张同祯^1,**, 李永生^1,**, 李玥², 姚海梅¹, 赵娟¹, 王婵¹, 赵阳¹, 王汉宁¹, 方永丰^1,*, 胡晋^3,*
1甘肃省作物遗传改良与种质创新重点实验室 / 甘肃省干旱生境作物学重点实验室 / 甘肃农业大学农学院, 甘肃兰州730070

²甘肃省农业科学院作物研究所, 甘肃兰州730070

³浙江大学农业与生物技术学院, 浙江杭州310058

^* 通讯作者(Corresponding authors): 方永丰, E-mail: fangyf@gsau.edu.cn; 胡晋, E-mail: jhu@zju.edu.cn 第一作者联系方式: 张同祯, E-mail: 294301204@qq.com ^**同等贡献(Contributed equally to this work)
收稿日期:2015-09-16 接受日期:2016-03-02网络出版日期:2016-03-11基金:本研究由国家重点基础研究发展计划(973计划)前期研究专项(2012CB722902), 国家自然科学基金项目(31371708, 31201279)和甘肃省干旱生境作物学重点实验室开放基金项目(GSCS-2012-10)资助

摘要以长中胚轴玉米自交系PH4CV为材料, 在黑暗和光照两种处理条件下研究了玉米中胚轴长度与多胺氧化酶(polyamine oxidase, PAO)活性、H₂O₂含量、过氧化物酶(peroxidase, POD)活性及木质素含量的关系。通过添加5 mmol L^-1 PAO抑制剂2-羟乙基肼(2-hydroxyethylhydrazine, 2-HEH)和5 mmol L^-1 H₂O₂清除剂N,N’-二甲基硫脲(N,N’-Dimethylthiourea, DMTU)及组织化学染色, 研究了影响中胚轴伸长的H₂O₂来源及其积累部位。采用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)方法, 探究了光对 ZmPAO基因表达的影响。结果表明, 光照处理显著抑制了玉米中胚轴的伸长, 同时显著增加该部位的PAO活性、H₂O₂含量、POD活性及木质素含量。相关性分析表明, 玉米中胚轴长度与PAO活性、H₂O₂含量和木质素含量呈极显著负相关, 与POD活性呈显著负相关; PAO活性与H₂O₂含量、POD活性和木质素含量均呈正相关。外源PAO抑制剂和H₂O₂清除剂处理试验, 玉米中胚轴表皮纵切面细胞长度显微观察及中胚轴H₂O₂组织化学染色表明, PAO氧化分解多胺(polyamines, PAs)产生的H₂O₂参与了中胚轴细胞伸长的生理调控, 从而抑制了中胚轴的伸长。表达分析表明, ZmPAO基因在黑暗环境下的表达量相对稳定, 光刺激0.5 h后表达量迅速升高, 3 h后达到最大值, 随后逐渐下降, 10 h后趋于稳定。本研究表明, PAO在接受光刺激后活性升高, 氧化分解PAs产生H₂O₂, 从而诱导POD氧化胞壁的单木质醇并聚合为木质素, 使细胞壁硬化, 造成细胞伸长受阻。研究结果为进一步探讨PAO活性调控光诱导玉米中胚轴伸长的生理机制和阐明玉米中胚轴对光逆境的响应机理提供了理论依据。

关键词:玉米; 光照; 中胚轴伸长; 多胺氧化酶; 表达分析
Physiological Mechanism Regulating Light-induced Mesocotyl Elongation by Polyamine Oxidase (PAO) in Maize
ZHANG Tong-Zhen^1,**, LI Yong-Sheng^1,**, LI Yue², YAO Hai-Mei¹, ZHAO Juan¹, WANG Chan¹, ZHAO Yang¹, WANG Han-Ning¹, FANG Yong-Feng^1,*, HU Jin^3,*
1Gansu Key Laboratory of Crop Improvement and Germplasm Enhancement / Gansu Provincial Key Laboratory of Aridland Crop Science / Gansu Agricultural University, Lanzhou 730070, China

²Institute of Crop Science, Gansu Academy of Agricultural Sciences, Lanzhou 730070, China

³College of Agriculture & Biotechnology, Zhejiang University, Hangzhou 310058, China

Fund:This study was supported by National Basic Research Program of China (973 Program, 2012CB722902), the National Natural Science Foundation of China (31371708, 31201279), and Research Program Sponsored by Gansu Provincial Key Laboratory of Aridland Crop Science (GSCS201210)
AbstractIn this study, maize inbred line PH4CV was cultured under in MS medium under both dark and light conditions to investigate the relationship of length of mesocotyl with activity of polyamine oxidase (PAO), activity of peroxidase (POD), contents of H₂O₂ and lignin. In addition, after treated with 5 mmol L^-1 2-hydroxyethylhydrazine (2-HEH) and 5 mmol L^-1 N, N’-Dimethylthiourea (DMTU), the origin and accumulation site of H₂O₂ in mesocotyl elongation were assessed by using histochemical staining method and the effect of light on expression of ZmPAO gene was evaluated. The results indicated that the elongation of mesocotyl was significantly inhibited while the contents of H₂O₂ and lignin and the activities of POD and PAO were enhanced by light. Correlation analysis showed that the length of mesocotyl was negatively correlated with the PAO activity, H₂O₂ content, POD activity, and lignin content, and the PAO activity was positively correlated with the H₂O₂ content, the POD activity, and the lignin content. The assay with 2-HEH and DMTU, the microgram of epidermal cells, and histochemical localization of H₂O₂ revealed that H₂O₂ participated in mesocotyl elongation, in which PAO catalyzed polyamines (PAs) degradation to produce H₂O₂ resulting in the inhibition of mesocotyl elongation. Results of qRT-PCR revealed that the expression level of ZmPAO was relatively stable in dark and rose rapidly of 0.5 hour after exposing to light, with a maximum value after three hours of light treatment, then declined gradually, and finally showed a steady level after ten hours. This study suggests that the activity of PAO can be promoted by light treatment, and initiate the PAs-mediated induction of H₂O₂, resulting in the oxidation of lignin monomers on cell wall by POD. The produced free radicals are then transformed into lignin in a polyforming process which marked the cell wall hardened and cell elongation inhibited. This study may provide a theoretical basis for understanding the physiological mechanism underlying the PAO-mediated mesocotyl elongation and gain insights into the response of maize mesocotyl to the light stress.

