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--> --> -->目前, 有很多方法可以制备聚合物微球, 主要有聚合法(如乳液聚合、悬浮聚合、沉淀聚合)、乳液-溶剂挥发法(如相分离、界面失稳)、微加工法(如软印刷、微流控技术)等[10-12]. 通过调控实验参数, 可以得到各种尺寸、形状可调的微粒. 通常, 由于在颗粒和介质之间的界面自由能趋于最小化, 在异相体系(例如乳液、悬浮液和分散液等)中聚合制备的聚合物颗粒具有球形形貌[13,14]. 对于如何突破球形界面的限制产生表面粗糙的聚合物微粒这一问题, 研究人员已经做了许多尝试. 其中, 通过引入表面活性剂可以对乳液液滴界面现象进行调节. 表面活性剂是一类两亲性物质, 在乳液界面起到降低界面张力的作用, 从而维持乳液稳定存在[15,16]. 在溶剂挥发过程中会导致界面曲率增加、界面面积减小、表面活性剂浓度增加等一系列变化. 当乳液液滴界面张力不断降低至一定程度会导致界面面积自发增大, 从而使界面发生扰动, 这种现象称之为乳液液滴界面不稳定[17,18]. 利用此机制制备具有复杂表面微结构的聚合物微球操作简单、可调控性强、各向异性明显; 但由于常规的搅拌等方法制备的乳液液滴单分散性较差, 因此常常导致生成的微球尺寸差异较大, 且该方法仅局限于两亲性嵌段共聚物的体系, 而对于疏水性聚合物(均聚物或者共聚物)鲜有报道, 这限制了该方法的适用范围. 微流控方法可以较好地解决乳液的单分散性问题, 微流控技术是指在微尺度(几十至几百微米)范围下对微量流体(10–9— 10–18 L)进行系统地整合和操控的技术[19-21]. 在材料制备方面, 微流控技术举足轻重. 通过多样化的材料选择和精巧的流体通道设计, 可以对所生成的材料的形貌以及结构进行精确的控制, 因此其在复杂形貌及多功能材料制备方面显示出巨大的应用前景[22,23]. 基于微流控技术制备的微粒具有粒径均一、尺寸可控、结构复杂、应用广泛等明显优势, 但其缺点是需要与其他技术相结合才能对聚合物微粒的复杂结构进行调控. 因此, 利用微流控技术大量生产具有可控表面粗糙度的功能化聚合物颗粒仍然是一个较大的挑战.
本文将微流控技术与液滴界面不稳定机制相结合, 构建了尺寸均一、表面粗糙结构可调的聚苯乙烯微球. 如图1所示, 首先基于毛细管微流控芯片制备出单分散的水包油乳液液滴, 进而研究了疏水的均聚物聚苯乙烯(Polystyrene, PS)在表面活性剂十二烷基硫酸钠(Sodium dodecyl sulfate, SDS)和助表面活性剂n-十六烷醇(n-hexadecanol, HD)的共同作用下使乳液液滴发生的界面不稳定的过程. 接着, 通过调控溶剂挥发速率及助表面活性剂的浓度等实验参数实现对微球表面粗糙度的调控. 由于可操控表面微结构微球在细胞培养、捕获等方面具有的良好应用前景, 我们将制备得到的微球用于循环肿瘤细胞 (circulating tumor cells, CTC)的捕获研究, 考察其对提高捕获效率的作用效果.
图 1 表面粗糙聚苯乙烯微球的制备示意图 (a) 均匀乳液液滴的微流控生成示意图; (b) 具有表面褶皱的固体微球的形成过程示意图, 在收集皿中, 液滴内氯仿的挥发触发了界面不稳定性现象, 随之产生表面的褶皱Figure1. Schematic illustration of the fabrication of polystyrene microspheres with rough surface: (a) Schematic representation of generating uniform emulsion droplets from microfluidic devices; (b) schematic diagram of the formation process of solidified microspheres with surface wrinkles. In the collection dish, the volatilization of chloroform from droplets triggers the interface instability phenomenon, then the surface wrinkles are generated.
