刘倩男^,1,2, 黄伟², 丁云花¹, 王亚钦¹, 胡丽萍¹, 赵学志¹, 何洪巨¹, 刘光敏^,11北京市农林科学院蔬菜研究中心,北京 100097
²河北北方学院农林科技学院,河北张家口 075000

Rapid Determination of RAA and GBC in Broccoli by Near Infrared Spectroscopy

LIU QianNan^,1,2, HUANG Wei², DING YunHua¹, WANG YaQin¹, HU LiPing¹, ZHAO XueZhi¹, HE HongJu¹, LIU GuangMin^,11Beijing Vegetable Research Center, Beijing Academy of Agricultural and Forestry Sciences, Beijing 100097
²College of Agricultural and Forestry Science and Technology, Hebei North University, Zhangjiakou 075000, Hebei

通讯作者: 刘光敏,Tel：010-51503060;E-mail：liuguangmin@nercv.org

责任编辑: 赵伶俐
收稿日期:2020-03-9接受日期:2020-04-20网络出版日期:2020-11-01

基金资助:

国家重点研发计划.2017YFE0114500-4 北京市农林科学院青年科研基金.QNJJ201734 北京市农林科学院科技创新能力建设专项基金.KJCX20180206

Received:2020-03-9Accepted:2020-04-20Online:2020-11-01
作者简介 About authors
刘倩男,E-mail：1367194814@qq.com










摘要
【目的】 青花菜是硫代葡萄糖苷含量非常高的十字花科蔬菜,大量医学和营养学研究表明,青花菜具有防癌抗癌的显著功效,其防癌抗癌特性主要与硫代葡萄糖苷的多种降解产物有关,尤其是4-甲基硫氧丁基硫苷（RAA）和3-甲基吲哚基硫苷（GBC）的降解产物。本研究拟建立青花菜抗癌硫代葡萄糖苷的近红外光谱快速测定方法。【方法】 采用高效液相色谱法（HPLC）测定青花菜中硫代葡萄糖苷RAA和GBC的含量,将近红外光谱仪扫描样品所获得的光谱文件与化学分析结果在偏最小二乘回归法（partial least squares,PLS）分析的基础上,采用不同的散射处理方式（SNV、Detrend、SNV+Detrend）和导数处理方式（FD、SD）对光谱数据进行预处理,从而得到定标方程,再进一步对模型进行验证。【结果】 4-甲基硫氧丁基硫苷（RAA）和3-甲基吲哚基硫苷（GBC）是青花菜中存在的主要硫苷,占总含量的60%以上。90份青花菜的硫苷组分含量结果表明RAA平均含量最高,含量变化范围最大,平均含量为6.20 μmol?g^-1,变化范围为0.66—14.54 μmol?g^-1;GBC平均含量为4.43 μmol?g^-1,变化范围为0.25—10.79 μmol?g^-1。经过筛选,采用SNV+SD处理后RAA预测模型的校正集和预测集相关系数分别为0.867和0.912;采用SNV+SD处理后的GBC预测模型的校正集和预测集相关系数分别为0.918和0.960。【结论】 建立了RAA和GBC的近红外光谱快速检测模型,为青花菜营养品质的快速检测、优异抗癌青花菜种质资源的快速筛选与利用奠定了基础。
关键词： 青花菜;硫代葡萄糖苷;4-甲基硫氧丁基硫苷;3-甲基吲哚基硫苷;近红外光谱;快速测定

Abstract
【Objective】Broccoli is a cruciferous vegetable with high glucosinolates content. A large number of medical and nutritional studies have shown that regular consumption of broccoli can effectively reduce the incidence of a variety of cancers. It has been confirmed that the anticancer characteristics of broccoli are mainly related to the degradation products of glucosinolates, especially the degradation products of 4-methylthiobutyl-thioglucoside (RAA) and 3-methylindolythioglucoside (GBC). The aim of this study was to establish a rapid method for the determination of anticancer glucosinolates in broccoli by near infrared spectroscopy.【Method】In this study, the content of RAA and GBC in broccoli was determined by high performance liquid chromatography (HPLC). Based on the partial least squares (PLS), the spectral files obtained by NIRS scanning and chemical analysis results were progressed by different scattering methods (SNV, detrend, and SNV + detrend) and different derivative treatment (FD and SD). After the spectral data were preprocessed, the calibration equation was obtained and the model was verified.【Result】RAA and GBC were the main glucosinolates in broccoli, accounting for more than 60% of the total content. The results of 90 broccoli samples showed that the average content of RAA was the highest, the range of change was the largest, the average content was 6.20 μmol?g^-1, and the range of change was 0.66-14.54 μmol?g^-1; the average content of GBC was 4.43 μmol?g^-1, and the range of change was 0.25-10.79 μmol?g^-1. After screening, the correlation coefficients of calibration set and prediction set of RAA prediction model with SNV + SD treatment were 0.867 and 0.912, respectively; the correlation coefficients of calibration set and prediction set of GBC prediction model using SNV + SD treatment were 0.918 and 0.960, respectively. 【Conclusion】In this study, the rapid detection model of RAA and GBC was established, which laid a foundation for the rapid detection of the nutritional quality of broccoli and the rapid detection and utilization of superior broccoli germplasm resources.
Keywords：broccoli;glucosinolates;4-methylsulfonylbutyl-glucosinolate;3-indolylmethyl-glucosinolate;near infrared spectroscopy;rapid determination


