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适于陆地棉品种身份鉴定的SNP核心位点筛选与评价

本站小编 Free考研考试/2021-12-26

朱国忠, 张芳, 付洁, 李乐晨, 牛二利, 郭旺珍,*南京农业大学 / 作物遗传与种质创新国家重点实验室 / 杂交棉创制教育部工程研究中心, 江苏南京 210095

Genome-wide Screening and Evaluation of SNP Core Loci for Identification of Upland Cotton Varieties

ZHU Guo-Zhong, ZHANG Fang, FU Jie, LI Le-Chen, NIU Er-Li, GUO Wang-Zhen,*State Key Laboratory of Crop Genetics & Germplasm Enhancement / Hybrid Cotton R&D Engineering Research Center (the Ministry of Education) / Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, Jiangsu, China

通讯作者: 郭旺珍, E-mail: moelab@njau.edu.cn

第一联系人: E-mail: zhugz@njau.edu.cn
收稿日期:2018-02-25接受日期:2018-08-20网络出版日期:2018-09-04
基金资助:本研究由国家重点研发计划项目.2017YFD0102000
江苏现代作物生产协同创新中心.No.10


Received:2018-02-25Accepted:2018-08-20Online:2018-09-04
Fund supported: This study was supported by the National Key R&D Program for Crop Breeding.2017YFD0102000
Jiangsu Collaborative Innovation Center for Modern Crop Production Project.No.10


摘要
利用全基因组SNP信息, 筛选陆地棉品种特异的核心SNP位点组合, 可为陆地棉品种身份鉴定提供准确高效的检测手段。本研究利用棉花CottonSNP80K芯片对326份不同来源的陆地棉种质进行SNP分型。以南京农业大学陆地棉TM-1基因组Gossypium hirsutum (AD1) genome NBI v1.1版本为参考序列, 对SNP位点进行注释。结果表明, 93.85% (72 990/77 774)的位点检出率超过99%, 61 595 (79.20%)个SNP位点具有多态性, 其中76.32% (47 009)的位点最小等位基因频率(MAF)大于0.1。基于位点检出率大于0.99、位点具多态性、MAF大于0.2、杂合率小于0.05、每条染色体的SNP密度为400 kb/SNP左右等要求, 最终获得4857个覆盖全基因组的高质量核心SNP位点组合。这些核心SNP位点组合平均检出率接近100%; 平均MAF值为0.34; 平均杂合率为0.02; 99%以上的陆地棉材料均能够被准确鉴定。统计分析表明利用核心SNP位点组合与CottonSNP80K的鉴定结果呈极显著相关。本研究提供了包含4857个SNP位点, 适于陆地棉品种指纹图谱绘制的核心SNP位点组合, 可实现陆地棉品种身份鉴定和品种确权。
关键词: DNA芯片;指纹图谱;SNP;核心位点;陆地棉

Abstract
Utilizing the genome-wide SNP information to screen the core SNP loci may provide an accurate and efficient method for the identification of upland cotton varieties. Using the CottonSNP80K array, SNP genotyping was performed within 326 upland cotton accessions. Then, the SNP loci were annotated with TM-1 genomic sequence of Gossypium hirsutum (AD1) genome NBI v1.1 Upland cotton of Nanjing Agricultural University as reference sequence. Statistical analysis of all loci in CottonSNP80K showed that the call rate of 93.85% loci (72 990 in 77 774) was more than 99%, and 61 595 (79.20%) SNPs were polymorphic loci among the tested upland cotton accessions. Among them, minor allele frequency (MAF) of 76.32% (47 009) loci was greater than 0.1. Based on call frequency for each locus > 0.99; loci with polymorphism; MAF > 0.2; heterozygosity rate < 0.05; SNP density with ~400 kb/SNP in each chromosome, we obtained 4857 high-quality core SNP loci. The characteristic statistics of the core SNP loci combination showed that the average call rate was nearly 100%; the average MAF was 0.34; and the average heterozygosity was 0.02. Using these core SNPs, more than 99% of the materials could be identified accurately and effectively. In addition, the identification results of core SNP loci showed extremely significant linear correlation with that of CottonSNP80K. Taken together, a core combination containing 4857 SNP loci for fingerprint identification of upland cotton varieties is constructed, which can accurately identify the purity and reality of modern upland cotton varieties.
Keywords:DNA array;fingerprint;SNP;core loci;Upland cotton


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本文引用格式
朱国忠, 张芳, 付洁, 李乐晨, 牛二利, 郭旺珍. 适于陆地棉品种身份鉴定的SNP核心位点筛选与评价[J]. 作物学报, 2018, 44(11): 1631-1639. doi:10.3724/SP.J.1006.2018.01631
ZHU Guo-Zhong, ZHANG Fang, FU Jie, LI Le-Chen, NIU Er-Li, GUO Wang-Zhen. Genome-wide Screening and Evaluation of SNP Core Loci for Identification of Upland Cotton Varieties[J]. Acta Agronomica Sinica, 2018, 44(11): 1631-1639. doi:10.3724/SP.J.1006.2018.01631