2.1.微流控芯片制备乳液液滴
本实验中首先通过玻璃毛细管微流控装置制备单乳液液滴模版, 玻璃毛细管的组装按照典型的协流式单乳液通道结构来进行. 分散相(内相)溶液由10 mg/mL的聚苯乙烯/ 氯仿溶液、不同浓度的n-十六烷醇/氯仿溶液组成; 连续相(外相)溶液由3 mg/mL的SDS/甘油溶液组成, 选择十二烷基硫酸钠固体粉末, 溶于30 vol.%甘油/水溶液中; 收集液的组分同连续相溶液.为产生单分散性的水包油乳液液滴, 将一定量的内外相溶液抽取到不同规格的玻璃注射器中并将其分别安放在蠕动泵上, 设定内外相流速, 启动蠕动泵工作. 通过改变内外相流速对生成乳液液滴的尺寸和产率进行调控.
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2.2.表面褶皱聚苯乙烯微球的生成与调控
将上述生成的液滴收集在不同体积的SDS/甘油溶液中, 可在显微镜下观察到随着有机溶剂在水相中的扩散、蒸发, 乳液液滴界面不稳定现象被触发, 液滴逐渐固化并在表层形成不同程度的褶皱. 悬浮在溶液中的微粒首先在去离子水中透析7天以去除表面的甘油、SDS和残余的氯仿, 然后在乙醇中透析7天以去除HD.微球表面褶皱程度的调控可主要从以下两个因素的调节来实现: 1)在0—3 mg/mL范围内改变分散相中HD的浓度, 可得到从表面平滑到高度褶皱的聚合物微粒; 2)在0.5 —10.0 mm范围内改变收集液SDS/甘油溶液的高度, 从而影响有机溶剂的蒸发速率, 造成表面形态变化. 为了使微球适应于更广泛应用的功能, 将上述具有褶皱结构的微球浸泡在四氧化三铁纳米粒子分散液中并保持3 h震荡. 由于吸附有磁性纳米粒子的聚苯乙烯微球在水中的沉降速度较快, 因此采用静置法使微球沉至底部, 移除上方溶液后添加超纯水多次洗涤. 洗涤完全后, 可通过外加磁铁实现微球的快速分离.
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2.3.褶皱微球用于循环肿瘤细胞(CTC)捕获实验
将干燥的聚苯乙烯褶皱微球样品放入真空等离子清洗机反应腔内, 等离子体处理5 min, 使其惰性的表面活化, 便于后续抗体的接枝和特异性固定. 由于在等离子体处理过程中需要开启真空泵, 这可能会导致一部分磁性粒子的损耗, 但通过增加磁性纳米粒子的初始吸附数量、合理控制等离子体处理时间等措施, 能够减弱这种损耗对整个褶皱微球磁性的影响. 接着, 将抗上皮细胞黏附分子(epithelial cell adhesion molecule, EpCAM)特异性抗体稳定、均一地修饰在聚苯乙烯微球表面. 随后, 采用外周血 MCF-7 肿瘤细胞作为靶细胞, 将褶皱微球添加到MCF-7细胞悬液中. 为了便于观察和计数, 细胞通过钙黄绿素染色.
图 2 (a) 微流控通道内液滴的实时生成图像, 比例尺为600 μm; (b), (c) 液滴及其相应PS微球的光镜图片, 比例尺分别为200 和80 μm; (d), (e) 液滴直径和内外相流速之间的曲线关系图: (d) 当内相流速保持在0.1 mL/h不变时, 液滴直径与外相流速间呈负相关; (e) 当外相流速保持在5 mL/h不变时, 直径与内相流速呈正相关Figure2. (a) Real-time images of droplets generated in the microfluidic device, the scale bar is 600 μm; (b), (c) microscope photographs of the (b) droplets and (c) the resultant PS microparticles. The scale bars are 200 μm in (b) and 80 μm in (c), respectively; (d), (e) Relationships of the droplets radius with (d) the same inner flow rate and (e) the same outer flow rate, respectively. Error bars represent standard deviations.