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本文引用格式
刘倩男, 黄伟, 丁云花, 王亚钦, 胡丽萍, 赵学志, 何洪巨, 刘光敏. 青花菜中硫代葡萄糖苷RAA和GBC的近红外光谱快速测定[J]. 中国农业科学, 2020, 53(21): 4497-4506 doi:10.3864/j.issn.0578-1752.2020.21.017
LIU QianNan, HUANG Wei, DING YunHua, WANG YaQin, HU LiPing, ZHAO XueZhi, HE HongJu, LIU GuangMin. Rapid Determination of RAA and GBC in Broccoli by Near Infrared Spectroscopy[J]. Scientia Acricultura Sinica, 2020, 53(21): 4497-4506 doi:10.3864/j.issn.0578-1752.2020.21.017

0 引言

【研究意义】青花菜（Brassica oleracea var. italica）又名绿菜花、西兰花,为十字花科芸薹属一、二年生草本植物,以主茎及侧枝顶端形成的绿色花球为产品,营养丰富,色、香、味俱佳,是国内外市场十分畅销的一种蔬菜。青花菜含有较高的维生素C、硒等营养成分和丰富的植物活性物质（Bioactive substances）。植物活性物质是天然存在且含量较少的一类具有抗氧化、抗病、抗突变、调节机体免疫系统或其他生理活性的化学物质,如硫代葡萄糖苷、黄酮类、类胡萝卜素、萜烯类化合物等。十字花科植物的主要活性成分为硫代葡萄糖苷（Glucosinolates,GS,简称硫苷）,硫苷是一类含硫化合物,是十字花科植物中特有的次生代谢产物^[1,2,3]。硫苷的核心结构是β-D-葡萄糖连接一个磺酸盐醛肟基团和一个来源于氨基酸的侧链,根据侧链R基团的不同把硫苷分为吲哚类、脂肪类和芳香类硫苷^[4]。青花菜是硫代葡萄糖苷含量非常高的十字花科蔬菜,所含硫苷的种类至少有8种,其中4-甲基硫氧丁基硫苷（RAA）和3-甲基吲哚基硫苷（GBC）是主要的硫苷,占总含量的60%以上。大量医学和营养学研究表明,青花菜具有防癌抗癌的显著功效^[5,6,7,8],而其具有的防癌抗癌特性正是与硫代葡萄糖苷的多种降解产物有关,尤其是具有很强抗癌功效的RAA降解产物莱菔硫烷和GBC的降解产物吲哚-3-甲醇^[9,10,11]。不同青花菜品种中RAA以及GBC含量存在较大差异。因此在青花菜的营养品质育种方面,对青花菜中活性成分硫苷的准确快速测定以及培育高含量RAA和GBC青花菜品种尤为重要。【前人研究进展】近红外光谱（Near infrared reflectance spectroscopy,简称NIRs）分析技术可通过测定样品的近红外吸收光谱,达到同时分析样品中多种成分的效果。虽然我国对近红外光谱技术的研究及应用起步较晚,但因其快速、无损伤、分析费用低等优点,NIRs技术在农业、石油化工、制药与临床医学和食品工业等领域均已得到广泛应用^{[12,13,14,15]}。JHA等^[16]应用便携式近红外设备采集西红柿汁的光谱,对其酸度和糖度值进行建模和预测,结果表明,随着波长的增加,其校正标准偏差和预测标准偏差减小;PEDRO等^[17]建立了西红柿的总固形物、可溶性固形物、番茄红素和其他种类胡萝卜素含量的近红外光谱模型,模型的相关系数较好;覃方丽等^[18]通过对不同品种和颜色的鲜辣椒凸表面点的近红外光谱进行分析,建立了较为可靠的可溶性糖和Vc含量的预测模型;王多加等^[19]利用傅里叶变换近红外光谱仪建立了小白菜和菜心全植株、完整叶片和剁碎叶片中硝酸盐的无损快速测定准确模型,模型预测值与实际值的相关系数较高;金同铭等^[20]运用近红外光谱分析仪筛选出苹果中蔗糖、葡萄糖、果糖和苹果酸的特征波长,建立了这4种组分的定标方程,其对样品的预测值和高效液相色谱法测定值的相关系数均达到0.99以上,从而证实了近红外光谱分析可满足实际应用中苹果糖、酸含量的测定精度。近红外光谱技术在硫苷的快速检测方面也有一些文献报道,如芥菜种子^[21]、芥蓝^[22]。王耐红等^[23]运用近红外光谱技术对甘蓝型油菜硫苷组分的含量进行了检测;贺启川等^[24]应用近红外光谱建立了一种快速测定油菜硫苷的模型;郭泽慧^[25]完成了萝卜硫苷组分近红外定标模型的构建。【本研究切入点】硫苷的测定方法包括HPLC测定完形硫苷和脱硫硫苷,以及HPLC/MS分析完形硫苷,但是存在分析周期长或耗费高等问题。现在近红外光谱分析技术以其简便、快速、无损、多组分检测的优势,在农业和食品工业方面的应用越来越广泛,在果蔬营养和安全品质检测上有极大的应用潜力。青花菜作为一种大宗食用的高营养价值蔬菜,在膳食结构中有重要地位,对其营养品质和抗癌组分的快速检测研究很有必要。目前还没有利用近红外光谱技术测定青花菜中抗癌硫苷组分的研究报道。【拟解决的关键问题】本研究采用高效液相色谱法（HPLC）测定青花菜中硫苷的组成和含量,在近红外光谱仪扫描样品所获得的光谱文件与HPLC测定结果的基础上,选择不同散射处理和导数处理方法进行预处理,选用最佳组合预处理方法创建近红外光谱模型,并经外部检验确认。该方法为青花菜营养品质指标的快速无损检测提供参考。