棉花(Gossypium spp.)是世界性重要的天然纤维作物, 也是重要的油料作物之一, 在农业生产和国民经济中占有重要地位。陆地棉和海岛棉是两大异源四倍体栽培棉种。陆地棉产量高, 适应性广, 纤维品质中等, 占全球棉花种植面积的95%以上[1]。中国是世界最大的棉花生产、消费和纺织大国, 在棉花种植和新品种培育方面有悠久的历史和丰富的经验[2]。然而, 中国非棉花起源国, 生产上种植的陆地棉栽培品种遗传背景狭窄。随着育种进程的加快, 少数骨干亲本的集中应用, 以及转基因等新技术在棉花育种中的应用, 棉花品种间的遗传多样性越来越小[3,4]。再加上品种套种等销售过程的不规范现象, 仅仅依靠形态性状越来越难辨别棉花品种, 给种子生产、经营、管理、维权等诸多环节带来挑战, 急需从DNA水平研制准确表明每一品种身份的“指纹”。

基于各种类型的分子标记, 很多研究者已经开展标记技术在棉花品种鉴定中的应用[5,6]。其中SSR (Simple Sequence Repeats)分子标记以重复性好、操作简单、呈共显性等优点, 应用最为广泛。利用SSR标记技术, 武耀廷等绘制了4个高优势杂交种的指纹图谱[7], 马轩等[8]建立了18个彩色棉品系的DNA指纹图谱, 秦利等[9]开展了新疆部分主栽品种的指纹图谱构建和杂交种纯度鉴定研究。赵亮等通过全基因组范围SSR标记筛选, 获得一套多态性高, 易于鉴别, 且涉及四倍体陆地棉26条连锁群的26对SSR引物, 并用于棉花品种DNA条形码数据库构建[10]。上述研究对棉花品种身份及纯度鉴定起到了一定的作用。但相比于全基因组覆盖的SNP (Single Nucleotide Polymorphism)标记, SSR标记仍存在基因组中分布不均匀、基因分型多态性不高, 以及基因组覆盖度不够等问题, 尚不能满足不同基因型高通量分子鉴定及选择的需求。SNP标记是基因组中分布最广泛, 数量最丰富的DNA分子标记。利用覆盖全基因组的SNP芯片, 可以通过一次杂交实现数以万计、十万计、乃至百万计的SNP位点分型, 具有成本低、通量高、获得的信息量大等优势, 受到广泛的关注和应用[11,12]。匡猛等[13]基于KASP技术开发了一套适用于我国棉花杂交纯度检测的核心SNP技术, 为棉花指纹图谱构建提供支撑。孙正文等[14]利用CottonSNP63K芯片筛选了393个核心SNP位点, 构建了719份陆地棉资源材料的特征DNA指纹图谱。

结合芯片技术, 筛选覆盖全基因组的核心SNP位点, 绘制陆地棉栽培品种SNP指纹图谱, 开展自动化、高通量、准确的棉花种子质量监控研究, 可为棉花种业安全提供保障。前期本研究室公布了较高质量的异源四倍体棉种陆地棉遗传标准系TM-1基因组信息[15], 结合100余份不同来源陆地棉材料的重测序信息, 研发了覆盖全基因组、适于陆地棉种内基因型鉴定的高多态SNP芯片(CottonSNP80K), 该芯片位点源于陆地棉种内差异, 可寻址, 多态性高, 能有效用于陆地棉种内基因型鉴定和目标基因发掘[16]。本研究利用CottonSNP80K芯片对300余份不同来源陆地棉品种/材料的分型结果, 通过分析不同位点遗传多样性鉴定信息, 筛选高多态、可重复、易分辩、强专一的SNP位点集合, 用于构建陆地棉品种指纹图谱和品种确权分析, 服务种子产业化和品种知识产权保护需求。

1 材料与方法

1.1 试验材料

共326份, 包括遗传背景广泛, 不同来源的陆地棉品种/材料312份(编号C21-C332), 和不同的近等基因系14份(编号E7-E20)。材料信息及编号与Cai等[16]一致。所有资源材料引自中国农业科学院棉花研究所国家棉花种质中期库, 由南京农业大学棉花研究所自交保存。

1.2 DNA提取与质量控制

针对每一供试材料, 选取健康种子发芽, 生长到二叶一心时, 摘取棉花嫩叶, 采用CTAB法提取基因组DNA[17]。用1%琼脂糖电泳检测所提样品的DNA质量, 要求DNA条带单一、无弥散、无RNA残留。利用One Drop-OD 1000进一步检测DNA质量和浓度, 要求光吸收值A260/280介于1.7~2.1、样品浓度 > 50 ng μL-1、单个样品总量 > 1 μg。