Keyword:Maize; Light; Mesocotyl elongation; Polyamine oxidase; Expression analysis
Show Figures
Show Figures


















玉米(Zea mays L.)种子出苗率与土壤水分、温度及播种深度密切相关。Dungan^[1]和Hoshikawa^[2]认为玉米主要通过延伸中胚轴长度达到深播出苗的目的, 张磊等^[3]认为中胚轴和胚芽鞘协同决定幼苗的出土深度, 其中中胚轴起主导作用, 赵光武等^[4]报道了深播出苗率与中胚轴长度具有显著的相关性且不同品种的耐深播能力差异明显, 杜金友等^[5]研究表明, 玉米中胚轴的伸长受到光照与激素等的影响。
Stuart等^[6]和Cosgrove^[7]研究表明, 中胚轴伸长的实质是中胚轴细胞的延伸生长和分裂, 其中细胞延伸生长起着决定作用。李莉等^[8]也认为细胞长度增加对中胚轴的伸长贡献更大, 细胞数目对中胚轴伸长的促进作用仅发生在伸长生长的初期, 而细胞伸长对中胚轴的促进作用贯穿于中胚轴伸长生长的整个时期。有****认为细胞伸长受膨压的驱动, 但木质素作为细胞次生壁的重要组成部分, 决定了细胞壁弹性的大小, 木质素含量升高会造成细胞壁松弛度下降, 抑制细胞的伸长生长^[9], 有研究认为这一过程可以被某些酶或化学因素所介导^[10]。在细胞壁木质化过程中, H₂O₂的积累诱使过氧化物酶(POD)氧化细胞壁的单木质醇为自由基并聚合为木质素, 导致细胞壁硬化从而阻碍了细胞的伸长生长^[11]。在此过程中, H₂O₂可能的来源主要包括还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶^[12]、POD^[13]及多胺氧化酶(PAO)^[14]三种途径。
Yoda等^[14]研究发现, 质外体H₂O₂主要是通过PAO氧化降解多胺(polyamines, PAs)途径产生的。PAO主要分布在禾谷类单子叶植物中^{[15, 16]}, 玉米中的PAO最早是在细胞质外体被发现, 现已被通过生物化学、细胞免疫等方法定位于玉米的木质部、木薄壁细胞、内皮层、表皮层的初生和次生壁^[17]。同时, PAO的核苷酸序列与氨基酸序列已被测定分析, 发现其cDNA全长1737 bp, 具有一个开放阅读框, 编码500个氨基酸残基^{[18, 19]}。Cervelli等^[20]从玉米中分离到3种编码PAO的基因, 发现它们极其保守, 有几乎相同的核苷酸序列, 由8个外显子和7个内含子组成, 且具有高度的组织特异性。Federico等^[21]研究发现豌豆在萌发后其茎基部木质化程度与PAO氧化降解PAs产生H₂O₂有关, Laurenzi等^[22]发现玉米中胚轴切段中H₂O₂的产生可被PAO抑制剂2-羟乙基肼(2-hydroxyethylhydrazine, 2-HEH)强烈抑制。Cona等^[23]认为光调控了玉米中胚轴表皮PAO活性, 玉米中胚轴受到光刺激后, 其表皮的PAO活性及其mRNA水平均有所升高, 并且PAO活性的增加与光诱导的时间有紧密的联系。
玉米中胚轴伸长直接影响生产中种子出苗率及幼苗对干旱缺水环境的耐受能力, 国内外关于玉米中胚轴的研究大多都集中于光对中胚轴伸长的影响, 对光调控中胚轴伸长的作用机理研究较少。本研究以前期筛选的长中胚轴玉米自交系PH4CV为研究材料, 在黑暗和光照两种条件下研究了玉米中胚轴长度与PAO活性、H₂O₂含量、POD活性、木质素含量之间的关系, 并通过实时定量荧光PCR (qRT- PCR)方法探究了玉米ZmPAO基因的时空表达模式, 以期为进一步探讨PAO调控光诱导玉米中胚轴伸长的生理机制及为阐明玉米中胚轴对光逆境的响应机制提供理论依据。
1 材料与方法1.1 试验材料前期已筛选的长中胚轴玉米自交系PH4CV, 由甘肃农业大学农学院玉米遗传育种课题组提供。总RNA提取试剂盒RNA simple Total RNA Kit购自天根生化科技北京有限公司; 第一链cDNA合成试剂盒Prime Script RT reagent Kit with gDNA Eraser及实时荧光定量PCR试剂盒SYBR Premix Ex Taq II (Tli RNaseH Plus)购自宝生物工程(大连)有限公司; 其他药品均为国产分析纯。
1.2 材料培养挑选整齐饱满的干净种子, 以75%酒精溶液和0.1%氯化汞水溶液消毒后用无菌水冲洗3次, 室温浸种6 h后于25℃条件下培养24 h。将萌动一致的种子转接到MS培养基上, 置25℃人工智能培养箱(浙江托普仪器有限公司)中进行光暗处理(表1)。第1组为对照组, 第2组为5 mmol L^-1 2-羟乙基肼(2-HEH)处理组, 第3组为5 mmol L^-1 N, N’ -二甲基硫脲(DMTU)处理组; 设3次生物学重复。在处理0、0.5、1、3、6、10、24、48及72 h后进行各试验组形态及生理指标测定, 同时提取样品总RNA用于半定量及实时荧光定量PCR分析。
表1
Table 1
表1(Table 1)