1 材料与方法

1.1 试验材料

试验的青花菜种质资源由北京市农林科学院蔬菜研究中心提供。样品于2018年3月11日播种,4月16日定植于蔬菜中心四季青农场。6月10日当青花菜花球长到收获标准时分期收获。共选取90个不同青花菜的花球,取代表性的小花球5—10个,切割混匀,使用冷冻干燥机进行冻干处理2 d,再将冻干后的样品粉碎并过筛（60目）,制得均匀的干粉样品,低温（-20℃）保存,用于定标模型的建立。

用于模型验证的30份样品来源于北京市农林科学院蔬菜研究中心通州基地,于2018年10月20日收获,处理方法同上。

1.2 仪器试剂

试验所用主要仪器：SZJY-117电子分析天平,赛多利斯科学仪器（北京）有限公司;Pilot10-15M真空冷冻干燥机,北京博医康实验仪器有限公司;FW100高速万能粉碎机,天津市泰斯特仪器有限公司;XDS近红外光谱仪,FOSS公司;LC-20AD高效液相色谱仪,SHIMADZU公司;KQ-600DE数控超声波清洗器,昆山市超声仪器有限公司。

试剂主要有：甲醇（Fisher Chemical公司）,DEAE胶（GE Healthcare公司）,NaAc溶液（国药集团化学试剂有限公司）,硫酸酯酶（Sigma公司）。

1.3 试验方法

1.3.1 硫苷的提取与分析 称取冻干样品0.2 g,放入15 mL塑料管中。加入内标苯甲基硫苷（TRO）0.25 mL,加入100%预热的甲醇5 mL,80℃下水浴20 min,每隔4—5 min涡旋振荡1次,3 000 r/min离心10 min,取上清液倒入15 mL塑料管中。沉淀物继续用70%甲醇提取2次,同上述处理方法,合并上清液,即为样品液。取一次性注射器,加入玻璃棉,塞紧,放在试管上。加入DEAE胶溶液2 mL,用2 mL双蒸水洗涤,加入样品液2 mL。待样品液不再滴下,加入 0.02 mol?L^-1 NaAc溶液。待不再有液体滴下,将注射器转移到另一试管上,加入75 μL硫酸酯酶溶液,封口过夜。将过夜的注射器用双蒸水洗涤3次,每次0.5 mL。用注射头挤压注射器,使液体尽可能转移到试管中。将试管中液体通过0.45 μm滤膜转移到小玻璃瓶中,冷冻保存,待用。取1 mL上清液进行液相色谱检测,记录峰面积。利用内标和响应因子计算硫苷含量^[26],硫苷含量计算公式如下：

硫苷含量=脱硫硫苷峰面积×内标量×脱硫硫苷相对响应因子内标峰面积×试样质量

1.3.2 近红外光谱仪分析 近红外仪器开机预热30 min,进行光谱和噪声诊断,当诊断结果通过后方可开始扫描。将样品干粉均匀平铺在样品杯中,用盖子压实,保证样品覆盖均匀,然后对样品进行静态扫描,每个样品扫描3次。将HPLC方法得到硫苷含量输入仪器配套的化学计量学软件,进行光谱分析处理。在偏最小二乘回归法分析的基础上,采用不同散射处理方式（SNV、Detrend、SNV+Detrend）和导数处理方式（FD、SD）对光谱数据进行分析预处理,得到校正模型,然后通过验证集对模型进行外部验证。应用近红外光谱仪配套的WinISI III定标软件对光谱数据进行处理。

2 结果

2.1 青花菜品种资源硫苷组成和含量

用高效液相色谱法测定青花菜硫代葡萄糖苷图谱如图1所示,青花菜硫代葡萄糖苷组分在30 min内全部出峰,分离较为完全,共检测到8种硫苷,包括脂肪类、芳香类和吲哚类硫苷,按照出峰顺序分别为2-羟基-3-丁烯基硫苷（PRO）、4-甲基硫氧丁基硫苷（RAA）、3-丁烯基硫苷（NAP）、4-羟基吲哚基-3甲基硫苷（4OH）、4-甲硫基丁烯基硫苷（ERU）、3-甲基吲哚基硫苷（GBC）、4-甲基吲哚基-3甲基硫苷（4ME)、1-甲基吲哚基-3甲基硫苷（NEO）。其中4-甲基硫氧丁基硫苷（RAA）和3-甲基吲哚基硫苷（GBC）是青花菜中存在的主要硫苷,约达到总含量的60%。

