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主要麻类作物的ITS序列分析与系统进化

本站小编 Free考研考试/2021-12-26

张力岚1,2, 王俊1, 万雪贝1,2, 徐益1,2, 张列梅1, 方平平1, 祁建民1,*, 张立武1,2,*
1福建农林大学作物科学学院 / 作物遗传育种与综合利用教育部重点实验室 / 福建省作物设计育种重点实验室

2福建农林大学海峡联合研究院基因组与生物技术中心, 福建福州 350002

* 通讯作者(Corresponding authors): 祁建民, E-mail:qijm863@163.com; 张立武, E-mail:lwzhang@fafu.edu.cn, zhang_liwu@hotmail.com 第一作者联系方式: E-mail:1204549467@qq.com
收稿日期:2016-09-30 接受日期:2017-03-02网络出版日期:2017-03-13基金:本研究由高等学校博士学科点专项科研基金新教师类资助项目(20133515120002), 中贝粮油及特色经济作物引育种及新品种示范推广项目(2015I0001), 福建农林大学****科研基金项目(2012xjj01, xjq201401), 国家现代农业产业技术体系建设专项(CARS-19-E6), 农业部东南黄红麻实验观测站项目(农科教发2011)和福建农林大学大学生创新训练计划项目(201610389149)资助

摘要比较主要麻类作物和测序植物间的ITS序列, 可明确它们间系统位置和进化关系。本研究采用PCR扩增和搜索GenBank数据库, 获得32份麻类作物和11份测序作物的核糖体内转录间隔区(internal transcribed spacers, ITS)序列, 利用MEGE软件分析ITS长度、G+C含量与同源性百分比差异。结果表明, 黄麻属、红麻属、苎麻属和亚麻属的ITS基本序列全长分别为963、939、658和686 bp; G+C含量分别为57.87%、58.03%、59.05%和53.75%。黄麻属变异区域集中在220~386 bp间, 红麻属变异区域集中在2个区段(206~347 bp, 599~713 bp), 苎麻属ITS变异区域分布在4个区段(158~163 bp、193~199 bp、288~333 bp和681~688 bp), 亚麻属ITS变异区域分布在5个区段(219~229 bp、235~240 bp、427~432 bp、468~484 bp和588~594 bp)。系统位置分析表明, 红麻属与棉花亲缘关系最近, 黄麻与棉花亲缘关系较近; 亚麻与苎麻各为一小支。系统位置分析与传统的植物分类结果较一致。研究主要麻类作物比较基因组学时, 红麻、黄麻可参考棉花, 苎麻可参考杨树或蓖麻。推测红麻属的进化时间约为33.7百万年前(million years ago, MYA), 黄麻属约为65.3MYA, 苎麻属约为67.5MYA, 亚麻属约为90.5MYA。主要麻类作物进化时间越久, 同属不同种之间ITS变异区段越多。

关键词:麻类作物; ITS; 系统位置; 进化关系
Analysis of Internal Transcribed Spacers (ITS) Sequences and Phylogenetics of Main Bast Fiber Crops
ZHANG Li-Lan1,2, WANG Jun1, WAN Xue-Bei1,2, XU Yi1,2, ZHANG Lie-Mei1, FANG Ping-Ping1, QI Jian-Min1,*, ZHANG Li-Wu1,2,*
1 College of Crop Science / Key Laboratory for Genetics, Breeding and Multiple Utilization of Crops of Ministry of Education / Fujian Key Laboratory for Crop Breeding by Design

2 Center for Genomics and Biotechnology of Haixia Institute of Science and Technology, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou 350002, China

Fund:This study was supported by the Doctoral Program of Higher Education of China (20133515120002), the Introduction Breeding and Varieties Demonstration of Featured Crops between China and Benin (2015I0001), the Distinguished Young Research Fund in Fujian Agriculture and Forestry University (xjq201401), the China Agriculture Research System (nycytx-19-E06), the Experiment Station of Jute and Kenaf in Southeast China (Nongkejiaofa 2011), and the Undergraduate Innovation Training Program in Fujian Agriculture and Forestry University.
AbstractSequences comparison of ribosomal internal transcribed spacer (ITS) could provide evidence for the systematic classification and evolutionary relationships of main bast fiber crops and other species. In this study, the ITS sequences of 32 main bast fiber crops and 11 other species with reference genome sequences were obtained from cloning or GenBank database. The whole gene length, G+C content, and the difference of homologous percentage were analysed using MEGE software. The ITS average lengths of sequences from jute ( Corchorus), kenaf ( Hibiscus), ramie ( Boehmeria nivea) and flax ( Linum usitatissimum) were 963, 939, 658, and 686 bp, respectively. And the corresponding G+C contents were 57.87%, 58.03%, 59.05%, and 53.75%, respectively. The variation of jute ( Corchorus) concentrated on a region of 220 to 386 bp, kenaf ( Hibiscus) on two regions of 206 to 347 bp and 599 to 713 bp, ramie ( Boehmeria nivea) on four regions of 158 to 163 bp, 193 to 199 bp, 288 to 333 bp, and 681to 688 bp, and flax ( Linum usitatissimum) on five regions of 219 to 229 bp, 235 to 240 bp, 427 to 432 bp, 468 to 484 bp, and 588 to 594 bp. Phylogenetic analysis showed that jute and kenaf shared a relatively close genetic relationship while the others had a far genetic relationship, which is consistent with the relationship of traditional species classification in systematic botany. In study of comparative genomics, the genome sequecne of cotton might be regarded as a reference for kenaf or jute, and the genome sequence of Populus trichocarpa or Ricinus communis might be regarded as a reference for ramie. We deduced that the evolutionary time of kenaf, jute, ramie and flax could be roughly estimated as 33.7, 65.3, 67.5, and 90.5 million years ago, respectively, showing the longer evolution time the more variation regions of ITS in different species of bast fiber crops in the same genus.