表1 材料培养方法 Table 1 Material culture methods 处理 Treatment 对照 Contrast 5 mmol L-1 2-羟乙基肼 5 mmol L-1 2-hydroxyethylhydrazine (HT) 5 mmol L-1 N, N’ -二甲基硫脲 5 mmol L-1 N, N’ -dimethylthiourea (DT) 黑暗 Dark (D) D-CK D-HT D-DT 光照 Light (L) L-CK L-HT L-DT 光照处理的白光强度为500 μ mol m-2 s-1。The white light intensity is 500 μ mol m-2 s-1.

表1 材料培养方法 Table 1 Material culture methods

1.3 中胚轴形态指标和生理指标的测定及组织显微观察用毫米尺测量中胚轴长度, Sartorius BSA-224S电子分析天平测量中胚轴的干鲜重, 以测定平均值(n≥ 20)表示量值大小。参照汪天等^[24]的方法测定多胺氧化酶活性; 参照Brennan等^[25]的方法测定H₂O₂含量; 参照Orozco-Cardenas等^[26]的方法进行H₂O₂组织化学定位; 采用愈创木酚法^[27]测定POD活性; 参照Syros等^[28]的方法测定木质素含量; 参照Tanaka等^[29]的方法以显微观察玉米中胚轴纵切面细胞长度。
1.4 ZmPAO基因实时荧光定量PCR分析按照RNA simple Total RNA Kit说明书进行实时荧光定量分析, 提取玉米中胚轴总RNA, 用1%琼脂糖凝胶电泳检测总RNA完整性, 紫外分光光度计检测总RNA的浓度和质量。根据GenBank中ZmPAO基因(NM_001111636)和β tubulin-2基因(NM_ 001111956)序列, 分别设计特异性引物, ZmPAO基因上游引物(ZmPAO-F)为5′ -AGTGTGGCAGGAGTTC GAGAA-3′ , 下游引物(ZmPAO-R)为5′ -ATGATCTCC GCCTTGGTCTG-3′ ; β tubulin-2基因上游引物(β tubulin-2-F)为5′ -TTCATGTGGTAGGTTCGTGCC-3′ , 下游引物(β tubulin-2-R)为5′ -TGGCCGAAGACGAA GTTGTC-3′ 。按反转录试剂盒说明书合成cDNA第一链, 以cDNA为模板, 按SYBR Premix Ex Taq II (Tli RNaseH Plus)说明书进行qRT-PCR。反应体系含SYBR Premix Ex Taq II (Tli RNaseH Plus)(2× )10 μ L、PCR Forward Primer 0.8 μ L、PCR Reverse Primer 0.8 μ L、ROX Reference Dye (50× ) 0.4 μ L、cDNA模板2 μ L、ddH₂O 6 μ L。反应程序为, 95℃预变性31 s; 95℃变性5 s, 60℃退火34 s, 72℃延伸1 min, 40个循环。根据扩增曲线确定每个基因的响应Ct值, 以β tubulin-2为内参矫正PCR模板的拷贝数, 采用2^{-Δ Δ CT}方法计算基因相对表达量, 同时进行半定量RT-PCR, 设3次生物学重复。
1.5 数据统计分析采用Microsoft Excel 2013和SPSS 19.0统计分析软件进行数据整理和最小显著差异性检验(Duncan’ s新复极差法), 利用Origin 8.5软件绘制图形。

2 结果与分析2.1 PAO调控光诱导的玉米中胚轴伸长2.1.1 光对玉米中胚轴长度及生物量积累的影响
光不仅是高等植物进行光合作用的能量来源, 也是调控植物生长发育重要的信号物质。由图1可以看出, 光照处理显著抑制了玉米中胚轴的伸长, 在处理24、48和72 h后, 中胚轴长度分别比对照减小了19.2%、60.6%和66.5%, 且在48 h后与对照的差异达到极显著水平(P< 0.01); 同时, 光照也抑制了玉米中胚轴生物量的积累, 处理72 h后中胚轴鲜重(FW)和干重(DW)分别比对照减少了60.8%和45.5%, 差异均达到极显著水平(P< 0.01), 说明光照处理抑制了玉米中胚轴的伸长及生物量的积累。
图1
Fig. 1

	Figure OptionViewDownloadNew Window
	图1 光对玉米中胚轴长度及生物量积累的影响 * * 表示在0.01水平上差异显著; * 表示在0.05水平上差异显著。Fig. 1 Effects of light on length and biomass accumulation of mesocotyl in maize * * means significant difference at the 0.01 level; * means significant difference at the 0.05 level.