图1

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图1硫苷组分的高效液相色谱图

1：2-羟基-3-丁烯基硫苷 PRO;2：4-甲基硫氧丁基硫苷 RAA;3：3-丁烯基硫苷 NAP;4：4-羟基吲哚基-3甲基硫苷 4OH;5：苯甲基硫苷 TRO;6：4-甲硫基丁烯基硫苷 ERU;7：3-甲基吲哚基硫苷 GBC;8：4-甲基吲哚基-3甲基硫苷 4ME;9：1-甲基吲哚基-3甲基硫苷 NEO
Fig. 1High performance liquid chromatography of the glucosinolates



试验所用材料为本中心青花菜育种课题组的青花菜种质资源和品种,样品覆盖各种不同基因型,包括日本、欧洲、美国等不同来源的材料和品种,生育期有早熟、中熟、晚熟不同类型,株型有直立和半直立、有主球和分枝型,花球有紧实型和松散型,花蕾有细粒、中粒和粗粒,具有广泛代表性。这些样品的硫苷组分含量结果见表1,RAA和GBC是最主要的两种硫苷,其中RAA平均含量为6.20 μmol?g^-1,变化范围为0.66—14.54 μmol?g^-1,GBC平均含量为4.43 μmol?g^-1,变化范围为0.25—10.79 μmol?g^-1。通过这个结果可以看出,选取的样品中RAA和GBC成分含量分布范围较广,能很好地代表不同含量RAA和GBC的青花菜样品,适于做建立近红外模型的样品集。

Table 1
表1
表1青花菜样品中硫代葡萄糖苷组分含量
Table 1Content of glucosinolates in broccoli samples

硫代葡萄糖苷成分 Glucosinolates components	含量范围 Content range (μmol?g-1)	平均值 Average (μmol?g-1)
RAA	0.66—14.54	6.20
GBC	0.25—10.79	4.43
PRO	0.01—3.42	0.72
NAP	0—0.23	0.07
4OH	0.03—1.86	0.53
4ME	0.05—1.16	0.42
NEO	0.06—11.84	2.91
ERU	0.01—1.96	0.27

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2.2 青花菜近红外光谱分析

使用近红外光谱仪对90个青花菜样品进行扫描,每个样品扫描3次,所得到的近红外原始光谱除样品自身信息外,还包含了其他大量无关信息和噪声,采用不同散射处理方式和导数处理方式对原始光谱进行预处理,减弱甚至消除各种非目标因素对光谱的影响,净化谱图信息,为校正模型的建立奠定基础。导数处理可有效地提高光谱的分辨率、减小基线漂移、消除光谱的谱峰重叠^[27,28],在实际分析中一般采用一阶导数（FD）和二阶导数（SD）来进行光谱预处理。标准正态变量变换（SNV）主要是用来消除固体颗粒大小、表面散射以及光程变化对NIR漫反射光谱的影响,去散射处理（Detrend）是一种用来消除漫反射光谱的基线漂移光谱处理方法,通常与SNV联合使用（SNV+Detrend）^[29]。

图2为青花菜样品经近红外光谱分析仪得到的近红外原始光谱图,其中横坐标代表光谱波长（nm）,纵坐标为青花菜样本的吸光度,对其分析可知青花菜样品在400—1 092 nm的波长范围内有明显的吸收峰和基本相同的变化趋势,说明青花菜样品的吸光度与其化学成分含量之间存在相关性,有利于近红外模型的建立。图3为原始光谱经过SNV+Detrend+FD处理后的光谱曲线图,与原始光谱相比,处理过的光谱曲线起伏更加显著,峰变得更多更尖锐,一些原本平滑的部分也出现了吸收峰。图4为原始光谱经过SNV+Detrend+SD处理后的光谱曲线图,明显出现拟合的现象。

图2

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图2青花菜近红外原始光谱

Fig. 2Original near-infrared spectrum of broccoli

图3

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图3SNV+Detrend+FD处理后光谱图

Fig. 3Spectra treated by the SNV+Detrend+FD method

图4

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图4SNV+Detrend+SD处理后的光谱

Fig. 4Spectra treated by the SNV+Detrend+SD method

2.3 青花菜硫代葡萄糖苷组分的分析

在利用偏最小二乘回归法（partial least squares,PLS）分析的基础上,采用8种数据处理方法进行处理,比较结果所得参数,确定最合适的处理方法,RSQ是定标相关系数,1-VR是内部交叉验证相关系数,都是越接近于1越好。由表2和表3可知,RAA内部交叉检验效果较好,经过SNV+SD处理后的RSQ和1-VR值分别为0.867和0.846,GBC经过SNV+SD处理后的相关系数RSQ和1-VR值分别达到0.912和0.892。结果表明,该方法用于预测青花菜中RAA和GBC的含量切实可行。

Table 2
表2
表2不同处理方法对青花菜中RAA组分定标方程的对比
Table 2Comparison of calibration equations of RAA in broccoli by different treatment methods

光谱预处理方法 Spectral treatment method	RAA
	定标相关系数 RSQ	矫正标准偏差 SEC	内部交叉验证误差 SECV	内部交叉验证相关系数 1-VR
原始光谱+FD Original spectrum+FD	0.814	1.436	1.461	0.808
原始光谱+SD Original spectrum+SD	0.848	1.263	1.330	0.831
SNV+Detrend+FD	0.832	1.363	1.402	0.823
SNV+Detrend+SD	0.859	1.214	1.275	0.844
SNV+FD	0.834	1.359	1.401	0.823
SNV+SD	0.867	1.209	1.269	0.846
Detrend+SD	0.794	1.511	1.535	0.788
Detrend+FD	0.839	1.319	1.385	0.823