1.3 SNP检测与数据分析

利用我们自主研发的棉花CottonSNP80K芯片[16], 进行供试材料的基因组SNP分型分析。参照标准实验流程(基于光纤微珠芯片的Infinium技术, the Illumina protocols)检测SNP, 用iScan芯片扫描仪对杂交结果扫描。委托北京康普森生物技术有限公司完成全基因组扫描。将通过芯片扫描获得的原始数据导入GenomeStudio软件(V2011.1, Illumina, Inc.)进行SNP分型。由于GenomeStudio只能以二倍体模式分型, 针对异源四倍体陆地棉, 我们在默认分型的结果上进行了人工调整, 使分型结果更加准确[16]。SNPs的位置对应南京农业大学陆地棉TM-1基因组Gossypium hirsutum (AD1) genome NBI v1.1版本的参考基因组序列信息[15]。软件分型后自动输出SNP位点检出率。根据SNP位点的分型结果, 使用Microsoft Excel软件计算与统计分析最小等位基因频率(MAF)、杂合率和多态信息含量(PIC)。

1.4 SNP位点分型结果验证

使用在线工具WebSNAPER (pga.mgh.harvard. edu/cgi-bin/snap3/websnaper3.cgi)对拟选择验证的SNP位点进行特异性引物设计。首先随机选择芯片检测有多态的棉花材料TM-1、I4005、DPL15、泗棉3号等对所开发的SNP引物进行多态性筛选, 进一步选择不同来源的24份陆地棉材料进行SNP位点的验证分析。统计比较聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)与芯片的分型结果, 评价芯片的分型准确率。SNP-PCR扩增的反应程序为, 95℃ 5 min预变性; 94℃ 30 s变性, 65℃ 30 s退火, 72℃ 30 s延伸, 28循环数; 72℃终延伸10 min。扩增产物经非变性PAGE电泳(恒压226 V, 1.0~1.5 h), 通过银染DNA显带, 记录多态性数据。

2 结果与分析

2.1 SNP位点特性评估

前期我们研发了覆盖全基因组、适于陆地棉种内基因型鉴定的高多态SNP芯片(CottonSNP80K), 并利用该芯片获得300余份不同来源陆地棉品种/材料的基因组分型结果[16]。为了进一步发掘核心SNP位点, 用于陆地棉栽培品种指纹图谱构建, 统计分析了CottonSNP80K芯片中所有位点的检测结果(图1)。CottonSNP80K中包含77 774个有效的SNP位点, 63.61% (49 477)的SNP位点间的距离在2~10 kb, 15.05% (11 706)的位点间距大于30 kb, 标记的染色体密度为24.9 kb/SNP。利用该芯片对312份陆地棉材料(编号: C21~C332)进行SNP分型, 99.40% (77 304)的位点检出率大于95%, 93.85% (72 990)的位点检出率超过99%, 表明该芯片对陆地棉SNP位点有很高的分型效率。73.02% (56 672)的位点杂合率低于5%, 但有14.89% (11 554)的位点杂合率高于50%。高杂合率的位点主要源于异源四倍体棉花A、D亚基因组间杂合。61 595 (79.20%)个SNP位点显示多态性, 其中76.32% (47 009)的位点MAF大于0.1。在此基础上进一步筛选和简化, 获得适于陆地棉品种分型的核心SNP位点组合。

图1

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图1CottonSNP80K芯片SNP位点特征统计

横坐标代表被统计的SNP特征参数, 依次为位点检出率、最小等位基因频率、杂合率和相邻SNP之间的距离。纵坐标代表SNP的分布数目。
Fig. 1Characteristic statistics of the SNPs on CottonSNP80K array

The abscissa represents statistical SNP characteristic parameters, involved in loci call frequency, minor allele frequency (MAF), heterozygosity and distance between adjacent SNPs. The ordinate represents the number of SNPs.


2.2 用于品种指纹图谱构建的核心SNPs挖掘

基于CottonSNP80K中77 774个SNP位点的多态性和相邻SNP间距信息, 进一步开展分层筛选, 确定核心SNP位点。(1)去除检出率小于99%的SNP位点后, 余72 990个位点; (2)去除供试材料中表现SNP单态的位点, 余57 244个位点; (3)筛选MAF大于0.2的位点, 获得28 851个位点; (4)筛选杂合率小于0.05的位点, 获得19 934个位点; (5)基于前期研究提供的陆地棉栽培品种连锁不平衡(LD)距离[16], 标记密度选择平均每条染色体400 kb/SNP, 分型相对简单, 具有二倍体作物SNP特性。结合人工过滤, 删除由多拷贝产生的复杂分型位点, 确保核心位点的特异性, 最终获得4857个多态性高、重复性好、二维表型易分辩、特异性强的高质量SNP位点。

表1显示, 中选的4857个SNP位点中, 2908个位于A亚组, 分布密度为399.0 kb/SNP; 1949个位于D亚组, 分布密度为397.3 kb/SNP。由于陆地棉群体LD衰减距离约为700 kb[16], 本研究筛选的核心SNP位点其分布密度可以覆盖全基因组。