2.1.2 光对玉米中胚轴PAO活性的影响 光照处理显著提高了玉米中胚轴中PAO的活性, 在处理24、48和72 h后PAO活性分别升高了27.7%、38.9%和16.9%, 而中胚轴长度累计缩短了66.5% (图2); 进一步发现施加5 mmol L^-1 2-HEH对黑暗与光照环境下PAO活性均强烈抑制, 使光下中胚轴长度累计增加了155.9%, 但仍略小于黑暗环境中胚轴长度。由此表明, 光照抑制玉米中胚轴伸长可能与PAO活性的升高有关。L-HT处理72 h后, PAO活性相比同样处理24 h及48 h略有升高, 认为当施加的2-HEH被消耗后, 光可以继续激发PAO活性从而抑制中胚轴伸长。
图2
Fig. 2

Figure OptionViewDownloadNew Window

图2 光对玉米中胚轴PAO活性及长度的影响 D-CK: 黑暗对照; D-HT: 黑暗, 5 mmol L-1 2-羟乙基肼处理; L-CK: 光照对照; L-HT: 光照, 5 mmol L-1 2-羟乙基肼处理。标以不同大写字母于处理间表示在0.01水平上差异显著。Fig. 2 Effects of light on PAO activity and mesocotyl elongation in maize D-CK: dark contrast; D-HT: dark, 5 mmol L-1 2-hydroxyethylhydrazine; L-CK: light contrast; L-HT: light, 5 mmol L-1 2-hydroxyethylhydrazine. Bars superscripted by different letters are significantly different at the 0.01 probability level among treatments.

2.1.3 光对玉米中胚轴H₂O₂含量的影响 PAO在O₂和H₂O存在的情况下主要将PAs氧化降解为吡咯啉、1-(3-氨丙基)2-吡咯啉和二氨丙烷, 同时产生H₂O₂^[30]。为探究H₂O₂是否与玉米中胚轴伸长有关, 对不同处理下中胚轴H₂O₂含量和长度进行了测定分析(图3), 发现光照处理后, 中胚轴H₂O₂含量分别升高了19.5%、39.2%和53.9%, 中胚轴伸长被不同程度的抑制, 累计缩短了66.5%; 施加5 mmol L^-1 DMTU时, 黑暗和光照环境下中胚轴H₂O₂含量均有所下降, 与对照差异极显著(P < 0.01); L-DH处理72 h后, 中胚轴长度相比L-CK增长了2.4倍。说明H₂O₂含量的变化可能影响了中胚轴伸长的生理过程。
图3
Fig. 3

Figure OptionViewDownloadNew Window

图3 光对玉米中胚轴H2O2含量和长度的影响 D-CK: 黑暗对照; D-DT: 黑暗, 5 mmol L-1 N, N’ -二甲基硫脲处理; L-CK: 光照对照; L-DT: 光照, 5 mmol L-1 N, N’ -二甲基硫脲处理。标以不同大写字母于处理间表示在0.01水平上差异显著。Fig. 3 Effects of light on H2O2 content and mesocotyl elongation in maize D-CK: dark contrast; D-DT: dark, 5 mmol L-1 N, N’ -Dimethylthiourea; L-CK: light contrast; L-DT: light, 5 mmol L-1 N, N’ -Dimethylthiourea.Bars superscripted by different letters are significantly different at the 0.01 probability level among treatments.

生物体内H₂O₂来源并不是唯一的, 质膜H₂O₂主要来源于还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶^[12], 细胞壁H₂O₂主要来源于POD^[13], 而质外体H₂O₂主要来源于PAO^[14]。分析施加5 mmol L^-1 2-HEH和5 mmol L^-1 DMTU后, 中胚轴H₂O₂水平及PAO活性的变化(图4), 可以发现, PAO活性被抑制后, H₂O₂含量极显著下降(P < 0.01), 清除中胚轴H₂O₂时, PAO活性差异并不显著(P > 0.01)。说明是质外体H₂O₂影响了玉米中胚轴伸长, 其来源于PAO氧化分解PAs。
图4
Fig. 4

Figure OptionViewDownloadNew Window

图4 5 mmol L-1 2-HEH及5 mmol L-1 DMTU对中胚轴H2O2含量和PAO活性的影响 D-CK: 黑暗对照; D-HT: 黑暗, 5 mmol L-1 2-羟乙基肼处理; L-CK: 光照对照; L-HT: 光照, 5 mmol L-1 2-羟乙基肼处理; D-DT: 黑暗, 5 mmol L-1 N, N’ -二甲基硫脲处理; L-DT: 光照, 5 mmol L-1 N, N’ -二甲基硫脲处理。标以不同大写字母于处理间在0.01水平上差异显著。Fig. 4 Effect of 5 mmol L-1 2-HEH and 5 mmol L-1 DMTU on H2O2 content and PAO activity in maize D-CK: dark contrast; D-HT: dark, 5 mmol L-1 2-hydroxyethylhydrazine; L-CK: light contrast; L-HT: light, 5 mmol L-1 2-hydroxyethylhydrazine; D-DT: dark, 5 mmol L-1 N, N’ -Dimethylthiourea; L-DT: light, 5 mmol L-1 N, N’ -Dimethylthiourea. Bars superscripted by different letters are significantly different at the 0.01 probability level among treatments.