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Table 3
表3
表3不同处理方法对青花菜中GBC组分定标方程的对比
Table 3Comparison of GBC in broccoli with different treatment methods

光谱预处理方法 Spectral treatment method	GBC
	定标相关系数 RSQ	矫正标准偏差 SEC	内部交叉验证误差 SECV	内部交叉验证相关系数 1-VR
原始光谱+FD Original spectrum+FD	0.860	0.813	0.829	0.854
原始光谱+SD Original spectrum+SD	0.884	0.778	0.825	0.869
SNV+Detrend+FD	0.861	0.831	0.845	0.855
SNV+Detrend+SD	0.899	0.717	0.760	0.887
SNV+FD	0.862	0.846	0.867	0.854
SNV+SD	0.912	0.692	0.738	0.892
Detrend+FD	0.849	0.836	0.861	0.839
Detrend+SD	0.875	0.802	0.842	0.862

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2.4 青花菜硫代葡萄糖苷组分的近红外光谱模型的建立

2.4.1 青花菜硫代葡萄糖苷组分中RAA的近红外光谱模型建立 通过表2中不同的建模效果对比,采用SNV+SD处理后的模型效果较好,SNV+Detrend+SD效果次之,相关系数为0.859,内部交叉验证相关系数为0.844;Detrend+FD的相关系数为0.794,内部交叉验证相关系数为0.788,效果最差。因此将SNV+SD处理作为预处理方法,对青花菜硫代葡萄糖苷中RAA组分进行建模。建模后的效果如图5所示,该效果图能够直观地体现出模型的预测效果,样品无规律地分布在直线两侧的区域,整体呈均匀离散的趋势,没有出现大的偏差,说明模型较准确,可以用于青花菜中RAA含量的预测。

图5

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图5RAA模型效果图

Fig. 5RAA model result



2.4.2 青花菜硫代葡萄糖苷组分中GBC的近红外光谱模型建立 由表3可以看出,采用SNV+FD处理后的模型效果最好。SNV+Detrend+SD效果次之,相关系数为0.899,内部交叉验证相关系数为0.887,Detrend+SD的相关系数为0.841,内部交叉验证相关系数为0.862,效果最差。因此采用SNV+FD对数据进行处理,然后对青花菜硫代葡萄糖苷中GBC组分进行建模,建模后的效果如图6所示,模型较准确,该模型可以用于青花菜硫代葡萄糖苷中GBC组分的快速预测实践中,实现高效筛选。

图6

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图6GBC模型效果图

Fig. 6GBC model result

2.5 模型验证与分析

基于已建立的模型,随机选择20个与建模样品无关的样品进行验证,使用HPLC测得的样品含量等理化指标,然后使用已建立的模型对这些样品中RAA和GBC含量进行预测,结果如表4所示。通过验证集进行外部检验可以看出,预测青花菜蔬菜粉样品中RAA含量的外部检验相关系数为0.918,预测GBC含量的外部检验相关系数为0.960,RAA的检验偏差较低（0.143）;GBC的检验偏差仅有0.064,模型效果较好,因此可以使用此模型来快速预测青花菜蔬菜粉原料中RAA和GBC的含量。

Table 4
表4
表4校正模型对外部验证集样品的分析
Table 4Analysis of validation samples by calibration model

组分 Components	外部检验 External inspection
	验证集（个） Validation set (n)	平均值 Mean		外部检验相关系数 RSQ	预测标准差 SEP	检验偏差 Bias
		Lab	NIR
RAA	20	6.325	6.166	0.918	1.429	0.143
GBC	20	4.319	4.467	0.960	0.780	0.064

Lab是化学方法检测数据,NIR是近红外快速预测数据
Lab is the test data of chemical method, NIR is the fast prediction data of near infrared

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3 讨论

青花菜作为一种营养价值高的蔬菜,在东西方膳食结构中占有重要的地位。青花菜含有的萝卜硫素前体物质RAA的抗癌作用已经有大量研究文献^[1-2,5-7]。哈佛大学医学院研究人员最新发现青花菜中含有的活性物质GBC的降解产物吲哚-3-甲醇（I3C）可以有效抑制E3泛素连接酶（WWP1）的功能来促进肿瘤细胞中PTEN的活化,从而发挥抑制肿瘤发生和发展的作用^[30]。因此,筛选和培育抗癌硫苷含量高的品种已经成为青花菜品质育种的重要目标。

硫苷的分析方法包括HPLC技术测定完形和脱硫硫苷,以及HPLC/MS技术测定完形硫苷,可以准确定性和定量,但是存在花费较高（HPLC-MS）、分析时间长（HPLC）等缺点,限制了大量育种材料的及时筛选和评价。近红外光谱法是根据样品内有机官能团（OH、CH、NH、SH）的自身振动吸收近红外光谱区相应波长的能量,从而产生能量的跃迁在光谱中表现出来^[13]。随着计算机技术的发展和广泛应用、化学计量学研究的深入以及近红外光谱仪器制造技术的完善,NIRs分析技术在多个领域特别是农业领域得到广泛的应用和发展。