Table 1
表1
表1用于指纹图谱绘制的核心SNP位点染色体分布
Table 1Chromosome distribution of the core SNPs for fingerprint analysis
染色体
Chr.
染色体长度
Chr. length
(Mb)
标记数Number of SNPs分布密度
Density
(kb/SNP)
染色体
Chr.
染色体长度
Chr. length
(Mb)
标记数Number of SNPs分布密度
Density
(kb/SNP)
A0199.9250399.5D0161.5153401.7
A0283.4207403.1D0267.3169398.1
A03100.3248404.3D0346.7118395.7
A0462.9156403.3D0451.5128402.0
A0592.0237388.4D0561.9156397.0
A06103.2255404.6D0664.3164392.0
A0778.3197397.2D0755.3138400.8
A08103.6258401.7D0865.9164401.8
A0975.0183409.8D0951.0128398.4
A10100.9256394.0D1063.4156406.2
A1193.3242385.6D1166.1169391.1
A1287.5215406.9D1259.1150394.1
A1380.0204392.0D1360.5156388.0
Total1160.22908399.0Total774.41949397.3

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4857个候选SNP位点的各参数与CottonSNP80K上的原始位点检测结果比较, 本研究用于品种指纹图谱分析的核心位点检出率接近100%; 平均MAF值为0.34, 平均PIC为0.44, 多态性显著提高; 同时, 候选位点的平均杂合率降低到0.02, 更加有利于陆地棉品种身份及真实性检测(表2)。

Table 2
表2
表2用于品种指纹图谱分析的核心SNP位点特征统计
Table 2Characteristic statistics of the core SNPs for fingerprint analysis
类型
Type
最大值
Max.
最小值
Min.
平均值
Mean
检出率 Call frequency1.000.991.00
最小等位基因频率 MAF0.500.200.34
杂合率 Heterozygosity0.050.000.02
多态信息含量 PIC0.500.320.44

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2.3 核心SNP组合鉴定陆地棉栽培品种效率评估

使用核心SNP位点组合对312份陆地棉品种/材料进行身份鉴定, 99%以上的品种均能实现准确有效的鉴别, 其遗传距离最大为0.6047, 最小为0.0001。为了评估候选SNP对不同陆地棉品种的鉴定效率, 分别用CottonSNP80K总77 774位点和用于指纹图谱绘制的4857个位点对312份陆地棉品种材料进行遗传距离相关性分析(图2), 结果显示, 利用核心SNP位点组合与CottonSNP80K的鉴定结果呈极显著线性相关(P < 0.01)。表明本研究所筛选的核心SNP位点集合具有代表性, 可有效用于陆地棉品种身份鉴定。

图2

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图2312份陆地棉品种遗传距离相关性分析

横坐标代表利用芯片总位点计算的材料间遗传距离, 纵坐标代表利用核心位点计算的材料间遗传距离。
Fig. 2Correlation analysis of genetic distance of the 312 upland cotton accessions

The abscissa represents the genetic distance between the materials calculated by the total loci in CottonSNP80K. The ordinate represents the genetic distance between the materials calculated by the core loci.


为了进一步评估核心SNP位点组合的分辨力, 选择14份近等基因系材料(编号: E7~E20)进行遗传多样性分析。基于核心位点SNP检测结果, 通过两两比较, 获得近等基因系材料之间的差异位点数(多态位点)并计算其占总位点的比例(多态率)。与CottonSNP80K芯片上77 774个SNP位点的检测结果相比[16], 遗传背景相近的近等基因系间其多态率均显著提高(表3)。其中新乡小吉和新乡小吉无绒无絮突变体间的多态率由16.1%提升到25.0%; 徐州142和徐州142无绒无絮突变体间由19.0%提升到30.6%; 7235和7235纤维突变体间由25.0%提升到52.4%。另外陆地棉遗传标准系TM-1与其5个纤维发育突变体间的多态性范围从22.7%~30.6%提高到44.7%~64.2%。上述分析表明, 新筛选的4587个核心SNP位点多态性高, 非常适用于陆地棉品种指纹图谱的绘制和身份鉴定。

Table 3
表3
表3基于核心SNP位点的陆地棉近等基因系多态性检测
Table 3Detection of polymorphism between the near-isogenic lines of upland cotton using the core SNP loci combination
材料
Accession
多态位点(总位点/核心位点)
No. of polymorphic loci
(total loci/core loci)
多态率(总位点/核心位点)
Polymorphic rate
(total loci/core loci)
新乡小吉和新乡小吉无绒无絮突变体
Xinxiangxiaoji linted-fuzzless vs. Xinxiangxiaoji lintless-fuzzless
12529/12150.161/0.250
徐州142和徐州142无绒无絮突变体
Xuzhou-142 vs. Xuzhou-142 lintless-fuzzless
14808/14880.190/0.306
7235和7235纤维突变体
7235 vs. 7235 mutant
19451/25460.250/0.524
TM-1和SL1-7-1突变体
TM-1 vs. SL1-7-1
20859/21880.268/0.450
TM-1和 MD-17突变体
TM-1 vs. MD-17
23814/23670.306/0.487
TM-1和显性光子N1突变体
TM-1 vs. N1 (dominant naked seed)
17678/21700.227/0.447
TM-1和隐性光子n2突变体
TM-1 vs. n2 (recessive naked seed)
19996/24460.257/0.503
TM-1和im突变体
TM-1 vs. im (immature fiber)
16333/31160.210/0.642
The analysis from total loci was performed using a total of 77 774 loci in CottonSNP80K, and the analysis from core loci was performed using 4857 core loci screened.
总位点: 数据来自CottonSNP80K中77 774个位点的分析结果; 核心位点: 数据来自筛选后4857个核心位点的分析结果。