2.1.4 光对玉米中胚轴POD活性和木质素含量的影响 有研究表明, 质外体H₂O₂会促进POD氧化细胞壁单木质醇为自由基, 从而使其聚合成木质素^[31]。对黑暗与光照处理下, 中胚轴POD活性及木质素含量测定(图5)发现, 光照处理下玉米中胚轴中的POD活性和木质素含量极显著升高(P < 0.01); 光照处理72 h后, POD活性和木质素含量分别累计增加了31.4%和32.9%, 说明POD活性和木质素含量在PAO参与光抑制中胚轴伸长的生理生化过程中发挥了作用。
图5
Fig. 5

	Figure OptionViewDownloadNew Window
	图5 光对玉米中胚轴POD活性和木质素含量的影响 * * 表示在0.01水平上差异显著; * 表示在0.05水平上差异显著。Fig. 5 Effects of light on POD activity and lignin content in maize mesocotyl * * means significant difference at the 0.01 level; * means significant difference at the 0.05 level.

2.1.5 中胚轴长度与PAO活性、POD活性、H₂O₂含量及木质素含量之间的相关性分析 由表2可以看出, 中胚轴长度与PAO活性、H₂O₂含量和木质素含量均呈极显著负相关(P < 0.01), 与POD活性呈显著负相关(P < 0.05); PAO活性与H₂O₂含量及木质素含量也存在极显著正相关(P < 0.01), 与POD活性显著正相关性(P < 0.05); POD活性与H₂O₂含量、木质素含量达到显著正相关(P < 0.05)。由此表明, PAO、H₂O₂、POD和木质素在玉米中胚轴伸长的生理过程中存在着某种联系。
表2
Table 2
表2(Table 2)

表2 中胚轴长度、PAO活性、H2O2含量、POD活性和木质素含量之间的相关系数 Table 2 Correlation coefficients among mesocotyl length, PAO activity, H2O2 content, POD activity, and lignin content 中胚轴长度 Mesocotyl length PAO活性 PAO activity H2O2含量 H2O2 content POD活性 POD activity 木质素含量 Lignin content 中胚轴长度 Mesocotyl length 1 PAO活性 PAO activity -0.884* * 1 H2O2含量 H2O2 content -0.815* * 0.836* * 1 POD活性 POD activity -0.597* 0.592* 0.581* 1 木质素含量 Lignin content -0.752* * 0.744* * 0.938* * 0.600* 1 * * means significant correlation at the 0.01 level; * means significant correlation at the 0.05 level. * * 表示在0.01水平上显著相关; * 表示在0.05水平上显著相关。

表2 中胚轴长度、PAO活性、H2O2含量、POD活性和木质素含量之间的相关系数 Table 2 Correlation coefficients among mesocotyl length, PAO activity, H2O2 content, POD activity, and lignin content

2.1.6 玉米中胚轴表皮细胞伸长和H₂O₂组织化学定位 玉米中胚轴伸长被抑制, 是否是其细胞伸长生长受到阻碍所致, 对不同处理下玉米中胚轴纵切面显微观察(图6-A-D), 发现细胞长度存在明显的差异。黑暗处理(图6-A)的细胞长度最大, 接近100 μ m; 光照处理(图6-B)的细胞长度最小, 几乎所有细胞长度均小于50 μ m; 光照情况下施加5 mmol L^-1 2-HEH和5 mmol L^-1 DMTU后(图6-C, D), 细胞长度均大于50 μ m但小于100 μ m。通过H₂O₂组织化学染色(图6-E-H)发现, 中胚轴表皮H₂O₂的积累量为D-CK < L-DT < L-HT < L-CK。证明H₂O₂的积累促进了木质素的合成, 使细胞壁硬化, 阻碍了细胞的伸长生长。
图6
Fig. 6

Figure OptionViewDownloadNew Window

图6 玉米中胚轴表皮细胞伸长和H2O2组织化学染色 A: D-CK处理的玉米中胚轴纵切面细胞长度; B: L-CK处理的玉米中胚轴纵切面细胞长度; C: L-HT处理的玉米中胚轴纵切面细胞长度; D: L-DT处理的玉米中胚轴纵切面细胞长度; E: D-CK处理的H2O2组织化学染色; F: L-CK处理的H2O2组织化学染色; G: L-HT处理的H2O2组织化学染色; H: L-DT处理的H2O2组织化学染色。Fig. 6 Microgram of epidermal cells of mesocotyl and histochemical H2O2 localization in maize A: Cell length in longitudinal section of maize mesocotyl in treatment of D-CK; B: Cell length in longitudinal section of maize mesocotyl in treatment of L-CK; C: Cell length in longitudinal section of maize mesocotyl in treatment of L-HT; D: Cell length in longitudinal section of maize mesocotyl in treatment of L-DT; E: D-CK, histochemical H2O2 localization; F: Histochemical H2O2 localization in treatment of L-CK; G: Histochemical H2O2 localization in treatment of L-HT; H: Histochemical H2O2 localization in treatment of L-DT.