Keyword:Bast fiber crop; ITS; Systematic classification; Evolution relationship
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黄麻(Corchorusspp.)、红麻(Hibiscus cannabinus)、苎麻(Boehmeriaspp.)与亚麻(Linum usitatissimum)是大面积栽培的麻类作物(以下简称主要麻类作物), 与粮、棉、油、菜并列为第五大作物群, 其种植历史可追溯到远古新石器至尧舜时代[1, 2]。根据考古证据, 大麻纺织约有6000年历史, 黄麻纺织有5000年以上历史。
我国麻类种质资源极为丰富, 其中, 苎麻、圆果种黄麻、大麻起源于中国[1, 2, 3, 4, 5]。陶爱芬等[3]通过SRAP (Sequence-related amplified polymorphism)和ISSR (Inter-simple sequence repeat)分子标记结合形态学方法对黄麻起源和演化研究认为, 非洲是世界黄麻属野生种和长果种黄麻的起源中心, 而中国南部地区是圆果种黄麻野生种和栽培种的起源中心。Zhang等[4]采用ISSR分子标记, 研究来自28个国家和地区的21份红麻野生种、半野生种和63份红麻栽培品种的遗传多样性与亲缘关系, 提出赞比亚可能为红麻野生种的起源与演化中心。张波等[5]通过对广西、云南等10省(区)的51个山区县(市)的苎麻资源考察, 发现中国的苎麻属植物多数分布于云南、广西、贵州等南方省(区), 由西南、华南向北逐渐减少, 推测广西和云南, 即云贵高原可能是中国苎麻属植物的多样性中心, 是苎麻起源地之一。亚麻原产于近东和地中海沿岸, 公元前二世纪引入栽培。目前普遍认为, 近东和地中海沿岸等地是栽培亚麻的起源地[2]
然而, 在我国有许多植物名中带麻字。它们以草本为主, 其中供人们利用的韧皮部纤维作物主要有黄麻、红麻、苎麻、亚麻、工业大麻等, 涉及不同科、属。前人的研究主要集中在单一麻类作物起源、分布与评价等方面, 其系统位置、进化关系及与测序作物的亲缘关系尚不明确。
史全良等[6]和陈仁芳等[7]报道了桑的核糖体内转录间隔区(internal transcribed spacers, ITS)序列的多样性, 并探讨桑资源的系统位置与进化关系。这表明, ITS序列受到的选择压力较小, 在被子植物中其序列具有保守性, 适合用于低分类群的系统进化分析。本研究拟分析主要麻类作物与部分测序作物的ITS序列, 探讨其系统位置与进化关系, 旨在为其遗传进化和比较基因组学的研究提供依据。
1 材料与方法1.1 试验材料收集43份不同植物资源的ITS序列, 分别为32份麻类植物、11份测序植物(表1)。其中, 圆果种黄麻179、长果种黄麻宽叶长果与红麻福红952来自于福建农林大学麻类遗传育种与综合利用研究室, 黄麻179、宽叶长果和福红952皆为全国麻类品种认定区域试验的对照品种。其他材料的ITS序列来自公共数据库NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)。
在32份麻类植物中(图1), 包括黄麻属的圆果种黄麻(Corchorus capsularis)、长果种黄麻(Corchorus olitorius)、假长果种(Corchorus pseudo-olitorius)、三室种(Corchorus trilocularis)、三齿种(Corchorus tridens)、梭状种(Corchorus fascicularis)、Corchorus siliquosus、假黄麻(Corchorus aestuans) 8种植物; 木槿属的红麻(Hibiscus cannabinus)、黄槐(Hibiscus surattensis)、木槿(Hibiscus radiates)、红叶槿(Hibiscus acetosella)、H. sabdariffavar. sabdariffa、变种玫瑰茄(Hibiscus sabdariffavar.altissima) 6种植物; 苎麻属的苎麻(Boehmeria nivea)、青叶苎麻(Boehmeria niveavar.tenacissima)、大叶苎麻(Boehmeria longispica)、细野麻(Boehmeria gracilis)、悬铃叶苎麻(Boehmeria tricuspis)、赤麻(Boehmeria silvestrii)、长叶苎麻(Boehmeria penduliflora)、束序苎麻(Boehmeria siamensis)、帚序苎麻(Boehmeria zollingerianavar. blinii)、密球苎麻(Boehmeria densiglomerata)、滇黔苎麻(Boehmeria pseudotricuspis)、阴地苎麻(Boehmeria umbrosa) 12种植物; 亚麻属的亚麻(Linum usitatissimum)(该植物同时属于测序植物)、野亚麻(Linum stelleroides)、宿根亚麻(Linum perenne)、短柱亚麻(Linum pallescens) 4种植物; 还包括其他麻类植物大麻(Cannabis sativa)(该植物同时属于测序植物)与蕉麻(Musa textilisNee)。
图1
Fig. 1
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图1 世界上主要的麻类作物田间图(部分图片来自网站)Fig. 1 Field pictures of main bast fiber crops in the world (Some pictures from website)

