删除或更新信息,请邮件至freekaoyan#163.com(#换成@)

利用激光扫描共聚焦显微镜研究叶绿体自发荧光

本站小编 Free考研考试/2020-04-15

冯倩倩 1,2 , 王文娟 1,3 , 李海冬 1,2 , 潘勋 1,2
1. 清华大学 生命科学学院, 北京 100084;
2. 清华大学 生物医学测试中心, 北京 100084;
3. 清华大学 蛋白质研究技术中心, 北京 100084

收稿日期:2016-11-14
作者简介:冯倩倩(1987-), 女, 工程师
通信作者:潘勋, 研究员, E-mail:panx@biomed.tsinghua.edu.cn

摘要:该文利用激光扫描共聚焦显微镜研究烟草叶片叶绿体自发荧光,为叶绿体研究提供理论和实验依据。首先,利用不同波长激发光的光谱扫描功能分别激发烟草叶片叶绿体,得到叶绿体自发荧光光谱;其次,利用不同激发光激发烟草叶片叶绿体,获取叶绿体自发荧光图像,并对荧光强度进行定量分析比较;最后,利用488 nm激发光漂白烟草叶片叶绿体,观察自发荧光的稳定性。实验结果显示:488 nm激光对叶绿体的激发效率最高,561 nm激光的激发效率最低;发射光谱集中在大于637 nm的波段,峰值在681 nm处;且叶绿体自发荧光非常稳定。激光扫描共聚焦显微镜能够准确研究叶绿体自发荧光,对研究植物组织成像提供重要帮助,也对叶绿体基因工程研究有深远影响。
关键词:激光扫描共聚焦显微镜叶绿体自发荧光光谱扫描
Autofluorescence of chloroplasts measured by a laser scanning confocal microscope
FENG Qianqian1,2, WANG Wenjuan1,3, LI Haidong1,2, PAN Xun1,2
1.School of Life Sciences, Tsinghua University, Beijing 100084, China;
2.Center of Biomedical Analysis, Tsinghua University, Beijing 100084, China;
3.Technology Center for Protein Sciences, Tsinghua University, Beijing 100084, China