2.2 ZmPAO基因的表达模式分析为证明PAO活性是受光照促进的, 进行了ZmPAO基因的表达模式分析, 将提取的玉米中胚轴总RNA经电泳检测后反转录为cDNA, 以设计的特异性引物ZmPAO F/R和β tubulin-2 F/R进行qRT-PCR及半定量RT-PCR (图7)。可以看出, 光照处理下ZmPAO基因的表达量显著高于黑暗处理(P < 0.05)。光刺激0.5 h后, 表达量上升了2.1倍, 3 h后达到最大, 是黑暗处理的2.5倍, 之后逐渐下降, 10 h后逐渐趋于稳定。结果表明ZmPAO基因的表达是受光信号调控的, 光刺激后, 其表达量会迅速升高, 达到峰值后会随即缓慢下降并趋于稳定状态。
图7
Fig. 7

	Figure OptionViewDownloadNew Window
	图7 ZmPAO基因的表达模式分析 标以不同大写字母于处理间表示在0.05水平上差异显著。Fig. 7 Expression pattern of ZmPAO Bars superscripted by different letters are significantly different at the 0.05 probability level among treatments.

2.3 PAO活性调控光诱导玉米中胚轴伸长的生理机制根据以上试验结果, 我们推测PAO活性调控光诱导玉米中胚轴伸长的生理机制可能为, PAO在接受光刺激后活性升高, 氧化分解PAs产生H₂O₂, 从而促进POD氧化单木质醇为自由基进而聚合为木质素, 使细胞壁硬化, 细胞伸长受阻, 最终导致中胚轴伸长生长被抑制(图8)。
图8
Fig. 8

	Figure OptionViewDownloadNew Window
	图8 PAO参与光诱导的中胚轴伸长可能的生理机制Fig. 8 Possible physiological mechanism of regulating light- induced mesocotyl elongation in maize by polyamine oxidase

3 讨论光是植物生长发育过程中重要的信号分子与能量物质, 在植物形态结构、生理生化反应和生长发育等方面起重要作用^[32], 不适时的光刺激会造成植物生长逆境, 改变植物光合作用、同化物质运输和形态建成等生理生化过程, 影响植物正常的生长发育^[33]。本研究发现, 对萌发后的玉米种子进行光照处理, 中胚轴长度、鲜重和干重的积累均被显著抑制, 中胚轴PAO活性、H₂O₂含量、POD活性和木质素含量有不同程度的升高, 这与苏国兴^[34]研究大豆下胚轴伸长的结果基本一致。PAO活性被抑制后, H₂O₂含量随之降低, 从而解除了光对中胚轴伸长的抑制作用; 而清除H₂O₂处理后, PAO活性并无明显变化, 但显著缓解了光对中胚轴伸长的抑制作用, 由此表明, PAO通过氧化分解PAs产生H₂O₂调控了中胚轴的伸长。2-HEH和DMTU处理后, H₂O₂不能被完全清除, 说明还有其他代谢途径产生了H₂O₂, 这与Hohl等^[35]的研究结果相一致。
玉米中胚轴纵切面细胞显微观察和H₂O₂组织化学染色表明, H₂O₂调控的细胞壁硬化、细胞伸长受阻在这一调控机制中发挥了作用, 这与Zhao等^[36]报道的中胚轴伸长与细胞伸长生长有关是一致的, 但他认为, 细胞伸长生长的调控主要是由中胚轴内源赤霉素(gibberellin, GA₃)含量变化引起的, 这与本研究结果中细胞伸长受阻可能是由于细胞木质化程度升高所引起的不完全一致。ZmPAO基因qRT-PCR分析表明, 玉米中胚轴表皮细胞ZmPAO基因的表达受光信号调控, 光刺激后, 其表达量出现迅速升高而后平缓下降到趋于稳定的状态, 且光处理下其活性均高于黑暗处理, 这与Laurenzi等^[22]的研究结果和ZmPAO基因表达是由依赖光敏素的转录激发子在光响应元件上的作用所介导的^[23]研究结果相类似。
玉米幼苗出土后, 芽鞘首先感知到光信号, 调控中胚轴的伸长, 可能存在从芽鞘到中胚轴的某种信号转导或物质转运过程。杜金友等^[5]认为光和内源激素影响了玉米中胚轴的伸长, Cona等^[23]研究表明, 玉米中胚轴中PAO活性在受光调控的同时, 还受到吲哚乙酸(indoleacetic acid, IAA)和萘乙酸(naphthylacetic acid, NAA)的调控, 其基因表达受光和激素共同调控。本研究表明玉米中胚轴伸长与光诱导的PAO活性有关, 当芽鞘接受到光刺激后, 芽鞘合成的IAA向下垂直运输, 提高了中胚轴中PAO的活性, 氧化分解PAs产生的H₂O₂在薄壁质外体上驱动了POD催化的薄壁单木质醇多聚体酚类残基的氧化交联和木质化的形成^{[31, 37]}, 从而完成细胞壁的硬化, 抑制了细胞的伸长^{[35, 38]}。有研究发现, PAO蛋白通过非共价的方式结合了黄素腺嘌呤二核苷酸(flavin adenine dinucleotide, FAD)^{[19, 39]}, 这表明PAO有可能是直接接受光刺激而非通过其他物质运输或信号转导的方式完成了其活性升高的生理生化过程。玉米中胚轴伸长的生理机制是光暗影响的多个生理生化过程共同影响的形态建成过程, 是否还存在其他调控PAO活性参与中胚轴伸长的生理机制, 有待进一步研究。
4 结论明确了光诱导的PAO活性升高是导致玉米中胚轴伸长受到抑制的主要原因, ZmPAO基因的表达受光的诱导。PAO调控光诱导玉米中胚轴伸长可能的生理机制为光促进PAO活性增强, 氧化分解PAs造成H₂O₂积累, 从而诱使POD氧化细胞壁单木质醇为自由基, 进一步聚合为木质素使细胞壁硬化, 细胞伸长受到抑制。研究结果为进一步探讨该生理机制和阐明玉米中胚轴对光逆境的响应机理提供了理论依据。
The authors have declared that no competing interests exist.

