1. 东华理工大学 核资源与环境省部共建国家重点实验室培育基地, 江西 南昌 330013;
2. 东华理工大学, 化学生物与材料科学学院, 江西 南昌 330013
2020-06-01 收稿, 2020-07-23 录用
基金项目: 江西省自然科学基金(20161BAB213090)和核资源与环境国家重点实验室开放基金(NRE1314)
*通讯作者: 肖赛金
摘要: 以MoS2和H2O2为原料,采用室温"一锅法"制备具有荧光性的氧化钼量子点(MoOx QDs)。以MoOx QDs为荧光探针,Cu2+为猝灭剂,构建了无标记"off-on"型ATP荧光检测。在pH为7.5,50 mol/L Cu2+,0.051 mg/mL MoOx QDs的最优条件下,ATP浓度在25~250 mol/L时,520 nm处荧光强度会随ATP浓度增大而增强,且荧光强度与ATP浓度呈良好的线性关系,F=785.40+9.05c,R=0.993;BSA、Ni2+、Mn2+、Mg2+、Fe3+、Co2+、Ca2+等共存对ATP产生的干扰小。因此,"off-on"型MoOx QDs-Cu2+检测平台可实现ATP的快速半定量检测,测试灵敏性高,稳定性好。
关键词: 三磷酸腺苷氧化钼量子点铜离子荧光探针
Label-free and Rapid Detection of ATP Based on Molybdenum Oxide Quantum Dots
HUANG Haiqing1,2, XIAO Saijin1,2, YANG Guangzhaoyao1, ZHAO Jiahui1
1. State Key Laboratory Breeding Base of Nuclear Resources and Environment, East China University of Technology, Nanchang 330013, Jiangxi, P. R. China;
2. School of Chemistry, Biology and Material Science, East China University of Technology, Nanchang 330013, Jiangxi, P. R. China
*Corresponding author: XIAO Saijin
Abstract: Molybdenum oxide quantum dots (MoOx QDs) with excellent fluorescence performance were synthesized using MoS2 and H2O2 as the raw materials by a one-pot method at the room temperature. Based on the fluorescence "off-on" mode, a new rapid fluorescence detection of ATP was constructed, in which MoOx QDs was a fluorescent probe and Cu2+ was a quencher. Under the optimized condition, pH 7.5, 0.051 mg/mL MoOx QDs and 50 mol/L Cu2+, the fluorescence at 520 nm was gradually enhanced with increasing ATP concentration in the range of 25-250 mol/L. The calibration curve was F=785.40+9.05c with the correlation coefficient of 0.993. The coexistence of BSA, Ni2+, Mn2+, Mg2+, Fe3+, Co2+ and Ca2+ has negligible effect on ATP detection. Therefore, the "off-on" detection platform shows rapid and stable for sensing for ATP.
Key words: adenosine triphosphateMoOx quantum dotsCu2+fluorescent probe
三磷酸腺苷(adenosine triphosphate, ATP)是各种活细胞内普遍存在的一种高能化合物,是各种生物活动的直接能量来源,在光合、酶催化、生物合成、DNA复制、细胞呼吸等各种生物过程中,ATP还是一种重要的信号分子[1, 2],ATP水平的异常变化可用于指示疾病及病变的程度。此外,ATP含量与活细胞数目有着线性关系,可间接表达样品中细菌数量。因此,ATP快速检测可在临床诊断、药物筛选、食品卫生、环境监测等领域发挥重要作用[3-5]。