Abstract: The autofluorescence of nicotiana benthamiana chloroplasts was studied using a laser scanning confocal microscope. The chloroplast autofluorescence was obtained by spectral scanning with various excitation wavelengths. Then, chloroplast autofluorescence images were obtained using laser scanning confocal microscopy with various excitation wavelengths with intensity quantification. Finally, nicotiana benthamiana chloroplasts were illuminated with 488 nm light to test the autofluorescence stability. 488 nm light has the highest excitation efficiency for chloroplast autofluorescence, while 561 nm light has the lowest excitation efficiency. The autofluorescence chloroplast emission spectrum starts from 637 nm and peaks at 681 nm. The measurements show that the chloroplast autofluorescence is very stable and that laser scanning confocal microscopy can accurately measure chloroplasts autofluorescence. This work will facilitate improved plant tissue imaging chloroplast genetic engineering research.
Key words: laser scanning confocal microscopychloroplastautofluorescencespectral imaging
激光扫描共聚焦显微镜(laser scanning confocal microscopy,LSCM)是20世纪80年代中期发展起来的细胞生物医学分析仪器[1-2],它在荧光显微镜成像基础上加装了激光扫描装置,利用计算机进行图像处理,使用紫外光或可见光激发荧光探针,得到细胞或组织内部微细结构的荧光图像,是分子细胞生物学研究领域中的新工具。激光扫描共聚焦显微镜可以对样品进行断层扫描和成像,进行无损伤观察和分析细胞的三维空间结构[3-4];可以同时定位不同的组分,对细胞内的物质和信号定量分析;可以借助高强度激光淬灭某一区域的荧光分子,计算周围非淬灭分子向受照区域扩散的速率等[5]
目前,激光扫描共聚焦显微技术已广泛用于细胞形态观察、立体结构重组、动态变化过程等研究,并提供定性图像分析、定量荧光测定等实用研究手段,结合其他相关生物技术,在形态学、生理学、免疫学、遗传学等分子细胞生物学领域得到广泛应用[6-9];除此之外,由于激光扫描共聚焦显微镜的特殊性能,其在工业检测领域[10-11]也有着不可替代的应用。
叶绿体是植物细胞和真核藻类执行光合作用的重要细胞器,除了进行光合作用外,还参与氨基酸、脂肪酸、植物生长物质、核苷酸、维生素以及次生代谢产物的合成[12]。叶绿体具有自发荧光和吸收荧光染料发出次生荧光的性能,因此在相关研究中通常采用激光扫描共聚焦显微镜观察叶绿体的荧光信号,但采用激光扫描共聚焦显微镜光谱扫描(λ扫描)功能系统观察叶绿体荧光光谱的研究较少。本文利用激光扫描共聚焦显微镜的λ扫描功能检测叶绿体的荧光光谱,获取不同激发波长对应的荧光发射谱,准确获得其荧光图像,不仅对叶绿体研究提供理论和实验依据,同时还对植物组织成像研究提供重要帮助。
1 材料与方法1.1 实验材料本生烟(Nicotiana benthamiana),由清华大学植物培养平台种植,培养条件为28 ℃、16 h光照/22 ℃、8 h黑暗,光通量密度20 klm/m2,湿度约60%,色温6 500 K。
1.2 实验样品制作取新鲜烟草叶片组织置于载玻片上,滴上蒸馏水做成临时封片,立即在激光扫描共聚焦显微镜下观察烟草叶片组织的上表皮并拍照。
1.3 实验仪器所用显微镜为Zeiss LSM780正置激光扫描共聚焦显微镜,共聚焦系统由Zen black软件控制;用于图像采集的显微镜物镜为Plan-Apochromat 20×物镜,数值孔径为0.8;显微镜配有电动载物台,最大行程130 mm×85 mm;激光器包括405 nm半导体激光器(30 mW)、458/488/514 nm氩离子激光器(35 mW),561 nm固体激光器(20 mW),594 nm氦氖激光器(2 mW),633 nm氦氖激光器(5 mW);共聚焦显微镜配有32通道GaAsP检测器用于光谱检测。
1.4 叶绿体自发荧光光谱扫描及数据分析烟草叶片制片后置于Zeiss LSM780正置激光扫描共聚焦显微镜的载物台上,调焦选择叶绿体自发荧光最亮的扫描层面。λ扫描分析采用405、458、488、514、561、594、633 nm波长激发光激发样品和32通道的GaAsP检测器成像。发射光接收范围均设定为411~695 nm,针孔大小(pinhole)为1 AiryUnit。扫描分辨率(frame size)为1 024×1 024;扫描速度(speed)为3.15 μs/pixel;扫描平均次数(averaging number)为2;色阶(bit depth)为12;放大倍数(zoom)为1.0,接收的带宽(band width)为8.9 nm。每根激发光采集3幅烟草叶片的荧光光谱,采用Zeiss Zen软件分析选定区域的荧光光谱,获取其相应发射光谱峰值。
1.5 叶绿体自发荧光图像获取基于激光扫描共聚焦显微镜λ扫描分析的结果,将叶绿体自发成像的发射光收集范围设定在637~758 nm。不同激发光在物镜末端激发光功率统一设定为0.05 mW,物镜末端的激光功率采用Gigahertz-optik PT9610光度计测量。共聚焦成像采用Ch2检测通道的PMT检测器接收,检测器电压(gain)设为600,手动调节Z轴位置至清晰的焦平面,扫描获取二维平面图像。条件同节1.4,每根激发光重复采集10幅烟草叶片的荧光图像,采用Zen软件分析某50个区域的平均荧光强度。其具体激光功率设定如表 1所示。
表 1 激光扫描共聚焦显微镜参数设定
参数 参数值
激光波长/nm 405 458 488 514 561 594 633
激发光二向色镜(MBS) 405 458 488 458/514 458/561 488/594 488/561/633
物镜出口激光功率/mW 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05
软件设定功率/% 2 19 3 5.2 1.4 14 8


表选项






1.6 叶绿体抗漂白自发荧光图像获取利用激光扫描共聚焦显微镜高强度激光照射样品某一特定区域使荧光分子淬灭的特性,来检测烟草叶绿体自发荧光的稳定性。采用20×物镜端激光功率为0.05 mW的488 nm激光获取图像,使用100% 488 nm激光对样品连续重复漂白30次(320 s),边漂白边获取图像,重复采集3次,采用Zen软件分析特定区域的平均荧光强度。
2 结果与分析2.1 烟草叶片叶绿体自发荧光的荧光光谱分别采用405、458、488、514、561、594、633 nm波长激光对烟草叶片组织进行λ扫描,采用Zen软件分析荧光光谱。如图 1所示,不同激发波长下叶绿体自发荧光发射光谱集中在大于637 nm的波段,峰值均在681 nm处。
图 1 不同波长激光下烟草叶片叶绿体自发荧光的荧光光谱
图选项