作者已声明无竞争性利益关系。The authors have declared that no competing interests exist.


参考文献View Option
原文顺序
文献年度倒序
文中引用次数倒序
被引期刊影响因子

[1]	Dungan G H. Response of corn to extremely deep planting. Agron J, 1950, 42: 256-257[本文引用:1]
[2]	Hoshikawa K. Underground organs of the seelings and the systematics of gramineae. Bot Gazette, 1969, 130: 192-203[本文引用:1]
[3]	张磊, 刘志增, 黄亚群, 陈景堂, 祝丽英. 46个玉米自交系耐深播特性分析. 河北农业大学学报, 2007, 30(3): 18-21 Zhang L, Liu Z Z, Huang Y Q, Chen J T, Zhu L Y. Deep-planting tolerance characteristics analysis on 46 maize inbred lines. J Agric Univ Hebei, 2007, 30(3): 18-21 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[4]	赵光武, 马攀, 王建华, 王国英. 不同玉米自交系耐深播能力鉴定及对深播胁迫的生理响应. 玉米科学, 2009, 17(5): 9-13 Zhao G W, Ma P, Wang J H, Wang G Y. Identification of deep-seeding tolerance in different maize inbred lines and their physiological response to deep-seeding condition. J Maize Sci, 2009, 17(5): 9-13 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[5]	杜金友, 张桂荣, 蔡爱军, 刘艳芳, 高桂花, 靳占忠. 玉米中胚轴长度与内源激素关系的研究. 玉米科学, 2008, 16(3): 70-73 Du J Y, Zhang G R, Cai A J, Liu Y F, Gao G H, Jin Z Z. Relationship between the mesocotyl elongation and hormones in maize (Zea mays L. ). J Maize Sci, 2008, 16(3): 70-73 (in Chinese with English abstract)[本文引用:2]
[6]	Stuart D A, Durnam D J, Jones R L. Cell elongation and cell division in elongating lettuce hypocotyl sections. Planta, 1977, 135: 249-255[本文引用:1]
[7]	Cosgrove D J. Enzymes and other agents that enhance cell wall extensibility. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol, 1999, 50: 391-417[本文引用:1]
[8]	李莉, 马殿荣, 陈温福, 孙健, 梁茜. 杂草稻中胚轴伸长的细胞形态学观察. 沈阳农业大学学报, 2012, 43: 749-753 Li L, Ma D R, Chen W F, Sun J, Liang Q. Observation of mesocotyl cell morphology of weed rice. J Shenyang Agric Univ, 2012, 43: 749-753 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[9]	周德宝. 植物激素与细胞骨架的排向. 植物生理学通讯, 2005, 41: 224-228 Zhou D B. Plant hormones and layout of cytoskeleton. Plant Physiol Commun, 2005, 41: 224-228 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[10]	Cosgrove D J. Expansive growth of plant cell walls. PIam Physiol Biochem, 2000: 109-124[本文引用:1]
[11]	Karpinska B, Karlsson M, Schinkel H, Streller S, Suss K H, Melzer M, Wingsle G. A novel superoxide dismutase with a high isoelectric point in higher plants expression, regulation, and protein localization. Plant Physiol, 2001, 126: 1668-1677[本文引用:1]
[12]	Jiang M, Zhang J. Involvement of plasma-membrane NADPH oxidase in abscisic acid- and water stress-induced antioxidant defense in leaves of maize seedlings. Planta, 2002, 215: 1022-1030[本文引用:2]
[13]	Frahry G, Schopfer P. NADH-stimulated, cyanide-resistant superoxide production in maize coleoptiles analyzed with a tetrazolium-based assay. Planta, 2001, 212: 175-183[本文引用:2]
[14]	Yoda H, Yamaguchi Y, Sano H. Induction of hypersensitive cell death by hydrogen peroxide produced through polyamine degradation in tobacco plants. Plant Physiol, 2003, 132: 1973-1981[本文引用:3]
[15]	Suzuki Y, Yanagisawa H. Purification and properties of maize polyamine oxidases: a flavprotein. Plant Cell Physiol, 1980, 21: 1085-1094[本文引用:1]
[16]	Smith T A. Polyamine oxidases (oat seedlings). Methods Enzymol, 1983, 94: 311-314[本文引用:1]
[17]	Angelini R, Federico R, Bonfeute P. Maize polyamine oxidase: antibody production and ultrastructural localization. Plant Physiol, 1995, 145: 686-692[本文引用:1]
[18]	Tavladoraki P, Schininà M E, Cecconi F. Maize polyamine oxidase: primary structure from protein and cDNA sequencing. FEBS Lett, 1998, 426: 62-66[本文引用:1]
[19]	Binda C, Coda A, Angelini R, Federico R, Ascenzi P, Mattevi A. A 30 Å long U-shaped catalytic tunnel in the crystal structure of polyamine oxidase. Structure, 1999, 7: 265-276[本文引用:2]
[20]	Cervelli M, Tavladoraki P, Di Agostino S, Angelini R, Federico R, Mariottini P. Isolation and characterization of three polyamine oxidase genes from Zea mays. Physiology, 2000, 38: 667-677[本文引用:1]
[21]	Federico R, Angelini R. Occurrence of diamine oxidase in the apoplast of pea epicotyls. Planta, 1986, 167: 300-302[本文引用:1]