在11份测序植物中, 有参考基因组序列的植物有拟南芥(Arabidopsis thaliana)[8]、陆地棉(Gossypium hirsutum)[9]、雷蒙德氏棉(Gossypium raimondii)[10]、杨树(Populus trichocarpa)[11]、可可(Theobroma cacao)[12]、大豆(Glycine max)[13]、蒺藜苜蓿(Medicago truncatula)[14]、麻疯树(Jatropha curcas)[15]、蓖麻(Ricinus communis)[16]、葡萄(Vitis vinifera)[17]和水稻(Oryza sativa)[18]
1.2 基因组DNA提取采用改良的CTAB法[19]提取红麻与黄麻的DNA。用Nanodrop紫外分光光度计检测DNA的纯度与浓度, 将DNA的浓度稀释至50 ng μ L-1, 保存于-20℃, 用于PCR扩增。
1.3 PCR扩增与测序ITS序列扩增左右引物分别为18S For: 5° -TGG GGATAGATCATTGCAATTGTTGGTC-3° 和28S Rev: 5° -TCCYGGTTCGCTCGCCGTTACTA-3° (Y = A/T), 由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。PCR 体系15 µ L, 包括DNA模板3 µ L、10 mmol L-1上下游引物各1.0 µ L、10× PCR缓冲液1.5 µ L、25 mmol L-1 MgCl2 1.2 µ L、10 mmol L-1 dNTPs Mix 0.3 µ L、5 U µ L-1Taq酶(MBI Ferments) 0.2 µ L、ddH2O 6.8 µ L, 再加10 µ L矿物油覆盖。扩增程序为95℃ 3 min; 95℃ 30 s, 52℃ 30 s, 72℃ 45 s, 共35个循环; 72℃延伸7 min, 4℃保温。扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测, 用DNA纯化回收试剂盒(TIANGEN)回收后送铂尚生物技术有限公司测序, 获得DNA序列。
1.4 数据收集与处理利用DNAStar软件分析得出ITS序列的长度和G+C含量。运用ClustalW工具[20]对ITS序列进行多序列比对, 分析序列的同源性, 选择差异位点距离(p-distance)比较两两序列间的进化距离。采用邻位连接法(Neighbor-Joining method)构建系统进化树, 选择检验方法为“ Bootstrap method” , 重复抽样次数为1000, 应用软件MEGE 5.2[21](molecular evolution genetics analysis)分子进化遗传分析软件分析各植物的系统位置和进化关系。

2 结果与分析2.1 ITS序列长度及其变异对圆果种黄麻黄麻179、长果种黄麻宽叶长果与红麻福红952进行扩增(图2), 获得ITS序列分别为957、958与941 bp (表1)。根据GenBank公布的ITS序列信息, 下载获得其他40份植物的ITS序列, 包含亚麻(Linum usitatissimum)、苎麻(Boehmeria nivea)、大麻(Cannabis sativa)与蕉麻(Musa textilisNee)等29份麻类作物(表1)。
图2
Fig. 2
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图2 ITS序列扩增电泳图Fig. 2 Electrophoregram of ITS
1: 圆果种黄麻黄麻179; 2: 长果种黄麻宽叶长果; 3: 红麻福红952; M: DL2000。
1: Corchorus capsularis Huangma 179; 2: Corchorus olitorius Kuanyechangguo; 3: Hibiscus cannabinus Fuhong 952; M: DL2000 marker.

表1
Table 1
表1(Table 1)
表1 主要麻类作物与相关测序植物的ITS长度及GC含量变异 Table 1 ITS sequence length and GC contents (bp, %) in main bast fiber crops and related species with reference genome sequences
编号
No.
材料名称
Material name
GenBank IDITS1
GC
5.8S
GC
ITS2
GC
ITS
GC
1圆果种黄麻 Corchorus capsularis275/60.36162/54.94230/60.87957/57.78
2长果种黄麻Corchorus olitorius279/63.08162/54.94233/62.66958/59.19
3假长果种 Corchorus pseudo-olitoriusFJ527602.1275/60.00163/54.60232/58.19964/57.05
4三室种Corchorus trilocularisFJ527601.1275/60.00162/54.94235/62.55964/58.09
5假黄麻Corchorus aestuansFJ527605.1278/60.79163/55.21223/61.43958/58.14
6梭状种Corchorus fascicularisFJ527600.1277/59.93162/54.94237/59.49970/57.32
7Corchorus siliquosusFJ527604.1281/60.50162/54.94238/60.92975/57.85
8三齿种Corchorus tridensFJ527603.1275/59.27162/54.94231/61.04958/57.52
9陆地棉Gossypium hirsutumHQ658359.1705/60.28
10雷蒙德氏棉Gossypium raimondiiU12718.1293/60.41164/54.88210/61.43682/59.53
11黄槐Hibiscus surattensisFJ527609.1252/61.11162/54.32227/64.76932/58.91
12木槿 Hibiscus radiatusFJ527606.1252/60.71163/53.99227/64.32940/58.30
13红叶槿Hibiscus acetosellaFJ621494.1257/60.31163/54.60227/62.56939/58.36
14红麻Hibiscus cannabinus258/58.91163/54.60230/63.04941/58.13
15H. sabdariffavar.sabdariffaFJ527608.1252/57.14162/54.32227/62.56939/57.40
16变种玫瑰茄Hibiscus sabdariffavar. altissimaJQ609255.1253/58.10163/52.76197/61.93942/57.11
17拟南芥Arabidopsis thalianaDQ528813.1271/56.46156/54.49167/57.49594/56.23
18麻疯树Jatropha curcasEU700458.1278/65.83164/56.10205/68.78647/64.30
19蓖麻Ricinus communisAY918198.1252/62.30164/54.27214/58.88742/57.82
20杨树Populus trichocarpaJQ898636.1654/65.14
21苎麻Boehmeria niveaEU747115.1215/52.56163/55.83233/60.94704/55.97
22青叶苎麻Boehmeria niveavar. tenacissimaDQ813303.1217/53161/55.9233/60.94801/56.05
23大叶苎麻Boehmeria longispicaKF137809.1165/60.61157/50.32220/66.82603/60.36
24细野麻Boehmeria gracilisKF835859.1628/59.55
25悬铃叶苎麻Boehmeria tricuspisKF137821.1166/60.24157/50.32220/66.36636/59.59
26赤麻 Boehmeria silvestriiFJ750380.1165/60.61176/52.84230/66.09571/60.42
27长叶苎麻Boehmeria pendulifloraKF137816.1163/61.35157/50.32223/68.16682/59.68
28束序苎麻Boehmeria siamensisFJ980384.1656/58.84
29帚序苎麻Boehmeria zollingerianavar. bliniiKF137824.1162/61.73157/50.32224/67.41683/59.44
30密球苎麻Boehmeria densiglomerataKF835868.1623/60.19
31滇黔苎麻Boehmeria pseudotricuspisKF835880.1623/59.71
32阴地苎麻Boehmeria umbrosaKF137822.1162/61.11157/50.32310/64.19681/58.74
33大豆Glycine maxEF517917.1227/59.91164/54.27204/58.82619/57.67
34蒺藜苜蓿Medicago truncatulaDQ311983.1237/49.37164/50.61215/47.44732/48.97
35可可Theobroma cacaoJQ228377.1426/60.09138/57.97201/56.22765/56.49
36大麻 Cannabis sativaL.KM586391.1215/58.14163/55.21209/59.33606/57.59
37野亚麻Linum stelleroidesFJ169516.1622/54.02
38亚麻Linum usitatissimumEU307117.1213/56.81169/51.48205/60.00687/53.99
39宿根亚麻Linum perenneFJ169524.1632/54.11
40短柱亚麻 Linum pallescensFJ169521.1628/52.87
41蕉麻Musa textilisNeeJF977097.1599/65.11
42葡萄 Vitis viniferaKF544886.1747/61.45
43水稻 Oryza sativaKF761391.1566/47.00