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为了验证核心SNP位点的准确性, 从核心SNP位点中随机挑选了14个SNP位点开发特异性SNP引物, 选择24份陆地棉材料进行SNP位点和芯片分型结果的验证分析。芯片分型结果与SNP-PCR一致性高达98.8% (表4图3)。 进一步证明这些核心SNP位点的可利用性和基于芯片SNP分型的准确性。

Table 4
表4
表4芯片分型与SNP-PCR一致性分析
Table 4Consistency analysis between array genotyping and SNP-PCR for the selected SNP loci
SNP染色体
Chr.
位置
Position (bp)
验证不一致数目
Number of mismatches
引物
Primer (5'-3')
TM3086A01863634891F: CTTGATTTTCAATTCAACCAAAAAACTCCG
R: AAAATACATGGACGCAACTATCTGATGCATAATTT
TM4824A02456478060F: TTGAATGAGTCTCATTTTATCAATTGACCTTTATTA
R: TCATAAGGTAATTTGGCAAGTAATTTTGAAAAAGTC
TM7830A03897405331F: AAGCCTATATTTTGCCAACTTACCTTGTGCAG
R: ATTAAGTTAAAAAGTGCCACATGTCACAAAACCAT
TM9574A04518445390F: GGCCCTAATCTTAGGCATAGTTTACCCCAAATAA
R: CTTAGGGTAGACGGATGGAGGGATGAGA
TM19508A07211389950F: TGCGAGGGATTAAGTTTAGCTTGGAAAGC
R: CCATTAGTTGACAATCTTCAAGAACCTTACGAAAA
TM27528A08630645540F: GCTCCCATAATTTTCTTTCACTTCGAGACG
R: AAGAGAAAGGTGAAAATTTTAAGTACAAAAGGTTGA
TM27748A08657681810F: GGCTTTTACTGATTTACATTTTGAACAATGTTAAAG
R: GGCTGAATGCTCCTTTACCTTATTTATGGGTT
TM33913A1041415342F: GCTCCCTTAAACCCGCAACCTTAGTCA
R: AGAAAGTTGTTTCGGCTGGTATTTTGAGGTT
TM53506D0325608650F: ATATTTTCTTTTTCTTTTTTCGATAAGATAGAGCAA
R: CCAAGGTTAGTTAACTAGAAAAACTGACCGAATCAA
TM58088D05338184510F: CTCGTATGTCACAAGACCATCAAAATTTAAATGAA
R: TGTATCCCCATTTTGAACACCCACATG
TM69807D08634259720F: TTTGTCAATTCTTACCAATTATACCTTCCTACCAAG
R: TATGTTTTGAAAATGCAACACCTATAGAAAAAGCAA
TM72841D09475733360F: CAGGAATCATTGGGGTTGGACAAGC
R: TATGCTTGACTAAGGGATGCATTATCATACATTGTT
TM75830D11137106510F: CGCGTCGTAATCGAGTTTCACCGA
R: GGTGTCCGGTCCGGTGTGCTTA
TM80004D131637930F: GTGGCCACTGAAGAGCAAGCTTAATGA
R: ATGCATGTTCAAGCTTCTTGGTAATGTCATAATC

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图3

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图3基于SNP-PCR技术验证SNP位点芯片分型结果

M: DNA marker; 1: TM-1; 2: 7235; 3: J02-508(7-50); 4: 岱字棉16; 5: 鄂棉21; 6: 鄂棉23; 7: 国欣棉9; 8: 邯郸885; 9: 黑山棉1号; 10: 冀122; 11: 军棉1号; 12: 山农棉8号; 13: 山西W1; 14: 山西W8; 15: 斯字棉2B; 16: 泗棉3号; 17: 皖棉17; 18: 新陆早32; 19: 新陆早7号; 20: 新陆中26; 21: 新陆中35; 22: 豫棉15; 23: 中棉所12; 24: 中棉所41。
Fig. 3Verification on SNPs from array genotyping by SNP-PCR analysis

M: DNA marker; 1: TM-1; 2: 7235; 3: J02-508 (7-50); 4: DPL16; 5: Emian 21; 6: Emian 23; 7: Guoxinmian 9; 8: Handan 885; 9: Heishanmian 1; 10: Ji 122; 11: Jummian 1; 12: Shannongmian 8; 13: Shanxi W1; 14: Shanxi W8; 15: Stoneville 2B; 16: Simian 3; 17: Wanmian 17; 18: Xinluzao 32; 19: Xinluzao 7; 20: Xinluzhong 26; 21: Xinluzhong 35; 22: Yumian 15; 23: Zhongmiansuo 12; 24: Zhongmiansuo 41.