目前,已报道的ATP检测方法主要包括电泳分析法[6, 7]、色谱分析法[8]、光学分析法[9]和生物传感器法[10, 11]等。其中,光学分析法中的荧光分析在检测生物分子方面显示出独特的优势,有灵敏度高、选择性好等特点,是目前公认的较为理想的检测方法之一。常见的荧光探针有贵金属纳米团簇、有机染料、量子点(QDs)。相比较而言,QDs具有荧光产率高、激发光谱宽、荧光光谱窄的特点,因此QDs的应用受到越来越多的关注,尤其是在化学及生物分析领域。如Tedsana等[12]将半胱胺修饰CdS量子点(Cys-CdS QDs)的荧光强度与ATP呈正比关系用于ATP的高选择性检测。Shi等[13]采用Cys-CdTe QDs为荧光团,Zn2+为猝灭剂,添加ATP,荧光性能恢复,实现了“off-on”模式的ATP检测。但重金属型量子点因毒性较大,在生物医学尤其是活体检测中难以展开应用[14]。因此,研究者开始尝试探寻低毒或无毒性的量子点。如胡先运等[15]以氧化石墨烯(GO)为猝灭剂,ATP适配体标记InP/ZnS量子点(ABA-QDs),通过GO与ABA-QDs之间的长程共振能量转移(LrRET),对ATP进行检测。Xiong等[16]用MPA-Mn:ZnS QDs为荧光探针,采用ATP适配体为猝灭剂,实现生物体液中ATP的检测。但是,这些量子点荧光探针的合成过程要求严格,工艺偏复杂,且制备成本偏高。
氧化物钼是一种过渡金属半导体,其自然资源丰富、价廉、低毒,且有独特的电子、光学和力学性能[17, 18];在气体传感、催化剂、光致变色等领域备受关注[19-21]。本课题组采用常温一步法制备出低毒性的荧光氧化钼量子点(MoOx QDs),目前已将基于MoOx QDs的荧光探针用于对卡托普利、2, 4, 6-三硝基苯、乙酰胆碱酯酶的快速检测[22, 23]。本文以MoOx QDs为荧光探针,Cu2+为荧光猝灭剂,建立一种简单、快速、高灵敏的ATP检测方法。
1 实验部分1.1 试剂与仪器寡三磷酸腺苷(ATP)、三磷酸胞嘧啶(CTP)、牛血清白蛋白(BSA),上海生工生物工程有限公司;二硫化钼粉末(MoS2),美国Sigma-Aldrach公司;氢氧化钠(NaOH)、30%双氧水(30% H2O2)、浓盐酸(HCl)、氯化铜(CuCl2)、乙二胺四乙酸二胺(EDTA)、硫酸铁[Fe2(SO4)3]、氯化钙(CaCl2)、氯化镍(NiCl2)、氯化钴(CoCl2)、硫酸锰(MnSO4),均购于西陇化工股份有限公司;磷酸钠、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、焦磷酸钠,国药集团化学试剂有限公司;Tris缓冲液(C4H11O3),美国Solarbio公司。实验中所用试剂均为分析纯,使用前未经纯化,所有溶液均采用二次蒸馏水配制。
JEM-2010透射电子显微镜(日立公司,日本),USB-4000荧光分光光谱仪(海洋光谱,美国),F-7000荧光分光光度计(日立公司,日本)。
1.2 实验方法1.2.1 氧化钼荧光量子点的制备氧化钼荧光量子点(MoOx QDs)的制备方法参考文献[22]。200 mg MoS2粉末和16 mL 30% H2O2、6 mL H2O在40 ℃水浴反应4 h,加入NaOH调至pH中性,然后8000 r/min离心10 min,所得上清液即为氧化钼荧光量子点。
1.2.2 Cu2+对MoOx QDs荧光猝灭的影响在离心管中加入20 L 1 mg/mL MoOx QDs溶液、40 L 50 mmol//L Tris-HCl缓冲溶液、不同体积的1 mmol/L CuCl2溶液,最后用去离子水定容至400 L,充分振荡后静置,10 min后在405 nm下测定溶液荧光光谱。
在离心管中加入20 L 1 mg/mL MoOx QDs溶液、40 L 50 mmol/L Tris-HCl,20 L 1 mmol/L CuCl2溶液,以及不同体积的1 mmol/L EDTA溶液,最后用去离子水定容至400 L,充分振荡后静置,10 min后在405 nm下测定溶液荧光光谱。
1.2.3 ATP测定方法在离心管中加入20 L 1 mg/mL MoOx QDs溶液、40 L 50 mmol/L Tris-HCl缓冲溶液、20 L 1 mmol/L CuCl2溶液,以及不同浓度ATP溶液,最后用去离子水定容至400 L,充分振荡后静置,10 min后在405 nm下测定溶液荧光光谱,用520 nm处最强发射峰的荧光强度(FL)定量分析ATP含量。
2 结果与讨论2.1 MoOx QDs的表征通过TEM对MoOx QDs进行扫描测试可知,合成的MoOx QDs外貌为类球形,颗粒分散性能较好,粒径分布范围较窄,平均粒径约为1.7 nm(见图 1)。
图 1
图 1 MoOx QDs的TEM图(A)和粒径分布图(B) |
在307~447 nm不同激发光照射下,MoOx QDs均具有很强的荧光发光性能(图 2),且在367nm激发波下,于495 nm处产生最强的荧光信号;不同激发光下,发射峰位置随着激发波长变长而发生红移,说明MoOxQDs的荧光性能具有连续性和可调性。本文合成量子点的基本荧光性能与文献[22]报道基本吻合。
图 2
图 2 不同激发光下MoOx QDs荧光发射光谱 |
2.2 Cu2+对MoOx QDs荧光猝灭的影响为考察Cu2+对MoOx QDs荧光猝灭的动力学特征,研究了Cu2+和EDTA共同加入量对荧光强度的影响。图 3显示,Cu2+浓度变化不影响荧光发射峰的形状,它们的最大发射波长均在520 nm,这表明Cu2+与MoOx QDs作用不会改变其晶体结构。当[Cu2+]为5~50 mol/L时,体系的荧光峰强度会随着Cu2+加入量增加而迅速下降(图 3内插图),35~50 mol/L时,荧光猝灭率可达70%。本试验选择50 mol/L Cu2+溶液作为猝灭剂。如图 4,在MoOx QDs-Cu2+体系中继续添加EDTA时,体系的荧光峰强度会随EDTA浓度增大而逐渐增强,即产生荧光恢复。当[EDTA]:[Cu2+]=1时,体系荧光强度可恢复到初始的95%以上。说明Cu2+对MoOx QDs的荧光猝灭性是可逆的。