表1 主要麻类作物与相关测序植物的ITS长度及GC含量变异 Table 1 ITS sequence length and GC contents (bp, %) in main bast fiber crops and related species with reference genome sequences

通过比对, 确定本研究涉及材料ITS序列的18S rRNA基因3′ 端、5.8S rDNA基因、28S rRNA基因5′ 端的碱基序列(表1), 发现不同植物之间ITS序列有不同程度变异。
在主要麻类作物中, 黄麻属ITS基本序列全长963 bp, G+C含量57.87% (各序列长度为8份黄麻属植物ITS序列的平均值)。其中, ITS1序列长度为277 bp, G+C含量为60.49%; ITS2序列长度为232 bp, G+C含量60.89%; 5.8S序列长度为162 bp, G+C含量54.86%。黄麻属ITS序列的同源性变化在93.12%至97.64%之间。序列比对结果表明, 变异区域集中在1个区段, 即220~386 bp之间。
红麻属ITS基本序列全长939 bp, G+C含量58.03% (各序列长度为6份红麻属植物ITS序列的平均值)。其中, ITS1序列长度为254 bp, G+C含量59.39%; ITS2序列长度为223 bp, G+C含量63.20%; 5.8S序列长度为 163 bp, G+C含量54.10%。ITS序列的同源性变化在91.23%~99.16%之间。序列比对结果表明, 变异区域集中在2个区段, 即206~347 bp和599~713 bp。
苎麻属ITS基本序列全长658 bp, G+C含量59.05% (各序列长度为12份苎麻属植物ITS序列的平均值)。其中, ITS1序列长度为177 bp, G+C含量58.90%; ITS2序列长度为237 bp, G+C含量65.11%; 5.8S序列长度为160.63%, G+C含量52.02%。ITS序列的同源性变化在92.19%至100.00%之间。序列比对结果表明, 变异区域分布在4个区段, 即158~ 163 bp、193~199 bp、288~333 bp和681~688 bp。
亚麻属ITS基本序列全长686 bp, G+C含量53.75%(各序列长度为4份亚麻属植物ITS序列的平均值)。其中, ITS1序列长度为213 bp, G+C含量56.81%; ITS2序列长度为205 bp, G+C含量53.99%; 5.8S序列长度为169 bp, G+C含量51.48%。ITS序列的同源性变化在86.63%~97.75%之间。序列比对结果表明, 变异区域分布广泛, 分别在5个区段, 即219~229 bp、235~240 bp、427~432 bp、468~484 bp和588~594 bp。
2.2 主要麻类作物的系统位置及外类群的确定比较43份植物ITS序列, 得出其同源性(percent identity)的平均值为96%, 其中葡萄与水稻同源性最低, 仅为83.54% (表2)。表明供试材料的ITS序列都具有一定的保守性。应用软件MEGE 5.2确定本研究各材料的系统位置(图2)。将水稻(Oryza sativa)作为外类群被单独分出, 其余植物则被分为8个分支。
表2
Table 2
表2(Table 2)
表2 43份植物ITS序列同源性比较 Table 2 Comparison of similar identity of ITS sequences in 43 plants
表2 43份植物ITS序列同源性比较 Table 2 Comparison of similar identity of ITS sequences in 43 plants

依次分析发现, 第1支仅包括葡萄(Vitis vinifera), 第2支仅包括蕉麻(Musa textilisNee), 表明蕉麻在以麻字命名的植物中可单独分出。
第3支包括可可(Theobroma cacao)、蒺藜苜蓿(Medicago truncatula)、大豆(Glycine max)、大麻(Cannabis sativa)和亚麻属4个种。表明在以麻字命名的植物中, 大麻与亚麻属植物的亲缘关系较近。
第4支包括苎麻属的12个不同种, 其靴带支持率为100% (即可靠性为100%)。进一步细分, 这12个不同种可划分4个小分支。其中, 苎麻(Boehmeria nivea)与青叶苎麻(Boehmeria nivea var. tenacissima)之间的靴带支持率为100%, 这二者的形态虽有不同, 但用途却基本相似, 在苎麻属分类中均为苎麻组。大叶苎麻(Boehmeria longispica)、细野麻(Boehmeria gracilis)、悬铃叶苎麻(Boehmeria tricuspis)与赤麻(Boehmeria silvestrii)间的靴带支持率也达到了100%, 均为大叶苎麻组, 皆具有无融合生殖能力。这种能力可以保持物种的遗传特性, 通过基因导入或杂交等方式, 转育到栽培种中, 在杂交育种与杂种优势上有很大的发展空间。
第5支包括麻疯树(Jatropha curcas)、蓖麻(Ricinus communis)和杨树(Populus trichocarpa), 靴带支持率为95%。说明在以麻字命名的植物中, 蓖麻、麻疯树与杨树的亲缘关系较近。联合第4、第5支来看, 在测序植物中, 蓖麻或杨树与苎麻属的亲缘关系较近。
第6支仅包括拟南芥(Arabidopsis thaliana)。第7支包括陆地棉(Gossypium hirsutum)、雷蒙德氏棉(Gossypium raimondii)和红麻属6个不同种。表明对红麻进行比较基因组学研究时, 可选择雷蒙德氏棉或陆地棉作为参考基因组。
第8支包括黄麻属8个不同种, 其靴带支持率为100%。其中, 假黄麻C. aestuans可能是黄麻属栽培种圆果种黄麻、长果种黄麻、假长果种(Corchorus pseudo-olitorius)以及三室种(Corchorus trilocularis)的共同祖先。联合第7、第8支来看, 在测序植物中, 棉花与黄麻属的亲缘关系较近。表明黄麻也可以选择雷蒙德氏棉或陆地棉作为参考基因组。
比较主要麻类作物在整个进化系统中位置, 推测黄麻与红麻的亲缘关系较近, 为一大分支。亚麻属与大麻亲缘关系较近, 为一大分支。而苎麻属单独分出。
2.3 主要麻类作物进化时间的估算从表3可以看出, 不同植物的进化距离平均值为0.171, 变异系数为42.45%。其中, 蒺藜苜蓿与水稻之间的进化距离最高, 为0.480。以雷蒙德氏棉为参考, 发现雷蒙德氏棉与红麻的进化距离为0.020, 与长果种黄麻为0.193, 与圆果种黄麻为0.198, 与蓖麻为0.256, 与大麻为0.233, 与亚麻为0.273, 与苎麻为0.241, 与蕉麻为0.279。这进一步验证黄麻、红麻与亚麻、苎麻的亲缘关系较远。
根据测序植物的进化时间[10], 推测主要麻类植物的进化时间。红麻属约为33.7百万年前(million years ago, MYA), 黄麻属约为65.3 MYA, 苎麻约为67.5 MYA, 亚麻约为90.5 MYA。结合主要麻类作物ITS变异区域和进化时间可以看出, 植物进化时间越久, 同属不同种的ITS序列变异区段越多。
图3
Fig. 3
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图3 基于ITS序列构建系统进化树(植物名称的编号见表1)Fig. 3 Systematic classification of bast fiber crops based on sequences of ITS (the number for plant name corresponds with that given in Table 1)