3 讨论

随着分子技术的不断发展与完善, 及国家不断加强对种子的管理, 作物品种指纹图谱的构建及身份鉴定技术的提升势在必行。中国是世界最大的棉花生产、消费和纺织大国, 但并非棉花起源国, 棉花的生产和育种都是从引进品种发展起来的。陆地棉原产于中美洲, 1865年最先被引入上海种植。直到20世纪20年代, 我国才开始陆地棉育种工作[18]。加上早期的引进品种有限, 使得中国的陆地棉栽培品种遗传背景十分狭窄, 利用传统的形态鉴别方法区分不同棉花品种十分困难, 迫切需要一套高精度的指纹图谱。棉花指纹图谱的绘制研究较早, 目前已经研发出许多基于SSR标记的指纹图谱, 并在某些特定棉花品种纯度及真实性鉴定方面取得较好结果[7,8,9,10]。但是由于标记数目限制, 往往不能区分遗传背景相似的品种。同时, 诸多SSR指纹图谱适用范围不同, 难以形成统一的鉴定标准。此外, 在大批量的品种检测过程中, 低通量标记技术检测也消耗大量的人力和时间, 直接影响检测效率。因此, 自动化和信息化的品种鉴定方法是棉花种业发展的必然趋势, 而高通量测序和基因芯片技术的成熟, 大大推动了棉花品种身份精准鉴定的进程。

最近几年, 棉花基因组序列解析及应用取得显著进展。2012年, 美国Paterson实验室牵头, 联合国际多家研究单位, 开展棉花基因组多倍化及纤维发育研究, 同时释放了二倍体D基因组雷蒙德氏棉种全基因组序列信息[19]。中国在不同倍性、不同栽培棉种的基因组信息解析上取得了突出进展。中国农业科学院棉花研究所先后于2012年、2014年公布了二倍体雷蒙德氏棉(D基因组)、亚洲棉(A基因组)全基因组序列信息[20,21]; 南京农业大学和中国农业科学院棉花研究所于2015年分别公布了异源四倍体棉种陆地棉遗传标准系TM-1基因组信息[15,22]; 溢达集团和华中农业大学于2015年分别公布了海岛棉新海21及3-79的基因组信息[23,24]。以TM-1基因组为参考序列, 南京农业大学、华中农业大学和河北农业大学分别通过对不同来源的棉花材料的全基因组重测序分析, 结合多年多点的主要农艺性状表型鉴定, 发掘出一批与棉花品种改良相关的产量、纤维品质、黄萎病抗性等关联位点, 揭示了从早期美棉品种到全球最大纤维作物改良过程中的遗传基础和驯化特征, 为棉花“精准育种”提供了优异的基因资源和理论指导[3-4,25]

借鉴棉花参考基因组, 通过分析不同来源陆地棉材料的重测序信息, 我们研发了覆盖全基因组、适宜于陆地棉种内基因型鉴定的高多态SNP芯片(CottonSNP80K芯片), 并用于陆地棉栽培品种遗传多样性分析[16]。在此基础上, 本研究通过严格的条件控制最终筛选出适用于陆地棉品种检测的核心位点组合。通过陆地棉不同品种基因型区分能力评估以及位点分型真实性评估, 证明了筛选获得的核心位点组合具有高效的陆地棉品种鉴定能力。与孙正文等[14]开发的SNP指纹图谱具有97%的陆地棉品种鉴定能力相比, 我们的研究显示出多方面的优势。基于已完成的陆地棉参考基因组TM-1的序列[15], 本研究选择的SNP标记具有高检出率、单拷贝、全基因组覆盖和位点可寻址等优点。针对供试品种, 准确鉴定效率超过99%, 对遗传背景相近的品种也具有较好的鉴别能力。另外本研究广泛的基因组覆盖度使得指纹图谱的鉴定和组合具有更高的扩展性, 对已育成品种及未来育成的新品种身份鉴定均有很好的应用价值。

由于遗传背景狭窄, 陆地棉品种鉴定难度要远远高于其他多数作物。仅仅靠表型或一至两套DNA指纹图谱, 难以准确鉴定出不同来源、遗传背景不清的陆地棉栽培种。同时, 鉴定品种数目和范围的不同, 所选择的方法也有所差别。例如, 鉴定少数几个棉花品种或杂交种, 可以根据本SNP集合针对材料特点选择特异SNP位点, 通过KASP或定点测序技术鉴定品种, 或结合多态性SSR标记组合鉴定; 开展大范围的棉花品种身份鉴定, 可以通过低密度的SNP芯片绘制指纹图谱; 而对遗传背景相似的品种, 则需要绘制高密度SNP指纹图谱或开发品种特异性SNP标记, 达到深度鉴定的目的。另外, 随着育种技术的发展, 未来的新品种鉴定也需要拓宽现有技术手段。因此, 多技术多方法的组合式鉴定是陆地棉身份鉴定的核心, 同时在快速发展的育种技术背景下, 也需要进一步开发新技术新方法。

4 结论

基于CottonSNP80K芯片的陆地棉品种/材料分型结果筛选出4857个覆盖全基因组的高质量核心SNP位点组合, 该组合适于陆地棉品种指纹图谱绘制, 可实现陆地棉品种身份鉴定和品种确权。

The authors have declared that no competing interests exist.