图 3
图 3 Cu2+浓度对MoOx QDs荧光发射光谱的影响 插图为520nm处Cu2+浓度与荧光发射强度关系曲线(实验条件:0.05 mg/mL MoOx QDs,pH 7.5,Cu2+浓度从上到下为0、0.5、2.5、5、10、15、20、25、30、35、40、45、50 mol/L) |
图 4
图 4 EDTA对MoOx QDs-Cu2+荧光发射光谱的影响(实验条件:0.05 mg/mL MoOx QDs,[Cu2+]=50mol/L, pH 7.5, EDTA的浓度从下到上分别为0、12.5、25、37.5、50 mol/L) |
Cu2+对MoOx QDs的荧光猝灭作用机理大致为:Cu2+通过弱键与MoOx QDs之间发生结合作用形成了非荧光的基态化合物,产生静态荧光猝灭,即“off”状态。与Cu2+能产生强亲和作用的化合物,将Cu2+从MoOx QDs上分离并释放出MoOx QDs,体系荧光性能得到恢复,即“on”状态。ATP是一种典型的磷酸化合物,其磷酸基团可通过P-O-与Cu2+产生强烈作用。向MoOx QDs-Cu2+体系加入ATP时,Cu2+会从MoOx QDs表面分离下来,重新释放量子点,从而使猝灭的荧光性能得到恢复,如图 5所示。基于上述分析,本文构建“off-on”型MoOx QDs-Cu2+检测平台用于ATP检测。
图 5
图 5 检测ATP原理示意图 |
2.3 ATP的检测一般情况下,检测环境的pH值对检测效果影响很大,为了增强MoOx QDs-Cu2+检测平台的稳定性和选择性,优化检测方法,实验考察了溶液pH值对MoOxQDs荧光猝灭及荧光恢复的影响。如图 6所示,在弱酸性条件下,荧光强度较低,且酸性越强荧光强度越弱。当pH 7.5时,荧光强度最弱。在pH 8.0~9.5碱性性条件下,荧光强度随碱性的显著增强。这可能是在碱性条件下-OH与Cu2+作用的几率增大,从而抑制了Cu2+对MoOxQDs的结合,导致荧光猝灭不完全,甚至无荧光猝灭产生。ATP对MoOx QDs的荧光恢复性在pH 6.0~9.5时,变化幅度不大。当Cu2+与MoOx QDs的作用完全被抑制时,MoOx QDs的荧光强度可恢复到初始状态。为使检测的“off-on”过程明显,本试验pH值优化为7.5。
图 6
图 6 pH对MoOx QDs-Cu2+和MoOx QDs-Cu2+/ATP对520 nm处荧光发射性能的影响(实验条件:0.05 mg/mL MoOx QDs,[Cu2+]=50mol/L,或ATP:200mol/L) |
如图 7所示,在优化后的实验条件下,荧光强度随着ATP浓度的增大而不断增强;且ATP浓度为25~250 mol/L时,荧光强度(F)与ATP浓度(c,μmol/L)呈现良好的线性关系(图 7插图),拟合线性方程为F=785.40+9.05c,相关系数R=0.993,该线性使用范围比文献[12]中的20~80mol/L宽。
图 7
图 7 ATP对MoOx QDs-Cu2+荧光发射光谱的影响 插图为520 nm处ATP浓度与荧光发射强度关系曲线(实验条件:0.05 mg/mL MoOx QDs,[Cu2+]=50 mol/L,pH 7.5,ATP浓度自下而上依次为0、25、50、75、100、125、150、175、200、250 mol/L) |
为进一步验证MoOx QDs-Cu2+检测平台对ATP荧光检测方法的灵敏性,本文考察了BSA、Ni2+、Mn2+、Fe3+、Co2+、Ca2+等可能共存物对量子点荧光的影响,见图 8。当干扰物为非磷酸盐化合物时,对应的荧光恢复程度不及ATP的1/10;当干扰物为含磷酸盐的CTP时,其荧光恢复程度仅为ATP的1/2。所以,该检测方法在无磷酸盐干扰时检测灵敏性高,由于该荧光检测的机理主要为离子间键的相互作用,该作用没有方向性,但在含磷酸盐干扰环境下可进行半定量分析。
图 8
图 8 MoOx QDs荧光探针对ATP的选择性(实验条件:0.05 mg/mL MoOx QDs,[Cu2+]=50 mol/L,pH 7.5,ATP:250 mol/L,Ni2+、Mn2+、Fe3+、Co2+、Ca2+、BSA、H2PO4-、HPO42-、PO43-浓度均为500 mol/L) |
3 结论本文以MoOx QDs为荧光探针,Cu2+为猝灭剂,构建新型“off-on”荧光传感器用于ATP快速检测,该检测响应时间快,荧光性能强且稳定。在1 mg/mL MoOx QDs,50mol/L CuCl2,Tris-HCl缓冲pH 7.5、ATP浓度为25~250 mol/L优化条件时,体系荧光强度与ATP浓度呈线性关系,相关系数为0.993;除含磷酸盐化合物外,该检测方法的抗干扰性高。因此,本文的ATP检测方法具有制备技术简单、性能稳定、检测时间短、灵敏度高,且线性使用范围宽等特点,可为环境及食品等领域的品质评价提供一种新的快捷检测方法。
参考文献
[1] | Gourine A V, Llaudet E, Dale N, et al. ATP is a mediator of chemosensory transduction in the central nervous system[J]. Nature, 2005, 436(7047): 108-111. DOI:10.1038/nature03690 |