近红外光谱分析技术不同于其他常规分析技术,采用间接校正方法,通过建立校正模型来预测未知样品成分,分析结果受代表性样品的选择、近红外光谱准确性等众多因素的影响^[31]。任何能够对样本的光谱数据及测量数据产生影响的因素,都有可能影响到所建模型的质量。近红外光谱分析技术的关键是建立一个预测准确、抗干扰能力强的校正分析模型,从而实现对未知样本的定性或定量分析^[32]。

标准分析方法提供的化学测定值作为基础数据参与近红外模型的创建,其准确性对于建立一个优质可靠的模型至关重要^[33]。本研究首先对90份青花菜品种资源样品进行了HPLC硫苷种类与含量的测定,结果发现硫苷的含量在品种间的差异很大,RAA含量为0.66—14.54 μmol?g^-1,GBC含量为0.25—10.79 μmol?g^-1。不仅为品质育种提供了筛选材料,同时为近红外模型建立提供了有效数据和保证。

在光谱信息处理过程中,采用不同散射处理方式和导数处理方式对光谱数据进行预处理,消除非目标因素对光谱的影响,提高光谱呈现的准确性,并在此基础上优化光谱范围,选择对样品信息反映突出的光谱区域,筛选出最有效的光谱区域,为建立近红外光谱模型奠定基础。本研究使用青花菜的硫苷种类中,RAA和GBC是抗癌效果最好的活性物质,预测模型RAA的相关系数为0.918,GBC的相关系数为0.960,分析时间短,可在半分钟内完成。研究结果表明NIRs能够很好地应用于大量青花菜育种材料资源的快速筛选。另外,几种硫苷的含量相关系数小于0.6,是否和含量较低或与模型的选择和优化等方面有关,需要进一步研究。

4 结论

对于青花菜硫代葡萄糖苷中4-甲基硫氧丁基硫苷（RAA）和3-甲基吲哚基硫苷（GBC）指标采用SNV+SD处理后的模型效果较好。利用近红外光谱检测系统可以实现青花菜干粉样品中硫代葡萄糖苷含量的快速无损预测,具有数据准确、方法快捷、预处理简单等优点,为青花菜品质指标的快速检测提供了切实可行的技术参考,还可用于青花菜的育种实践当中,实现高营养品质青花菜育种材料快速高效的筛选。

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[1] MURILLO G, MEHTAR G. Cruciferous vegetables and cancer prevention
Nutrition and Cancer, 2001,41:17-28.
DOI:10.1080/01635581.2001.9680607URLPMID:12094621 [本文引用: 2]
In recent years, cancer prevention by natural products has received considerable attention. The potential protective role of cruciferous vegetables and active components present in these vegetables, such as isothiocyanates and indole-3-carbinol, has been extensively studied in experimental in vitro and in vivo carcinogenesis models. Results have consistently shown that the chemopreventive agents derived from this class of vegetables of the Cruciferae family influence carcinogenesis during initiation and promotion phases of cancer development. Similarly, reports from epidemiological studies and clinical trials support this notion. However, there is no comprehensive summary of all these aspects of the association between cruciferous vegetables and cancer prevention. We have attempted to summarize experimental carcinogenesis studies as well as clinical trials and studies on the mechanism of action of selective chemopreventive agents isolated and identified within these natural products. Results clearly point toward a positive correlation between cancer prevention of many target organs and consumption of cruciferous vegetable or their active constituents. Yet we are still far from complete understanding of the effects of combinations of chemopreventive phytochemicals present in these cruciferous vegetables and their overall mechanism(s) of action in providing protective effects.

[2] HERR I, BUCHLER M W. Dietary constituents of broccoli and other cruciferous vegetables: Implications for prevention and therapy of cancer
Cancer Treatment Reviews, 2010,36:377-383.
URLPMID:20172656 [本文引用: 2]

[3] 何洪巨, 陈杭, W. H. Schnitzler. 芸薹属蔬菜中硫代葡萄糖苷鉴定与含量分析
中国农业科学, 2002,35(2) : 192-197.
[本文引用: 1]

HE H J, CHEN H, SCHNITZLER W H. Glucosinolate composition and contents in brassica vegetables
Scientia Agricultura Sinica, 2002,35(2):192-197. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[4] CLARKE D B. Glucosinolates, structures and analysis in food
Analytical Methods, 2010,2:310-325.
[本文引用: 1]

[5] MITHEN R F, DEKKER M, VERKERK R. Review the nutritional significance, biosynthesis and bioavailability of glucosinolates inhuman foods
Journal of the Science of Food and Agriculture, 2000,80:967-984.
[本文引用: 2]

[6] MORENO D A, CARVAJAL M, LOPEZ-BERENGUER C, GARCIA-VIGUERA C. Chemical and biological characterisation of nutraceutical compounds of broccoli
Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2006,41:1508-1522.
URLPMID:16713696 [本文引用: 1]

[7] TALALAY P, FAHEY J W. Phytochemicals from cruciferous plants protect against cancer by modulating carcinogen metabolism
Journal of Nutrition, 2001,131:3027-3033.
[本文引用: 2]

[8] 马越, 丁云花, 刘光敏, 胡丽萍, 赵学志, 何洪巨. 青花菜花球及叶片中硫代葡萄糖组分及含量分析
江苏农业科学, 2016,44(7):300-303.
[本文引用: 1]