2.2 烟草叶片叶绿体自发荧光图像用20×物镜端激光功率为0.05 mw的405、458、488、514、561、594、633 nm波长激光分别激发烟草叶片组织,荧光接收波长范围为637~758 nm,可以得到清晰的共聚焦烟草叶片叶绿体自发荧光图像(见图 2)。图像的明暗程度反应了激发光对叶绿体自发荧光的激发效率,图像亮度越高说明激发光对叶绿体自发荧光的激发效率越高。采用Zen软件对图 2中的图像进行处理,得到叶绿体自发荧光的平均荧光强度(见图 3)。可以看出,在高亮度图像中(激光波长分别为405、458、488、633 nm),488 nm激光的激发效率最高,而在低亮度图像中(激发光波长分别为514、561、594 nm),561 nm激发光的激发效率最低。
图 2 烟草叶片叶绿体自发荧光图像,激光功率0.05 mW,接收波长637~758 nm
图选项





图 3 不同激光波长下烟草叶片叶绿体自发荧光的平均荧光强度
图选项





2.3 激光扫描共聚焦显微镜漂白功能检测烟草叶片叶绿体自发荧光稳定性用20×物镜端激光功率为0.05 mW的488 nm激光采集叶绿体自发荧光图像,100% 488 nm功率激发光重复漂白样品30次(320 s),得到烟草叶片叶绿体自发荧光淬灭情况(见图 4)。在30次重复漂白实验中,叶绿体的自发荧光强度几乎没有变化,这表明叶绿体自发荧光非常稳定,不容易被漂白。
图 4 烟草叶片叶绿体自发荧光强度变化
图选项





3 讨论荧光光谱法是研究生物样本性质和功能的一个重要方法[13-14]。随着生命学科的发展,获取样本荧光光谱、准确采集样本的荧光图像在生物学研究中越来越重要。激光扫描共聚焦显微镜利用激光作为光源,采用共轭聚焦原理和装置,避免了衍射光和散射光的干扰,可获得高清晰度的荧光光谱图像[15-17]
叶绿体作为执行光合作用的重要细胞器,是细胞生物学等学科的重要研究对象,也是实验室常用的观察对象[18]。如刘向东[19]研究了在双光子激光(800 nm)连续扫描30s条件下观察拟南芥叶片叶绿体的运动轨迹;崔永兰等[20]在研究拟南芥基因编码蛋白的叶绿体定位工作中,采用488 nm激光激发样品,同时检测绿色荧光蛋白发射光与叶绿体自发荧光等,但均没有系统研究叶绿体自发荧光的激发效率和发射光谱。
本生烟具有生长速度快、生命周期短的优点,其叶片结构清楚,制成切片容易,很适合显微镜观察。本研究通过激光扫描共聚焦显微镜λ扫描检测叶绿体的自发荧光光谱,系统地研究了叶绿体自发荧光的激发效率和发射光谱,为有关叶绿体的荧光光谱研究提供理论和实据,具有一定的科学价值和社会经济效益。

