012).尽管氮、磷在土壤中有不同的生物地球化学循环过程, 增加的氮供应很可能改变土壤内在的氮-磷平衡(Elser et al., 2010; Pe?uelaset al., 2012), 提高植物磷需求, 驱动土壤磷的消耗(Güsewell,2004; Png et al., 2017), 并最终加剧植物磷匮乏.基于此, 氮增加下, 改变的土壤氮磷供给平衡很可能成为驱动豆科植物生物固氮率下降的额外机制.在这种情景下, 土壤中磷肥的状态能够潜在改变氮富集对豆科植物生物固氮的抑制作用.先前的研究发现当土壤磷有效性较低时, 氮增加抑制根系结瘤, 但当土壤磷有效性较高时, 氮增加能够促进根系结瘤(Gates & Wilson, 1974), 相似的结果也存在于其他研究中(Gentili & Huss-Danell, 2003).这些研究已经表明氮、磷在调控豆科植物固氮行为中的交互作用.然而, 对于氮-磷平衡的改变如何驱动植物生理变化, 并最终改变豆科植物根系结瘤和生物固氮率, 我们仍旧缺乏深入理解. ...

... 本实验中所用土壤磷含量较低, 可能已经限制了豆科草本植物的生长(Betencourt et al., 2012), 这一推断能够从控制盆中已经较高的根际磷活化效应(图3B)得以佐证.氮添加显著提高了豆科草本植物生物量和组织氮含量, 因为植物生长和代谢过程对氮、磷元素的匹配需求, 氮添加将潜在提高植物对磷的需要(White & Hammond, 2008; Png et al., 2017).然而, 当前的研究发现氮添加并未改变土壤中磷的供给.而这种氮磷供应的不平衡并未导致豆科草本植物降低植物和根瘤的磷含量, 反而激发了豆科草本植物根际磷的活化和吸收, 以满足增加的磷需求(图4)(Nuruzzaman et al., 2006; Betencourt et al., 2012).因为植物的养分吸收主要发生在根际(Hinsinger, 1998), 植物物种已经进化发展了一系列策略来提高根际磷吸收.已知的策略包括加强根系-菌根互作以提高根部磷吸收的范围和面积(Smith & Read, 2008); 或通过根际土壤酸化刺激钙结合无机磷的活化, 以增加根际有效磷数量, 这种作用在中性或类似于本研究的碱性土壤中可能尤为重要(Richardson et al., 2009; Betencourt et al., 2012).此外, 植物根部能够分泌一些磷活化有机物, 如柠檬酸等有机酸, 这些磷活化物质也能提高根际磷有效性(Nuruzzaman et al., 2006).当前研究发现氮添加下, 根际土壤pH显著下降, 而根部菌根侵染率明显增加, 这些结果表明氮添加已经激发了豆科草本植物多途径的磷截获策略.众所周知, 菌根的共生依赖于根部提供碳水化合物营养(Soper et al., 2019).此外, 根际土壤pH的下降一般得益于根呼吸和根际微生物呼吸的增加, 而增加的根呼吸和根际微生物呼吸提高了根内及其分泌到根际的碳水化合物的消耗(Hinsinger et al., 2003; Nuruzzaman et al., 2006).因此, 通过菌根共生和根际磷活化的途径来获取更多磷可能潜在降低根生物量和根碳水化合物的积累(图5).本研究中根生物量、根碳水化合物和豆科草本植物生物固氮率间存在正相关关系, 表明氮添加下, 豆科草本植物为提高磷吸收, 会抑制其生物固氮率. ...

Influence of arbuscular mycorrhiza on photosynthesis and water status of Populus cathayana Rehder males and females under salt stress
1
2015

... 为测量菌根侵染率, 依据Wu等(2015)的方法, 部分根被切为8个1 cm长根段, 经净化、软化、酸化、染色和去色等步骤后压片镜检.菌根侵染率根据下面公式计算: ...