作者已声明无竞争性利益关系。


参考文献 原文顺序
文献年度倒序
文中引用次数倒序
被引期刊影响因子

Chen Z J, Scheffler B E, Dennis E, Triplett B A, Zhang T, Guo W, Chen X, Stelly D M, Rabinowicz P D, Town C D, Arioli T, Brubaker C, Cantrell R G, Lacape J M, Ulloa M, Chee P, Gingle A R, Haigler C H, Percy R, Saha S, Wilkins T, Wright R J, Van Deynze A, Zhu Y, Yu S, Abdurakhmonov I, Katageri I, Kumar P A, Mehboob Ur R, Zafar Y, Yu J Z, Kohel R J, Wendel J F, Paterson A H . Toward sequencing cotton (Gossypium ) genomes
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本文分析了国内外棉花育种的现 状及原棉品质类型多样化、抗性育种目标不断提高、品质分布生态区域差异受到重视,利用杂种优势的范围逐步扩大、多用途类型品种深入研究五大发展趋势,从品 种改良和品种更换的角度阐明了我国棉花育种的七个重要阶段和目前存在的三个热点问题,提出了我国棉花育种的新思路及对策。
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利用RAPD技术,对我国9个棉花主栽品种基因组进行DNA片段扩增,以研究棉花不同栽培品种的指纹图谱。结果表明:18个不同的随机引物中有13个扩增出多态性DNA片段,其中1个引物(OPP09)可使每一品种具有其自身的特征谱带,展示了RAPD技术可从DNA水平上鉴别我国现有棉花推广品种的分子差异,用它鉴定品种纯度是可行的。
Guo W Z, Zhang T Z, Pan J J, He J L . Analysis of RAPD fingerprinting on main cotton cultivars in China
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利用RAPD技术,对我国9个棉花主栽品种基因组进行DNA片段扩增,以研究棉花不同栽培品种的指纹图谱。结果表明:18个不同的随机引物中有13个扩增出多态性DNA片段,其中1个引物(OPP09)可使每一品种具有其自身的特征谱带,展示了RAPD技术可从DNA水平上鉴别我国现有棉花推广品种的分子差异,用它鉴定品种纯度是可行的。

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Gossypium species ( 49) represent a vast resource of genetic diversity for the improvement of cultivated cotton. To determine intra- and inter-specific genetic relationships within a diverse collection of Gossypium taxa, we employed 16 AFLP primer combinations on three diploid species, Gossypium herbaceum L. (A1), Gossypium arboreum L. (A2) and Gossypium raimondii Ulbrich (D5), and 26 AD allotetraploid accessions ( Gossypium barbadense L. and Gossypium hirsutum L.). A total of 1180 major AFLP bands were observed; 368 of these (31%) were polymorphic. Genetic similarities among all taxa ranged from 0.21 (between the diploid species G. arboreum and G. raimondii ) up to 0.89 (within G. barbadense ). Phenetic trees based on genetic similarities (UPGMA, N-J) were consistent with known taxonomic relationships. In some cases, well-supported phylogenetic relationships, as well as evidence of genetic reticulation, could also be inferred. UPGMA trees and principal coordinate analysis based on genetic similarity matrices were used to identify genetically distinct cultivars that are potentially important sources of germplasm for cotton improvement, particularly of fiber quality traits. We show that AFLP is useful for estimating genetic relationships across a wide range of taxonomic levels, and for analyzing the evolutionary and historical development of cotton cultivars at the genomic level.

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:用 48对 SSR引物对 30个棉花栽培品种和4个高优势杂交种的亲本进行了多态性筛选 ,结果只有 2 7对引物检测到了多态性。应用SSR3442、SSR2 4 95、SSR3347和 SSR1 2 31标记 ,区分了湘杂 2号、皖杂 40、中棉所 2 8、南抗 3号的F1杂种和它们的亲本以及其它栽培品种 ;这些标记可分别用于这些杂交种的分子鉴定和种子纯度的检测
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本研究利用SSR技术建立了18个彩色棉品系的DNA指纹图谱,在110对SSR引物中筛选到10对扩增效果较好的引物,应用其中的4对构建了18个彩色棉的分子检索模式图。同时用这10对引物对18个彩色棉进行了聚类分析,对它们的亲缘关系作了初步探讨。
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保守性强、重复性好、多态性高的微卫星位点可被有效用于构建作物DNA条形码。选取目前生产 上主要推广种植、代表不同来源系统的12个棉花品种作为微卫星位点筛选材料,参考已构建的四倍体栽培棉种种间高密度遗传图谱信息,从376对覆盖全基因组 的SSR引物中,筛选出51对引物可扩增出带型清晰且多态性高的微卫星位点。这些引物在12个供试品种中共产生155个等位位点,每对引物揭示的等位基因 位点在2~7之间,平均值为3.04。参照微卫星位点的染色体定位和多态信息,在每条染色体上选择一个多态性相对高的SSR位点,其相应的26对SSR引 物被推荐为构建棉花品种DNA条形码的一套首选引物,并初步应用于12个品种的DNA条形码编制。其余25对引物作为候选引物。使用该套引物扩增出的微卫 星位点可用于大量棉花品种DNA条形码构建,为棉花品种真实性和纯度的分子鉴定奠定基础。
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In many plants, single nucleotide polymorphism (SNP) markers are increasingly becoming the marker system of choice. However, for many crop plants there are surprisingly low numbers of validated SNP markers available although they are needed in large numbers for studies regarding genetic variation, linkage mapping, population structure analysis, association genetics, map-based gene isolation, and plant breeding. This review summarizes the current status of SNP marker development technologies for major crop plants. It will also provide an outlook into the future regarding possible SNP identification approaches in crop plants on the basis of current development in model systems such as Arabidopsis which will become available with the full sequencing of more plant genomes, genome resequencing, and in conjunction with the next-generation sequencing technologies.