[22]	Laurenzi M, Rea G, Federico R, Tavladoraki P, Angelini R. De-etiolation causes a phytochrome-mediated increase of polyamine oxidase expression in outer tissues of the maize mesocotyl: a role in the photomodulation of growth and cell wall differentiation. Planta, 1999, 208: 146-154[本文引用:2]
[23]	Cona A, Cenci F, Cervelli M, Federico R, Mariottini P, Moreno S, Angelini R. Polyamine oxidase, a hydrogen peroxide-producing enzyme, is up-regulated by light and down-regulated by auxin in the outer tissues of the maize mesocotyl. Plant Physiol, 2003, 131: 803-813[本文引用:3]
[24]	汪天, 郭世荣, 刘俊, 高洪波. 多胺氧化酶检测方法的改进及其在低氧水培黄瓜根系中的应用. 植物生理学通讯, 2004, 40: 358-360 Wang T, Guo S R, Liu J, Gao H B. An improved method for measuring polyamine oxidase and its application to the study of cucumber root under hypoxic stress. Plant Physiol Commun, 2004, 40: 358-360 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[25]	Brennan T, Frenkel C. Involvement of hydrogen peroxide in the regulation of senescence in pear. Plant Physiol, 1977, 59: 411-416[本文引用:1]
[26]	Orozco-Cardenas M, Ryan C A. Hydrogen peroxide is generated systemically in plant leaves by wounding and systemin via the octadecanoid. Proc Natl Acad Sci USA, 1999, 96: 6553-6557[本文引用:1]
[27]	张志良, 瞿伟菁. 植物生理学实验指导. 北京, 高等教育出版社, 2003. pp 123-124 Zhang Z L, Qu W J. Plant Physiology Experiment. Beijing: Higher Education Press, 2003. pp 123-124[本文引用:1]
[28]	Syros T. Activity and isoforms of peroxidase, lignin and anatomy, during adventitious rooting cuttings of Ebenus cretica L. J Plant Physiol, 2004, 161: 69-77[本文引用:1]
[29]	Tanaka K, Nakamura Y, Asami T, Yoshida S, Matsuo T, Okamoto S. Physiological roles of brassinosteroids in early growth of Arabidopsis: brassinosteroids have a synergistic relationship with gibberellin as well as auxin in light-grown hypocotyl elongation. J Plant Growth Regul, 2003, 22: 259-271[本文引用:1]
[30]	苏国兴, 刘友良. 高等植物体内的多胺分解代谢及其主要产物的生理作用. 植物学通报, 2005, 22: 408-418 Su G X, Liu Y L. Function of polyamine catabolism and its main catabolic products in higher plants. Chin Bull Bot, 2005, 22: 408-418 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[31]	Karpinska B, Karlsson M, Schinkel H, Streller S, Suss K H, Melzer M, Wingsle G. A novel superoxide dismutase with a high isoelectric point in higher plants expression, regulation, and protein localization. Plant Physiol, 2001, 126: 1668-1677[本文引用:2]
[32]	王艺, 韦小丽. 不同光照对植物生长、生理生化和形态结构影响的研究进展. 山地农业生物学报, 2010, 29: 353-359 Wang Y, Wei X L. Advance on the effects of different light environments on growth, physiological biochemistry and morphostructure of plant. J Mountain Agric & Biol, 2010, 29: 353-359 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[33]	杜成凤, 刘天学, 蒋寒涛, 李潮海. 弱光胁迫及光恢复对玉米幼苗活性氧代谢的影响. 核农学报, 2011, 25: 570-575 Du C F, Liu T X, Jiang H T, Li C H. Effects of low light stress and light recovery on reactive oxygen metabolism of maize seedlings. J Nuclear Agric Sci, 2011, 25: 570-575 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[34]	苏国兴. 多胺分解代谢在大豆生长发育和耐盐生理中的作用. 南京农业大学博士学位论文, 江苏南京, 2006 Su G X. The Roles of Polyamine Catabolism in Development and Salt Tolerance of Soybean Seedlings. PhD Dissertation of Nanjing Agricultural University, Nanjing, China, 2006 (in Chinese with English abstract)[本文引用:1]
[35]	Hohl M, Greiner H, Schopfer P. The cryptic-growth response of maize coleoptiles and its relationship to H2O2-dependent cell wall stiffening. Physiol Plant, 1995, 94: 491-498[本文引用:2]
[36]	Zhao G W, Wang J H. Effect of gibberellin and uniconazole on mesocotyl elongation of dark-grown maize under different seeding depths. Plant Prod, 2008, 11: 423-429[本文引用:1]
[37]	Rea G, Lurenzi M, Ranquilli E, D’Ovidio R, Federico R, Angelini R. Developmentally and wound-regulated expression of the gene encoding a cell wall copper amine oxidase in chickpea seedlings. FEBS Lett, 1998, 437: 177-182[本文引用:1]
[38]	Schopfer P. Hydrogen peroxide-mediated cell-wall stiffening in vitro in maize coleoptiles. Planta, 1996, 199: 43-49[本文引用:1]
[39]	Sebela M, Radova A, Angelini R, Tavladoraki P, Frebort I I, Pec P. FAD-containing polyamine oxidases: a timely challenge for researchers in biochemistry and physiology of plants. Plant Sci, 2001, 160: 197-207[本文引用:1]