Nitrogen enrichment alters plant N:P stoichiometry and intensifies phosphorus limitation in a steppe ecosystem
2
2017

... 实验采取完全随机区组设计, 所有实验花盆按重复分3组摆放, 每组内设置8个物种、2个氮添加水平(0、14 g·m-2, NH4NO3)和2个磷添加水平(0、3.5 g·m-2, Ca(H2PO4)2·H2O)交互处理, 组内各处理花盆位置随机摆放.相似气候区的研究认为14 g·m-2的氮添加量足够解除本区植物生长的氮限制(Bai et al., 2010; Zhan et al., 2017), 磷的添加率基于氮添加率和实验土壤N:P比例设置.氮磷肥料分3次溶解于水中施入花盆.整个实验期间, 花盆露天放置, 隔绝降水.基于花盆面积和当地正常降水量考量, 间隔3-4天, 每盆植物浇灌1 000 mL水(相当于每隔3-4天接受20 mm降水), 保证植物生长不受水分限制.为保证实验过程中各处理植物所接受的光等资源随机一致, 重复组内花盆位置每周随机调换一次. ...

... 式中,${{\delta }^{15}}$N表示植物组织相对大气的15N原子丰度变化.B代表豆科草本植物组织完全依赖大气氮生长时的${{\delta }^{\text{15}}}\text{N}$.本研究采用整株植物材料来评估生物固氮, 这时整株植株的15N丰度应与大气一致, 所以B等于0 (Unkovich et al., 2008).根际磷活化效应定义为根际土壤有效磷含量与非根际土壤有效磷含量的比值(Zhan et al., 2017). ...

Global pattern and controls of biological nitrogen fixation under nutrient enrichment: a meta-analysis
2
2019

... 生物固氮是豆科草本植物的重要氮(N)吸收途径, 豆科草本植物的生物固氮率不仅决定其同化大气氮的总量(Augusto et al., 2013), 还通过改变土壤氮的相对消耗影响豆科草本植物生长的氮经济(Li et al., 2016a, 2020).外源氮输入和生物固氮的积累增加了土壤中氮的有效性(Galloway, 1998; Vitousek et al., 2013).然而, 增加的土壤氮有效性会潜在地降低豆科草本植物的生物固氮率(Salvagiotti et al., 2008; Nyfeler et al., 2011), 进而阻碍豆科草本植物对生态系统的进一步固氮输入.以往的研究表明, 豆科植物能够根据土壤氮肥力状况调整在固定大气氮和获取土壤氮方面的投资策略(Vitousek et al., 2002; West et al., 2005).这些研究认为生物固氮的代谢成本一般高于土壤氮吸收, 因此高土壤氮有效性下豆科植物倾向于增加根系对土壤氮的吸收, 但抑制代谢上高成本的根瘤发育和生物固氮(West et al., 2005).这一观点暗示当氮有效性增加, 豆科植物生物固氮被抑制将成为普遍现象.然而, 其他研究发现, 外源氮的输入并不总是下调豆科植物生物固氮率, 这意味着一些其他因素可能会改变氮富集对生物固氮率的影响(Reed et al., 2007; Zheng et al., 2019). ...

... 最近的meta分析发现, 氮增加对生物固氮的作用随生态系统类型、地理位置、气候条件等的变化而发生改变(Zheng et al., 2019).实际上这些大尺度环境因子可能已经通过改变土壤养分背景而调控了氮增加对生物固氮的影响.先前的研究发现氮增加有时并不下调豆科植物生物固氮率, 并将其归因为该生态系统具有较低的土壤氮水平, 导致该生态系统即使在氮增加情境下也处于持续的氮限制状态(Reed et al., 2007).通过本研究, 我们进一步指出土壤磷有效性调控N:P平衡, 对氮增加下的豆科草本植物生物固氮率具有重要调节作用(Gentili & Huss-Danell, 2003).实际上, 在陆地生态系统中, 磷对植物生长的限制可能远比之前认定的要普遍, 尤其在人类诱导的不平衡的氮、磷输入情景下(Mahowald et al., 2008; Vitousek et al., 2010; Li et al., 2016b), 由此磷对豆科植物生物固氮的调控功能将变得越来越重要. ...