将液滴收集在含有外相溶液的玻璃皿中, 可以明显观察到随着氯仿的蒸发, 乳液液滴不断缩小, 同时产生“涟漪状”物质, 最后聚苯乙烯团聚成微球的形状, 呈现黑色, 通过光学显微镜追踪此过程如图3所示. 在有机溶剂氯仿的挥发过程中, 乳液液滴变小导致了界面曲率增加、界面面积减小、表面活性剂浓度增加等一系列物理变化. 当界面张力降低到一定程度时, 液滴表面面积自发增大(类似于花朵绽放的过程), 即触发了乳液液滴界面不稳定机制. 另外, 在氯仿挥发过程中, PS与HD之间因为互不相溶而发生相分离, 形成非常微小的液滴. 随着整个乳液液滴体积收缩, 微小液滴逐渐融合, PS微球慢慢固化过程中小液滴占据的位置成为凹陷孔隙, 进一步增加了微球表面的粗糙度. 待氯仿彻底挥发后, 该结构被固定, 最终得到表面具有凹陷孔隙分布和均匀凸出褶皱结构的微球. 由于液滴是基于微流控芯片产生的, 具有均一的尺寸分布, 因此同等条件下经过氯仿挥发后的固化微球也具有较为良好的单分散性, 微球直径在80 μm左右, 如图2(c)所示.
图 3 体式显微镜下观察到的具有褶皱表面的微球的生成过程. 随着氯仿的蒸发, 乳液液滴不断缩小, 同时产生“涟漪状”物质, 最后PS玻璃化形成固化微球, 此过程在常温下约持续1 min. 图(a)?(f)的比例尺为300 μm, 图(g)?(i)的比例尺为250 μmFigure3. Formation process of microspheres with wrinkled surface observed under the microscope. With the evaporation of chloroform, the droplets continue to shrink, and meanwhile, the "ripple-like" substance is produced. Finally, the PS vitrifies to form solidified microspheres. This process lasts about 1 minute at the room temperature. The scale bars are 300 μm in (a)?(f) and 250 μm in (g)?(i), respectively.
我们探究了内相溶液中HD的浓度和收集液高度这两个主要因素对微球表面褶皱度的影响. 当HD的浓度从0逐步增加到3 mg/mL时, 微球表面褶皱度发生了明显的变化. 内相溶液中不含HD, 即浓度为0 mg/mL时, 所得微球表面非常平滑, 几乎没有褶皱, 其光镜和电镜的表征图像如图4(a)和图4(d)所示. 当HD浓度提高到0.5 mg/mL时表面出现局部不平滑的区域(图4(b)和图4(e)), 具体表现为微球表面形成了凹陷孔隙的分布. 如图4(c), 图4(f) —图4(h), 图4(j), 和图4(k)显示, 从1 mg/mL开始微球表面出现均匀褶皱, 在1—3 mg/mL之间, 随着HD浓度的增加, 微球表面伸出的粗糙结构长度不断增加. 当浓度达到3 mg/mL时, 球体核心变得非常小, 被大幅度褶皱覆盖. 助表面活性剂HD的浓度对表面形貌的影响可归结于HD分子在油/水交界面处的累积和重排, 且进一步渗透到SDS单层中诱导SDS的组装, 两个过程都共同导致了乳液液滴界面张力的降低, 从而引起界面不稳定现象的发生, 产生了伸展出表面的褶皱.
图 4 具有不同表面褶皱度的聚苯乙烯微球的光镜和电镜表征. 这些微球是由含有相同浓度PS和不同浓度HD的液滴模板固化得到, 其对应的HD浓度如下: (a), (d) 0 mg/mL; (b), (e) 0.5 mg/mL; (c), (f) 1 mg/mL; (g), (j) 1.5 mg/mL; (h), (k) 2 mg/mL; (i), (l) 3 mg/mL. 光镜图片((a)?(c), (g)?(i)) 和电镜图片((d)?(f), (j)?(l)) 的比例尺分别为45和30 μmFigure4. The optical microscopy and SEM images of the PS microparticles with different surface-roughness. They are obtained from microfluidic droplet templates containing 10 mg/mL PS and varied concentrations of HD: (a), (d) c = 0 mg/mL; (b), (e) c = 0.5 mg/mL; (c), (f) c = 1 mg/mL; (g), (j) c = 1.5 mg/mL; (h), (k) c = 2 mg/mL; and (i), (l) c = 3 mg/mL. The scale bars are 45 μm in ((a)?(c), (g)?(i)) and 30 μm in ((d)?(f), (j)?(l)), respectively.