3 讨论对于用ITS序列分析不同植物之间的系统位置与进化关系, 已有一些报道[6, 7], 但对于主要麻类作物的系统位置剖析却未见报道。目前, 大面积栽培的韧皮部纤维麻类作物有红麻、苎麻、黄麻、亚麻与工业大麻, 各属不同科、属。红麻(Hibiscus cannabinus L.)是锦葵科(Malvaceae)木槿属(Hibiscus L.)一年生韧皮部纤维作物, 亦称洋麻、槿麻; 属短日照作物, 能适应冷热干湿等各种气候条件[22, 23]。苎麻[Boehmena nivea (L.) Gaud.]为荨麻科(Uricaeeae)苎麻属(Boehmena)多年生宿根性草本植物, 又名银苎、苎根、山麻、天青地、白草等, 是一种重要的韧皮纤维作物[24, 25]。黄麻为椴树科(Tiliaceae)黄麻属(Corchorus)一年生的韧皮纤维作物, 黄麻属有约40个种, 具有栽培价值的有圆果种(C. capsularis)和长果种(C. olitorius)[26, 27]。亚麻(Linum usitatissimum L.)为金虎尾目亚麻科(Linaceae)亚麻属(Linum)一年生草本植物, 是古老的纺织纤维作物和油料作物, 按其经济性状和用途可分为油用、纤维用和油纤兼用三种类型[28]
按恩格勒被子植物分类系统观点, 主要麻类作物属于被子植物, 是单元起源的。苎麻为荨麻目, 属于同被花类原始花被亚纲; 亚麻(Linum usitatissimum L.)属金虎尾目; 红麻与黄麻为锦葵目, 属于异被花类。哈钦松被子植物分类系统观点认为, 毛莨目为被子植物的原始类群, 单子叶植物起源于毛莨目。按双子叶植物进化时间来划分, 锦葵目晚于金虎尾目与荨麻目。这与本研究推测主要麻类作物的进化时间是一致的, 即红麻和黄麻的进化时间要晚于亚麻与苎麻。
本研究对43份植物ITS序列分析发现, 虽各材料ITS序列有不同程度的变异, 但主要麻类作物ITS序列具有一定的保守性。在主要麻类作物中, 黄麻与棉花亲缘关系较近, 红麻与棉花亲缘关系更近。而雷蒙德氏棉具有参考基因组序列, 基因组大小为775.2 Mb[10], 这将为红麻、黄麻的遗传进化和比较基因组学研究提供便利。Zhang等[29]对红麻旺盛生长期的根、茎、叶、茎皮和茎骨进行转录组测序, 发现91.01%雷蒙德氏棉基因与红麻存在共线性。在黄麻比较基因组学研究中, Biswas等[30]以陆地棉为参考基因组, 进行黄麻染色体定位, 发现黄麻7条染色体分别与陆地棉的第1至第8染色体存在一定共线区段。Kundu等[31]以雷蒙德氏棉为参考基因组, 发现与黄麻有29.2%的共线区段。基于系统进化树, 我们认为假黄麻应是长果种黄麻与圆果种黄麻的共同祖先, 这与Kundu等[32]基于形态学和微卫星标记的黄麻分类结果较一致。而苎麻属划分为另一分支, 从分支图来看, 与测序植物杨树、蓖麻和麻疯树的亲缘关系较近。Chen等[33]对苎麻茎皮进行转录组测序, 发现苎麻与葡萄、蓖麻和大豆的亲缘关系较近。而Liu等[34]也对苎麻茎皮进行转录组测序, 发现苎麻与葡萄、蓖麻与杨树亲缘关系较近。结合本研究的结果, 在比较基因组学研究中, 苎麻可参考蓖麻或杨树。蓖麻和杨树均已测序, 其参考基因组大小分别为350 Mb[16]和480 Mb[35]。在苎麻属不同种的系统进化研究中, 我们认为苎麻组与大叶苎麻组亲缘关系更加紧密。这与前人研究发现苎麻组与大叶苎麻组亲缘关系近[36, 37, 38, 39]的研究结果是一致的。最近, Yu等[39]通过ITS等序列把31份苎麻属植物划分为四组, 该文IV、II、I三组与本研究中苎麻组、大叶苎麻组与其余苎麻组相吻合。在主要麻类作物中, 亚麻属植物与大麻为一小支, 两者皆有参考基因组序列[40, 41], 大麻[40]与亚麻[41]参考基因组大小分别为534 Mb和373 Mb, 这些将有助于韧皮部纤维作物的遗传基础研究。
4 结论主要麻类作物的ITS序列具有一定保守性, 可用于不同麻类植物的系统进化分析。主要韧皮部纤维植物中, 黄麻属、红麻属的亲缘关系近, 而黄麻属、红麻属与亚麻属、苎麻属的亲缘关系较远。在比较基因组学研究, 红麻、黄麻可参考棉花, 苎麻可选择杨树或蓖麻。推测红麻属、黄麻属、苎麻属、亚麻属的进化时间分别为33.7、65.3、67.5、90.5百万年前(million years ago, MYA)。
The authors have declared that no competing interests exist.