MA Y, DING Y H, LIU G M, HU L P, ZHAO X Z, HE H J. Analysis of glucosinolate composition and content in broccoli bulbs and leaves
Jiangsu Agricultural Sciences, 2016,44(7):300-303. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[9] AGGARWAL B B, ICHIKAWA H. Molecular targets and anticancer potential of indole-3-carbinol and its derivatives
Cell Cycle, 2005,4:1201-1215.
URLPMID:16082211 [本文引用: 1]

[10] WENG J R, TSAI C H, KULP S K, CHEN C S. Indole-3-carbinol as a chemopreventive and anti-cancer agent
Cancer Letters, 2008,262:153-163.
URLPMID:18314259 [本文引用: 1]

[11] RAMIREZ M C, SINGLETARY K. Regulation of estrogen receptorexpression in human breast cancer cells by sulforaphane
The Journal of Nutritional Biochemistry, 2009,20:195-201.
URLPMID:18602823 [本文引用: 1]

[12] 杨燕宇, 陈社员. 油菜品质近红外反射光谱分析建模及应用研究进展
作物研究, 2007,21(2):152-156.
[本文引用: 1]

YANG Y Y, CHEN S Y. Progress on modeling of rapeseed quality analysis by near-infrared reflectance spectra analysis and its application
Crop Research, 2007,21(2):152-156. (in Chinese )
[本文引用: 1]

[13] 李庆春, 王文真, 张玉良. 近红外漫反射光谱分析法(NIRS)在作物品质育种中的应用
作物学报, 1992,18(3) : 235-240.
[本文引用: 2]

LI Q C, WANG W Z, ZHANG Y L. Application of NIR diffuse reflectence spectroscopy analysis in crop quality breeding
Acta Agronomica Sinica, 1992,18(3):235-240. (in Chinese )
[本文引用: 2]

[14] 鲍峰伟, 刘景艳. 近红外光谱分析技术在石油化工中的应用
贵州化工, 2006,36(6):34-36, 37.
[本文引用: 1]

BAO F W, LIU J Y. Application of near infrared spectroscopy in petrochemical industry
Guizhou Chemical Industry, 2006,36(6):34-36, 37. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[15] 董文宾, 王顺民. 近红外光谱技术在食品分析中的应用
食品研究与开发, 2004,25(1):113-114.
[本文引用: 1]

DONG W B, WANG S M. Application of near-infrared spectroscopy in food analysis
Food Research and Development, 2004,25(1):113-114. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[16] JHA S N, MATSUOKA T. Non-destructive determination of acid-brix ratio of tomato juice using near infrared spectroscopy
International Journal of Food Science and Technology, 2004,39(4):425-430.
[本文引用: 1]

[17] PEDRO A M K, FERREIRA M M C. Nondestructive determination of solids and carotenoids in tomato products by near-infrared spectroscopy and multivariate calibration
Analytical chemistry, 2005,77:2505-2511.
DOI:10.1021/ac048651rURLPMID:15828787 [本文引用: 1]
Tomato is an important player in the agricultural market. It is the second most consumed vegetable in the world and is a source of important micronutrients such as lycopene and beta-carotene. Recent research has demonstrated that these carotenoids can act as free-radical quenchers in the body and prevent aging, tissue damage, heart disease, and certain cancers. Besides these microcomponents, tomato is composed of soluble and insoluble solids. In industry, these solids govern factory yield and play a major role in the tomato trade. Nowadays, standard methods for determining tomato solids and carotenoids are time and labor consuming. In this work, we present the development of a simultaneous and nondestructive method for determining total and soluble solids, as well as lycopene and beta-carotene, in tomato products by near-infrared spectroscopy. PLS-1 was the calibration technique chosen. For spectra preprocessing, MSC and second derivative were applied. As variable selection techniques, the correlogram cutoff, the successive projections algorithm, the dimension wise selection, and spectra splitting approach were applied. Best models presented satisfactory prediction abilities evaluated through its RMSEP and r values: total solids 0.4157, 0.9998; soluble solids 0.6333, 0.9996; lycopene 21.5779, 0.9996; beta-carotene 0.7296, 0.9981.

[18] 覃方丽, 闵顺耕, 石正强, 马海燕, 车江旅. 鲜辣椒中糖份和维生素C含量的近红外光谱非破坏性测定
分析试验室, 2003,22(4):59-61.
[本文引用: 1]

QIN F L, MIN S G, SHI Z Q, MA H Y, CHE J L. Nondestructive determination of sugar and vitamin C in raw pepper by near-infrared spectroscopy
Chinese Journal of Analysis Laboratory, 2003,22(4):59-61. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[19] 王多加, 钟娇娥, 胡祥娜, 张兵, 周向阳, 金同铭, 吴启堂. 用傅里叶变换近红外光谱和偏最小二乘法测定蔬菜中硝酸盐含量
分析化学, 2003,31(7):892.
[本文引用: 1]

WANG D J, ZHONG J E, HU X N, ZHANG B, ZHOU X Y, JIN T M, WU Q T. Determination of nitrate content in vegetables by Fourier transform near-infrared spectroscopy and partial least square method
Chinese Journal of Analytical Chemistry, 2003,31(7):892. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[20] 金同铭, 崔洪昌. 苹果中蔗糖、葡萄糖、果糖、苹果酸的非破坏检测
华北农学报, 1997,12(1):91-96.
[本文引用: 1]