[2] | Lian Y K, Jiang H, Feng J Z, et al. Direct and simultaneous quantification of ATP, ADP and AMP by 1H and 31P nuclear magnetic resonance spectroscopy[J]. Talanta, 2016, 150: 485-492. DOI:10.1016/j.talanta.2015.12.051 |
[3] | Cheng J H, Sun D W, Zeng X A, et al. Recent advances in methods and techniques for freshness quality determination and evaluation of fish and fish fillets:a review[J]. Critical Reviews in Food Science & Nutrition, 2015, 55(7): 1012-1225. |
[4] | Pistelok F, Pohl A, Stuczynski T, et al. Strengths and weaknesses in the determination of Saccharomyces cerevisiae cell viability by ATP-based bioluminescence assay[J]. Ecological Chemistry & Engineering S, 2016, 23(2): 259-270. |
[5] | Han T, Wren M, Dubois K, et al. Application of ATP-based bioluminescence for bioaerosol quantification:effect of sampling method[J]. Journal of Aerosol Science, 2015, 90: 114-123. DOI:10.1016/j.jaerosci.2015.08.003 |
[6] | 周春喜, 郁荣, 吕海燕, 等. 三磷酸腺苷、二磷酸腺苷和一磷酸腺苷的毛细管电泳分析研究[J]. 分析科学学报, 2003(5): 433-434. |
[7] | Liebers V, Bachmann D, Franke G, et al. Determination of ATP-activity as a useful tool for monitoring microbial load in aqueous humidifier samples[J]. International Journal of Hygiene and Environmental Health, 2015, 218(2): 246-253. DOI:10.1016/j.ijheh.2014.11.004 |
[8] | Zhou L, Xue X X, Zhou J Hi, et al. Fast determination of adenosine 5'-triphosphate (ATP) and its catabolites in royal jelly using ultraperformance liquid chromatography[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2012, 60(36): 8994-8999. DOI:10.1021/jf3022805 |
[9] | Wu H Q, Wu Q P, Zhang J M, et al. Study on rapid quantitative detection of total bacterial counts by the ATP-bioluminescence and application in probiotic products[J]. International Journal of Food Science and Technology, 2011, 46(5): 921-929. DOI:10.1111/j.1365-2621.2010.02531.x |
[10] | Srivastava P, Razi S S, Ali R, et al. Highly sensitive cell im-aging "off-on" fluorescent probe for mitochondria and ATP[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2015, 69: 179-185. DOI:10.1016/j.bios.2015.02.028 |
[11] | Wang W, Zhao N, Li X X, et al. Isothermal amplified detection of ATP using Au nanocages capped with a DNA molecular gate and its application in cell lysates[J]. The Analyst, 2015, 140(5): 1672-1677. DOI:10.1039/C4AN02202E |