作者已声明无竞争性利益关系。


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[1]熊和平. 麻类作物育种学. 北京: 中国农业科学技术出版社, 2008
Xiong H P. Fiber Crops Breeding. Beijing: China Agricultural Scientific and Technical Publishers, 2008 (in Chinese with English abstract)[本文引用:2]
[2]粟建光. 我国麻类资源的多样性及其保护利用对策. 植物遗传资源科学, 2002, 3(3): 41-46
Su J G. Strategies for protection and sustainable utilization of genetic diversity of bast fiber crops in China. J Plant Genet Resour, 2002, 3(3): 41-46 (in Chinese with English abstract)[本文引用:3]
[3]陶爱芬, 祁建民, 李木兰, 方平平, 林荔辉, 徐建堂. SRAP结合ISSR方法分析黄麻属的起源与演化. 中国农业科学, 2012, 45: 16-25
Tao A F, Qi J M, Li M L, Fang P P, Lin L H, Xu J T. SRAP combined with ISSR method to analyze the origin and evolution of Corchorus. Sci Agric Sin, 2012, 45: 16-25 (in Chinese with English abstract)[本文引用:2]
[4]Zhang L W, Li A Q, Wang X F, Xu J T, Zhang G Q, Su J G, Qi J M, Guan C Y. Genetic diversity of kenaf( Hibiscus cannabinus) evaluated by inter-simple sequence repeat (ISSR). Biochem Genet, 51: 800-810[本文引用:2]
[5]张波, 郑长清, 赵立宁, 臧巩固. 中国苎麻近缘野生种的种类、分布与评价. 作物品种资源, 1998, (4): 1-2
Zhang B, Zheng C Q, Zhao L N, Zang G G. Species, distribution and evaluation of wild species of ramie in China. China Seed Ind, 1998, (4): 1-2 (in Chinese with English abstract)[本文引用:2]
[6]史全良, 赵卫国. 桑树ITS序列测定及特点的初步分析. 蚕业科学, 2001, 27: 140-141
Shi Q L, Zhao W G. Preliminary study on ITS sequence in gand characteristics of mulberry. Sci Seric, 2001, 27: 140-142 (in Chinese with English abstract)[本文引用:2]
[7]陈仁芳, 余茂德, 刘秀群, 陈龙清. 桑种质资源ITS序列与系统进化分析. 中国农业科学, 2010, 43: 1771-1781
Chen R F, Yu M D, Liu X Q, Chen L Q. Analysis on the internal transcribed spacers (ITS) sequences and phylogenetics of mulberry ( Morus). Sci Agric Sin, 2010, 43: 1771-1781 (in Chinese with English abstract)[本文引用:2]
[8]Wu C C, Wang S J, Zhang H B. Interactions among genomic structure, function, and evolution revealed by comprehensive analysis of the Arabidopsis thaliana genome. Genomics, 2006, 88: 394-406[本文引用:1]
[9]Li F G, Fan G Y, Lu C R, Xiao G H, Zou C S, Kohel Russell J, Ma Z Y, Shang H H, Ma X F, Wu J Y, Liang X M, Huang G, Percy R G, Liu K, Yang W H, Chen W B, Du X M, Shi C C, Yuan Y L, Ye W W, Liu X, Zhang X Y, Liu W Q, Wei H L, Wei S J, Huang G D, Zhang X L, Zhu S J, Zhang H, Sun F M, Wang X F, Liang J, Wang J H, He Q, Huang L H, Wang J, Cui J J, Song G L, Wang K B, Xu X, Yu J Z, Zhu Y X, Yu S X. Genome sequence of cultivated Upland cotton ( Gossypium hirsutum TM-1) provides insights into genome evolution. Nat Biotechnol, 2015, 33: 524-530[本文引用:1]
[10]Wang K B, Wang Z W, Li F G, Ye W W, Wang J Y, Song G L, Yue Z, Cong L, Shang H H, Zhu S L, Zou C S, Li Q, Yuan Y L, Lu C R, Wei H L, Gou C Y, Zheng Z Q, Yin Y, Zhang X Y, Liu K, Wang B, Song C, Shi N, Kohel R J, Percy R G, Yu J Z, Zhu Y X, Wang J, Yu S X. The draft genome of a diploid cotton Gossypium raimondii. Nat Genet, 2012, 44: 1098-1103[本文引用:3]
[11]Wullschleger S D, Weston D J, Difazio S P, Tuskan G A. Revisiting the sequencing of the first tree genome: Populus trichocarpa. Tree Physiol, 2012, 33: 357-364[本文引用:1]
[12]Couch J A, Zintel H A, Fritz P J. The genome of the tropical tree Theobroma cacao L. Mol General Genet, 1993, 237: 123-128[本文引用:1]
[13]Patil G, Valliyodan B, Deshmukh R, Prince S, Nicand er B, Zhao M Z, Sonah H, Song L, Lin L, Chaudhary J, Liu Y, Joshi T, Xu D, Nguyen H T. Soybean ( Glycine max) SWEET gene family: insights through comparative genomics, transcriptome profiling and whole genome re-sequence analysis. BMC Genom, 2015, 16: 520[本文引用:1]
[14]Krishnakumar V, Kim M, Rosen B D, Karamycheva S, Bidwell S L, Tang H, Town C D. MTGD: The Medicago truncatula genome database. Plant Cell Physiol, 2015, 56: e1[本文引用:1]
[15]Sato S, Hirakawa H, Isobe S, Fukai E, Watanabe A, Kato M, Kawashima K, Minami C, Muraki A, Nakazaki N, Takahashi C, Nakayama S, Kishida Y, Kohara M, Yamada M, Tsuruoka H, Sasamoto Si, Tabata S, Aizu T, Toyoda A, Shin-i T, Minakuchi Y, Kohara Y, Fujiyama A, Tsuchimoto S, Kajiyama S, Makigano E, Ohmido N, Shibagaki N, Cartagena J A, Wada N, Kohinata T. Sequence analysis of the genome of an oil-bearing tree ( Jatropha curcas L. ). DNA Res, 2010, 18: 65-76[本文引用:1]