另外, 当收集液SDS/甘油的液面高度在0.5—10.0 mm 范围内变化时, 保持容器底面直径固定, 随着收集液体积增加, 褶皱度逐渐降低, 这与HD的浓度变化的影响相反. 由此可见, 水层高度明显影响有机溶剂的挥发速率, 从而可以通过调节挥发速率的快慢制备各种形态的聚合物粗糙微球. 综合来看, 乳液液滴挥发触发的界面失稳过程和液滴的相变是两个竞争性的过程, 当溶剂挥发非常快时, 乳液液滴中的界面张力降低占主导作用, 首先发生了界面不稳定现象, 然后固化形成粗糙微球; 当溶剂挥发非常慢时, 液滴在没有达到很低的界面张力时就已经固化, 形成了较光滑的微球.
由于微球表面褶皱之间的间隙较小, 磁性纳米粒子能够被吸附在间隙中并保持稳定. 宏观磁吸实验可以证明, 微球整体可以在磁场的作用下进行可控运动. 将一批表面载有磁性纳米粒子的褶皱微球装在透明玻璃瓶内, 在永磁铁的作用下, 可以观察到微球被吸引到靠近磁铁的瓶壁一侧, 如图5所示. 因此可以证明, 所制备的微球具有磁控运动特性, 这为后续的细胞捕获和富集带来了极大便利.
图 5 表面包覆有四氧化三铁纳米粒子的聚苯乙烯褶皱微球被赋予较强的磁响应性. 在永磁铁的引导下, 微球被吸引到靠近磁铁的瓶壁一侧. 图中比例尺为1.5 cmFigure5. Strong mangnetic responsiveness of the highly textured PS microparticles coated with Fe3O4 nanoparticles. Under the gui-dance of the permanent magnet, the microspheres are attracted to the side of the bottle wall near the magnet. The scale bar is 1.5 cm.
由于粗糙表面有利于细胞黏附、传播和生长, 我们探究了这种表面褶皱微球的肿瘤循环细胞捕获应用. 长期以来, 临床在癌症的诊断与治疗中, 通常是利用组织细胞活检来进行确诊并跟踪治疗效果, 这种方法不仅会给患者带来身体上的创伤, 而且价格昂贵. 诊断癌症更好的方法是对游离在血液中的肿瘤细胞, 即循环肿瘤细胞进行检测. CTC被认为是癌症转移的一个重要因素, 但是它在血液循环系统中的含量极少, 一般 1 mL 血液中只有 1—10 个, 因此急需高效的捕获和富集载体[24,25]. 我们将表面修饰特异性抗体的褶皱微球加入到细胞悬液中并进行染色观察, 如图6(a)—图6(c), 共聚焦激光扫描显微镜(confocal laser scanning microscope, CLSM)图像显示钙黄绿素染色的MCF-7细胞附着在褶皱表面, 且发出明亮的绿色荧光. 为了获得更高的捕获效率, 我们还探索了细胞数量与褶皱程度之间的关系. 为此, 将具有相同浓度抗体, 但褶皱度不同的微球与相同浓度的细胞一起孵育, 根据CLSM图像计算并分析捕获的细胞. 图6(d)显示在光滑聚苯乙烯微球表面捕获的细胞数量较少, 而随着褶皱程度的增加, 被捕获的数量相应增多.
图 6 被捕获在微球表面的循环肿瘤细胞的共聚焦激光扫描显微镜图像 (a) 横截面荧光图像; (b) 明场图像; (c) (a)和(b)合并后的图像; (d) 细胞捕获数量与微球表面褶皱度的关系Figure6. The CLSM images of CTC captured onto the surface of the PS microparticles: (a) The cross-section fluorescent images; (b) the white-light images, and (c) the merged images. The scale bar is 30 μm; (d) the relationships of the number of captured cells with the extents of surface wrinkles.