JIN T M, CUI H C. Non-destructive determination of sucrose, glucose, fructose and malic acid in apple
Acta Agriculture Boreali-Sinica, 1997,12(1):91-96. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[21] FONT R, DEL RIO M, FERNANDEZ-MARTINEZ J M, DE HARO-BAILON A. Use of near-infrared spectroscopy for screening the individual and total glucosinolate contents in Indian mustard seed (Brassica juncea L. Czern. & Coss.)
Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2004,52(11):3563-3569.
[本文引用: 1]

[22] CHEN J, LI L N, WANG S S, TAO X Y, WANG Y, SUN A D, HE H J. Assessment of glucosinolates in Chinese kale by Near-infrared spectroscopy
International Journal of Food Properties, 2014,17:1668-1679.
[本文引用: 1]

[23] 王耐红, 张敏, 王瑞, 李施蒙, 刘川. 甘蓝型油菜硫苷组分近红外检测模型的建立
西南大学学报(自然科学版) , 2015,37(3):35-41.
[本文引用: 1]

WANG N H, ZHANG M, WANG R, LI S M, LIU C. The construction of near infrared inspection model for glucosinolate constituent content in Brassica napus L
Journal of Southwest University (Natural Science Edition), 2015,37(3):35-41. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[24] 贺启川, 蒙大庆, 李芝凡, 胥岚, 汤天泽, 范启新, 陈军. 近红外光谱仪快速检测油菜硫苷、芥酸及油份含量数学模型的建立
激光生物学报, 2009,18(6):815-818.
[本文引用: 1]

HE Q C, MENG D Q, LI Z F, XU L, TANG T Z, FAN Q X, CHEN J. Establishment of mathematical models for glucosinolates, erucic acid and oil content in rapeseeds by near-infrared reflectance spectroscopy
Acta Laser Biology Sinica, 2009,18(6):815-818. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[25] 郭泽慧. 萝卜硫苷组分近红外定标模型的构建
[D]. 杭州: 浙江农林大学, 2017.
[本文引用: 1]

GUO Z H. NIR spectroscopy model construction for glucosinolate content in radish
[D]. Hangzhou: Zhejiang A & F University, 2017. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[26] HE H, PING L, BONNEMA G, DEKKER M, VERKERK R. Genetic variation in glucosinolate content withinBrassica rapa vegetables
Acta Horticulturae, 2012,944:129-140.
[本文引用: 1]

[27] 褚小立, 袁洪福, 陆婉珍. 近红外分析中光谱预处理及波长选择方法进展与应用
化学进展, 2004,4:528-542.
[本文引用: 1]

CHU X L, YUAN H F, LU W Z. Progress and application of spectral data pretreatment and wavelength selection methods in NIR analytical technique
Progress in Chemistry, 2004,4:528-542. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[28] 陆婉珍, 袁洪福, 褚小立. 近红外光谱仪器. 第1版. 北京: 化学工业出版社, 2010: 29.
[本文引用: 1]

LU W Z, YUAN H F, CHU X L. Near Infrared Spectroscopy Instrument. 1st ed. Beijing: Chemical Industry Press, 2010: 29. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[29] 张斌. 稻米氨基酸含量的近红外定标模型的创建及应用
[D]. 杭州: 浙江大学, 2010.
[本文引用: 1]

ZHANG B. NIR spetroscopy model construction and application for amino acid composition in rice grain
[D]. Hangzhou: Zhejiang University, 2010. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[30] LEE Y, CHEN M, LEE J D, ZHANG J, LIN S, FU T, CHEN H, ISHIKAWA T, CHIANG S, KATON J, ZHANG Y, SHULGA Y V, BESTER A C, FUNG J, MONTELEONE E, WAN L, SHEN C, HSU C, PAPA A, CLOHESSY J G, TERUYA-FELDSTEIN J, JAIN S, WU H, MATESIC L, CHEN R, WEI W, PANDOLFI P P. Reactivation of PTEN tumor suppressor for cancer treatment through inhibition of a MYC-WWP1 inhibitory pathway
Science, 2019, 364(6441): eaau0159.
DOI:10.1126/science.aax3501URLPMID:31097651 [本文引用: 1]

[31] WILLIAMS P, NORRIS K. Near Infrared Technology in the Agriculture and Food Industries
Washington, D.C.: American Association of Cereal Chemists, Inc, 1987: 35-37.
[本文引用: 1]

[32] 褚小立, 袁洪福, 陆婉珍. 基础数据准确性对近红外光谱分析结果的影响
光谱学与光谱分析, 2005,25(6):886-889.
[本文引用: 1]

ZHU X L, YUAN H F, LU W Z. Effects of the accuracy of reference data on NIR prediction results
Spectroscopy and Spectral Analysis, 2005,25(6):886-889. (in Chinese)
[本文引用: 1]

[33] 张宁, 张德权, 李淑荣, 周洪杰, 李庆鹏, 方梦琳. 近红外光谱定性分析技术在食品安全中的应用研究进展
食品与检测, 2008,33(8):218-221.
[本文引用: 1]

ZHANG N, ZHANG D Q, LI S R, ZHOU H J, LI Q P, FANG M L. Development of the application of qualitative analysis by near infrared spectroscopy in food safety
Food Science and Technology, 2008,33(8):218-221. (in Chinese)
[本文引用: 1]