[16]Chan A P, Crabtree J, Zhao Q, Lorenzi H, Orvis J, Puiu D, Melake-Berhan A, Jones K M, Redman J, Chen G, Cahoon E B, Gedil M, Stanke M, Haas B J, Wortman J R, Fraser-Liggett C M, Ravel J, Rabinowicz P D. Draft genome sequence of the oilseed species Ricinus communis. Nat Biotechnol, 2010, 28: 951-966[本文引用:2]
[17]Cunff L L, Fournier-Level A, Laucou V, Vezzulli S, Lacombe T, Adam-Blondon A F, Boursiquot J M, This P. Construction of nested genetic core collections to optimize the exploitation of natural diversity in Vitis vinifera L. subsp. sativa. BMC Plant Biol, 2008, 8: 31[本文引用:1]
[18]Yu J, Hu S N, Wang J, Wong Gane Ka-Shu, Li S G, Liu B, Deng Y J, Dai L, Zhou Y, Zhang X, Cao M, Liu J, Sun J, Tang J, Chen Y, Huang X, Lin W, Ye C, Tong W, Cong L, Geng J, Han Y, Li L, Li W, Hu G, Huang X, Li W, Li J, Liu Z, Li L, Liu J, Qi Q, Liu J, Li L, Li T, Wang X, Lu H, Wu T, Zhu M, Ni P, Han H, Dong W, Ren X, Feng X, Cui P, Li X, Wang H, Xu X, Zhai W, Xu Z, Zhang J, He S, Zhang J, Xu J, Zhang K, Zheng X, Dong J, Zeng W, Tao L, Ye J, Tan J, Ren X, Chen X, He J, Liu D, Tian W, Tian C, Xia H, Bao Q, Li G, Gao H, Cao T, Wang J, Zhao W, Li P, Chen W, Wang X, Zhang Y, Hu J, Wang J, Liu S, Yang J, Zhang G, Xiong Y, Li Z, Mao L, Zhou C, Zhu Z, Chen R, Hao B, Zheng W, Chen S, Guo W, Li G, Liu S, Tao M, Wang J, Zhu L, Yuan L, Yang H. A draft sequence of the rice genome ( Oryza sativa L. ssp. indica). Science, 2002, 296: 79-92[本文引用:1]
[19]张立武, 袁民航, 何雄威, 刘星, 方平平, 林荔辉, 陶爱芬, 徐建堂, 祁建民. GenBank数据库中黄麻EST-SSR标记的开发及其通用性评价. 作物学报, 2014, 40: 1213-1219
Zhang L W, Yuan M H, He X W, Liu X, Fang P P, Lin L H, Tao A F, Xu J T, Qi J M. Development and universality evaluation of EST-SSR markers from GenBank in jute. Acta Agron Sin, 2014, 40: 1213-1219 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[20]Thompson J D, Gibson T J, Higgins D G. Multiple sequence alignment using ClustalW and ClustalX. Current Protocols in Bioinformatics, 2002, Chapter 2: 2. 3. 1-2. 3. 22[本文引用:1]
[21]Tamura K, Dudley J, Nei M, Kumar S. MEGA4: molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4. 0. Mol Biol Evol, 2007, 24: 1596-1599[本文引用:1]
[22]Chen P, Ran S M, Li R, Huang Z P, Qian J H, Yu M L, Zhou R Y. Transcriptome de novo assembly and differentially expressed genes related to cytoplasmic male sterility in kenaf ( Hibiscus cannabinus L. ). Mol Breed, 2014, 34: 1879-1891[本文引用:1]
[23]Zhang L W, Wan X B, Xu J T, Lin L H, Qi J M. De novo assembly of kenaf ( Hibiscus cannabinus) transcriptome using Illumina sequencing for gene discovery and marker identification. Mol Breed, 2015, 35: 192-202[本文引用:1]
[24]Liu T, Tang S W, Zhu S Y, Tang Q M, Zheng X. Transcriptome comparison reveals the patterns of selection in domesticated and wild ramie ( Boehmeria nivea L. Gaud). Plant Mol Biol, 2014, 86: 85-92[本文引用:1]
[25]Chen J, Yu R, Liu L, Wang B, Peng D. Large-scale developing of simple sequence repeat markers and probing its correlation with ramie ( Boehmeria nivea L. ) fiber quality. Mol Genet Genom, 2016, 291: 1-9[本文引用:1]
[26]祁建民, 李维明, 吴为人. 黄麻的起源与进化研究. 作物学报, 1997, 23: 677-682
Qi J M, Li W M, Wu W R. Study on the origin and evolution of jute. Acta Agron Sin, 1997, 23: 677-682 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[27]Zhang L W, Ming R, Zhang J, Tao A F, Fang P P, Qi J M. De novo transcriptome sequence and identification of major bast-related genes involved in cellulose biosynthesis in jute ( Corchorus capsularis L. ). BMC Genom, 2015, 16: 1062-1074[本文引用:1]
[28]吴建忠, 赵东升, 黄文功, 刘岩, 于莹, 姜卫东, 赵茜, 康庆华, 程莉莉, 袁红梅, 吴广文, 关凤芝. 12个亚麻品种亲缘关系的SRAP分析. 中国麻业科学, 2012, (4): 153-156
Wu J Z, Zhao D S, Huang W G, Liu Y, Yu Y, Jiang W D, Zhao Q, Kang Q H, Cheng L L, Yuan H M, Wu G W, Guan F Z. Genetic relationship analysis of 12 flax cultivars with SRAP marker. Plant Fiber Sci China, 2012, (4): 153-156 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[29]Zhang L, Wan X, Xu J, Lin L, Qi J. De novo assembly of kenaf ( Hibiscus cannabinus) transcriptome using Illumina sequencing for gene discovery and marker identification. Mol Breed, 2015, 35: 192-202[本文引用:1]