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【目的】利用SNP位点的单拷贝特性,结合陆地棉TM-1参考基因组序列信息,筛选基因组特异的SNP。【方法】以719份遗传背景来源广泛的陆地棉种质资源为材料,采用Illumina公司开发的Cotton SNP63K芯片,利用Genome Studio软件对芯片扫描所获得原始数据进行基因型数据质量控制,获得待测样品SNP位点的基因型数据。根据已公布的陆地棉TM-1基因组的两个版本——中国农业科学院棉花研究所版本Gossypium hirsutum(AD1)genome BGI v1.0与南京农业大学版本G.hirsutum(AD1)genome NBI v1.1为参考序列,对Cotton SNP63K芯片(63 058个SNP)各位点的侧翼序列分别进行全基因组Blast比对分析,以筛选具有单拷贝特性的特异SNP位点并用于样品指纹图谱的构建。【结果】利用Cotton SNP63K芯片对719份材料进行SNP位点基因分型,主要表现为无检出信号的SNP位点、无多态性的SNP位点、具有多态性的SNP位点,而具有多态性的SNP位点的分型结果又可分为单位点SNP(基因组特异SNP)、双位点SNP和多位点SNP。通过对两个已公布的陆地棉TM-1参考基因组序列Blast比对结果表明,中国农业科学院棉花研究所TM-1基因组版本比对获得基因组特异SNP标记为5 474个,而南京农业大学TM-1基因组版本比对获得基因组特异SNP标记仅为1 850个,两者共有的特异SNP为1 594个,进一步通过分型效果、检出率及多态性3个评价指标,筛选score值≥0.7,call frequency值≥0.95,且MAF值≥0.2的SNP位点,获得471个分型效果理想,检出率高且多态性较高的特异SNP位点。在471个SNP位点中,430个位于染色体上,41个位于scaffold片段上。考虑到标记间的连锁程度,剔除连锁标记37个,最终获得393个核心SNP位点。利用393个核心SNP构建了719份品种资源的特征DNA指纹图谱,除个别材料之间遗传背景高度相似、基因型完全一致外,97%的材料均能实现准确有效的鉴别。【结论】筛选出393个基因组特异的SNP,并利用这些核心SNP构建了719份资源材料的特征DNA指纹图谱,为SNP分子标记应用于棉花重要性状遗传改良提供了参考。
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Polyploidy often confers emergent properties, such as the higher fibre productivity and quality of tetraploid cottons than diploid cottons bred for the same environments. Here we show that an abrupt five- to sixfold ploidy increase approximately 60 illion years (Myr) ago, and allopolyploidy reuniting divergent Gossypium genomes approximately 1-2 Myr ago, conferred about 30-36-fold duplication of ancestral angiosperm (flowering plant) genes in elite cottons (Gossypium hirsutum and Gossypium barbadense), genetic complexity equalled only by Brassica among sequenced angiosperms. Nascent fibre evolution, before allopolyploidy, is elucidated by comparison of spinnable-fibred Gossypium herbaceum A and non-spinnable Gossypium longicalyx F genomes to one another and the outgroup D genome of non-spinnable Gossypium raimondii. The sequence of a G. hirsutum A(t)D(t) (in which 't' indicates tetraploid) cultivar reveals many non-reciprocal DNA exchanges between subgenomes that may have contributed to phenotypic innovation and/or other emergent properties such as ecological adaptation by polyploids. Most DNA-level novelty in G. hirsutum recombines alleles from the D-genome progenitor native to its New World habitat and the Old World A-genome progenitor in which spinnable fibre evolved. Coordinated expression changes in proximal groups of functionally distinct genes, including a nuclear mitochondrial DNA block, may account for clusters of cotton-fibre quantitative trait loci affecting diverse traits. Opportunities abound for dissecting emergent properties of other polyploids, particularly angiosperms, by comparison to diploid progenitors and outgroups.

Wang K, Wang Z, Li F, Ye W, Wang J, Song G, Yue Z, Cong L, Shang H, Zhu S, Zou C, Li Q, Yuan Y, Lu C, Wei H, Gou C, Zheng Z, Yin Y, Zhang X, Liu K, Wang B, Song C, Shi N, Kohel R J, Percy R G, Yu J Z, Zhu Y X, Wang J, Yu S . The draft genome of a diploid cotton Gossypium raimondii
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