[12] | Tedsana W, Tuntulani T, Ngeontae W. A highly selective turn-on ATP fluorescence sensor based on unmodified cysteamine capped CdS quantum dots[J]. Analytica Chimica Acta, 2013, 783(11): 65-73. |
[13] | Shi F P, Li Y, Lin Z H, et al. A novel fluorescent probe for adenosine 5-triphosphate detection based on Zn2+-modulated l-cysteine capped CdTe quantum dots[J]. Sensors and Actuators B:Chemical, 2015, 220: 433-440. DOI:10.1016/j.snb.2015.05.087 |
[14] | Derfus A M, Chan W C W, Bhatia S N. Probing the cytotoxicity of semiconductor quantum dots[J]. Nano Letters, 2004, 4(1): 11-18. DOI:10.1021/nl0347334 |
[15] | 胡先运, 江家志, 王传明, 等. 氧化石墨烯/适配体-量子点荧光探针用于ATP检测[J]. 分析试验室, 2018, 37(9): 1003-1007. |
[16] | Xiong Y, Cheng Y, Wang L, et al. An "off-on" phosphorescent aptasensor switch for the detection of ATP[J]. Talanta, 2018, 190: 226-234. DOI:10.1016/j.talanta.2018.07.060 |
[17] | Anh Tran T, Krishnamoorthy K, Song Y W, et al. Toxicity of nano molybdenum trioxide toward invasive breast cancer cells[J]. ACS Applied Materials & Interface, 2014, 6(4): 2980-2986. |
[18] | Krishnamoorthy K, Premanathan M, Veerapandian M, et al. Nanostructured molybdenum oxide-based antibacterial paint:effective growth inhibition of various pathogenic bacteria[J]. Nanotechnology, 2014, 25(31): 596-606. |
[19] | Illyaskutty N, Sreedhar S, Kumar G S, et al. Alteration of architecture of MoO3 nanostructures on arbitrary substrates:growth kinetics, spectroscopic and gas sensing properties[J]. Nanoscale, 2014, 6: 13882-13894. DOI:10.1039/C4NR04529G |
[20] | Wang Y X, Zhang X, Luo Z M, et al. Liquid-phase growth of platinum nanoparticles on molybdenum trioxide nanosheets:an enhanced catalyst with intrinsic peroxidase-like catalytic activity[J]. Nanoscale, 2014, 6(21): 12340-12344. DOI:10.1039/C4NR04115A |
[21] | Yi Q H, Zhai P F, Sun Y H, et al. Aqueous solution-deposited molybdenum oxide films as an anode interfacial layer for organic solar cells[J]. ACS Applied Materials & Interfaces, 2015, 7: 18218-18224. |
[22] | Xiao S J, Zhao X J, Chu Z J, et al. New off-on sensor for captopril sensing based on photoluminescent MoOx quantum Dots[J]. ACS Omega, 2017, 2: 1666-1671. DOI:10.1021/acsomega.7b00088 |
[23] | Xiao S J, Zhao X J, Chu Z J, et al. Highly photoluminescent molybdenum oxide quantum dots:one pot synthesis and application in 2, 4, 6-trinitrotoluene determination[J]. ACS Applied Materials & Interfaces, 2016, 8(12): 8184-8191. |