[30]Biswas C, Dey P, Karmakar P G, Satpathy S. Discovery of large-scale SNP markers and construction of linkage map in a RIL population of jute ( Corchorus capsularis). Mol Breed, 2015, 35: 1-10[本文引用:1]
[31]Kundu A, Chakraborty A, Mand al N A, Das D, Karmakar P G, Singh N K, Sarkar D. A restriction-site-associated DNA (RAD) linkage map, comparative genomics and identification of QTL for histological fibre content coincident with those for retted bast fibre yield and its major components in jute ( Corchorus olitorius L. , Malvaceae s. l. ). Mol Breed, 2015, 35: 1-17[本文引用:1]
[32]Kundu A, Topdar N, Sarkar D, Sinha M K, Ghosh A, Banerjee S, Das M, Balyan H S, Mahapatra B S, Gupta P K. Origins of white ( Corchorus capsularis L. ) and dark( C. olitorius L. ) jute: a reevaluation based on nuclear and chloroplast microsatellites. J Plant Biochem Biotechnol, 2013, 22: 372-381[本文引用:1]
[33]Chen J, Pei Z, Dai L, Wang B, Liu L, An X, Peng D. Transcriptome profiling using pyrosequencing shows genes associated with bast fiber development in ramie ( Boehmeria nivea L. ). BMC Genom, 2014, 15: 919[本文引用:1]
[34]Liu T, Zhu S, Tang Q, Ping C, Yu Y, Tang S. De novo assembly and characterization of transcriptome using Illumina paired-end sequencing and identification of CesA gene in ramie ( Boehmeria nivea L. Gaud). BMC Genom, 2013, 14: 125[本文引用:1]
[35]Tuskan G A, Difazio S, Jansson S, Bohlmann J, Grigoriev I, Hellsten U, Putnam N, Ralph S, Rombauts S, Salamov A, Schein J, Sterck L, Aerts A, Bhalerao R R, Bhalerao R P, Blaudez D, Boerjan W, Brun A, Brunner A, Busov V, Campbell M, Carlson J, Chalot M, Chapman J, Chen G L, Cooper D, Coutinho P M, Couturier J, Covert S, Cronk Q, Cunningham R, Davis J, Degroeve S, Déjardin A, Depamphilis C, Detter J, Dirks B, Dubchak I, Duplessis S, Ehlting J, Ellis B, Gendler K, Goodstein D, Gribskov M, Grimwood J, Groover A. The genome of black cottonwood, Populus trichocarpa(Torr. & Gray). Science, 2006, 313: 1596-1604[本文引用:1]
[36]陈晓蓉, 潘其辉, 龚秋林, 王富强, 雷雪芳, 谭陈菊, 龚礼萍, 张萍, 刘齐元. 基于苎麻属野生近缘种形态变异类型的系统关系研究. 中国麻业科学, 2014, (5): 217-223
Chen X R, Pan Q H, Gong Q L, Wang F Q, Lei X F, Tan C J, Gong L P, Zhang P, Liu Q Y. Systematic relationship on morphological variation types of wild relative species of Boehmeria. Plant Fiber Sci China, 2014, (5): 217-223 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[37]张波, 赵立宁, 臧巩固, 郑长清, 熊和平. 中国苎麻属植物野生种考察报告. 中国麻作, 1995, (4): 1-6
Zhang B, Zhao L N, Zang G G, Zheng C Q, Xiong H P. Investigation report on wild species of ramie in China. China’s Fiber Crops, 1995, (4): 1-6 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[38]潘其辉, 高海军, 龚秋林, 陈勇玲, 陈晓蓉, 欧阳爱平, 刘上信, 刘灵燕. 中国苎麻属野生种资源多样性保护现状与对策. 中国麻业科学, 2012, (6): 153-156
Pan Q H, Gao H J, Gong Q L, Chen Y L, Chen X R, Ou-Yang A P, Liu S X, Liu L Y. Conservation status and Countermeasures of wild species resources of ramie in China. Plant Fiber Sci China, 2012, (6): 153-156 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[39]Yu R, Baloch S U, Liu L, Pan Q, Gong S, Zhong X, Wang B, Peng D. The phylogenetic relationships among germplasm resources of wild ramie ( Boehmeria nivea L. Gaud) in China based on trnL-F and its sequences. Pakistan J Bot, 2015, 47: 1451-1457[本文引用:2]
[40]Van B H, Stout J M, Cote A G, Tallon C M, Sharpe A G, Hughes T R, Page J E. The draft genome and transcriptome of Cannabis sativa. Genome Biol, 2011, 12: R102[本文引用:2]
[41]Wang Z, Hobson N, Galindo L, Zhu S, Shi D, McDill J, Yang L, Hawkins S, Neutelings G, Datla R, Lambert G, Galbraith D W, Grassa C J, Geraldes A, Cronk Q C, Cullis C, Dash P K, Kumar P A, Cloutier S, Sharpe A, Wong G, Wang J, Deyholos M K. The genome of flax ( Linum usitatissimum) assembled de novo from short shotgun sequence reads. Plant J Cell Mol Biol, 2012, 72: 461-473[本文引用:2]
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