Rhizosphere acidification of faba bean, soybean and maize
1
2009

... 磷限制影响豆科植物根瘤细胞的构建, 并影响生物固氮过程中的能量供应(Sulieman et al., 2013; Divito & Sadras, 2014).然而, 并不清楚氮增加导致的相对磷匮乏是否已经经由降低植物和根瘤磷吸收来抑制根系结瘤和生物固氮率.此外, 在磷资源限制下, 许多陆地植物, 尤其豆科植物已经发展了物种特异性的适应机制, 诸如强化植物-菌根互作、刺激根际磷活化等来满足植物磷需求(Nuruzzaman, 2006; Zhou et al., 2009).进一步的实验证据表明上述磷获取策略的实现极大依赖于根系形态和生理的改变(Nuruzzaman, 2006; Betencourt et al., 2012; Png et al., 2017).然而, 氮增加是否激发了这些磷获取策略, 并借此改变豆科植物根系生理, 导致生物固氮率的下降不得而知. ...

四种豆科作物的光合生理和生长发育对弱光的响应
1
2015

... 参考邹长明等(2015)的研究, 当每种豆科草本植物生长至初花期(近于豆科草本植物最大地上生物量时期), 进行收获取样.取样时, 将长有植物的完整土壤与花盆小心分离.然后, 将土壤轻柔敲碎并分离携带根际土壤的植株.本研究中, 根际被定义为距根表面2 mm范围内的土壤, 这一范围被认为是豆科植物主要的根系磷吸收区(Hinsinger, 1998; Nuruzzaman et al., 2006).使用一个柔软的小毛刷细致收集黏附在根上的根际土壤.每盆中所有植物的根际土壤组合为一个样品.然后, 将分离的植物个体在水龙头下小心清洗根部.然后, 将植株分为地上、根部和根瘤3部分, 查数根瘤数量.每盆随机选取1株植物的新鲜根系材料进行菌根侵染和根系磷酸酶活性检验.余下的植物材料在60 ℃下分别烘干、称质量.每个花盆中, 一株植株的所有部分组合并粉碎用于15N同位素分析.每盆植物剩余地上、根系和根瘤样品分类合并粉碎, 部分样品用于分析氮磷含量, 根系样品同时用于分析非结构性碳水化合物含量.植物和根际土壤取样后, 将非根际土壤混合均匀后取样. ...

四种豆科作物的光合生理和生长发育对弱光的响应
1
2015

... 参考邹长明等(2015)的研究, 当每种豆科草本植物生长至初花期(近于豆科草本植物最大地上生物量时期), 进行收获取样.取样时, 将长有植物的完整土壤与花盆小心分离.然后, 将土壤轻柔敲碎并分离携带根际土壤的植株.本研究中, 根际被定义为距根表面2 mm范围内的土壤, 这一范围被认为是豆科植物主要的根系磷吸收区(Hinsinger, 1998; Nuruzzaman et al., 2006).使用一个柔软的小毛刷细致收集黏附在根上的根际土壤.每盆中所有植物的根际土壤组合为一个样品.然后, 将分离的植物个体在水龙头下小心清洗根部.然后, 将植株分为地上、根部和根瘤3部分, 查数根瘤数量.每盆随机选取1株植物的新鲜根系材料进行菌根侵染和根系磷酸酶活性检验.余下的植物材料在60 ℃下分别烘干、称质量.每个花盆中, 一株植株的所有部分组合并粉碎用于15N同位素分析.每盆植物剩余地上、根系和根瘤样品分类合并粉碎, 部分样品用于分析氮磷含量, 根系样品同时用于分析非结构性碳水化合物含量.植物和根际土壤取样后, 将非根际土壤混合均匀后取样. ...




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