参考文献
[1] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->White Amp J G, Amos W B. Confocal microscopy comes of age[J]. Nature, 1987, 328(6126): 183–184. DOI:10.1038/328183a0
[2] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->White J G, Amos W B, Fordham M. An evaluation of confocal versus conventional imaging of biological structures by fluorescence light microscopy[J]. Journal of Cell Biology, 1987, 105(1): 41–48. DOI:10.1083/jcb.105.1.41
[3] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Turillazzi E, Karch S B, Neri M, et al. Confocal laser scanning microscopy:Using new technology to answer old questions in forensic investigations[J]. Deutsche Zeitschrift Für Die Gesamte Gerichtliche Medizin, 2008, 122(2): 173–177.
[4] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Wade M H. Fluorescence quantifi cati on in living cells[J]. Biomed Tech, 1992, 87: 43–48.
[5] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->周涛, 杨怡, 张德添, 等. 激光扫描共聚焦显微镜及其在生物医学中的应用[J]. 军事医学科学院院刊, 2002, 1: 69–73.ZHOU Tao, YANG Yi, ZHANG Detian, et al. Laser scanning confocal microscope and its applications in biomedicine[J]. Bulletin of The Academy of Military Medical Sciences, 2002, 1: 69–73. DOI:10.3969/j.issn.1674-9960.2002.01.021(in Chinese)
[6] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Hong R. Observation of rice embryo sac development with confocal laser scanning microscopy[J]. Acta Botanica Sinica, 1998, 40(9): 786–789.
[7] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Wang D, Wang X, Zhang W. Revealing the F-actin networks in interphase nuclei of garlic clove cells by confocal fluorescence microscopy[J]. Acta Botanica Sinica, 2000, 42(11): 1167–1171.
[8] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Lamprecht A, Sch?fer U F, Lehr C M. Characterization of microcapsules by confocal laser scanning microscopy:Structure, capsule wall composition and encapsulation rate[J]. European Journal of Pharmaceutics & Biopharmaceutics, 2000, 49(1): 1–9.
[9] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Kubinova L, Janacek J, Karen P, et al. Confocal stereology and image analysis:Methods for estimating geometrical characteristics of cells and tissues from three-dimensional confocal images[J]. Physiological Research, 2004, 53(Suppl 1): 47–55.
[10] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->邱丽荣, 李佳, 赵维谦, 等. 激光共焦透镜曲率半径测量系统[J]. 光学精密工程, 2013, 21(2): 246–252.QIU Lirong, LI Jia, ZHAO Weiqian, et al. Laser confocal measurement system for curvature radii of lenses[J]. Optics and Precision Engineering, 2013, 21(2): 246–252. (in Chinese)
[11] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->郭俊杰, 邱丽荣, 王允, 等. 用于惯性约束聚变靶丸测量的激光差动共焦传感器[J]. 光学精密工程, 2013, 21(2): 246–252.GUO Junjie, QIU Lirong, WANG Yun, et al. Laser differential cofocal sensor for ICF capsule measurement[J]. Optics and Precision Engineering, 2013, 21(2): 246–252. (in Chinese)
[12] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Leister D. Chloroplast research in the genomic age[J]. Trends in Genetics Tig, 2003, 19(1): 47–56. DOI:10.1016/S0168-9525(02)00003-3
[13] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Kitada M, Ohsaki Y, Matsuda Y, et al. Photodynamic diagnoses of malignant pleural diseases using the autofluorescence imaging system[J]. Annals of Thoracic & Cardiovascular Surgery Official Journal of the Association of Thoracic & Cardiovascular Surgeons of Asia, 2014, 20(5): 378–382.
[14] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Nichols A J, Evans C L. Video-rate scanning confocal microscopy and microendoscopy[J]. J Vis Exp, 2011(56): e3252.
[15] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Hanrahan O, Harris J, Egan C. Advanced microscopy:Laser scanning confocal microscopy[J]. Methods in Molecular Biology, 2011, 784(S 1): 169–80.
[16] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->Collings D A. Optimisation approaches for concurrent transmitted light imaging during confocal microscopy[J]. Plant Methods, 2015, 11(1): 1–11. DOI:10.1186/s13007-015-0043-0
[17] 2及温度对显微活细胞培养系统动态观察活细胞Ca2+变化的影响[J].实验与检验医学, 2012, 30(6):541-545.--> Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->吴伟全, 李元歌, 王思捷, 等. CO2及温度对显微活细胞培养系统动态观察活细胞Ca2+变化的影响[J]. 实验与检验医学, 2012, 30(6): 541–545.WU Weiquan, LI Yuange, WANG Sijie, et al. Effects of CO2 and temperature modulation on dynamic change of Ca2+ of living cells in a microscopic cell culture system[J]. Experimental and Laboratory Medicine, 2012, 30(6): 541–545. (in Chinese)
[18] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->王秀玲, 彭清才. 叶绿体荧光观察方法的探讨[J]. 实验室科学, 2010, 13(4): 76–78.WANG Xiuling, PENG Qingcai. Discussion on the observation of chloroplasts fluorescence[J]. Laboratory Science, 2010, 13(4): 76–78. (in Chinese)
[19] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->刘向东. 利用激光扫描共聚焦显微镜研究植物细胞发育形态学变化[J]. 激光生物学报, 2007, 16(2): 173–178.LIU Xiangdong. A study on the developmental morphology of plant cell by laser scanning confocal Mi croscope[J]. Acta Laser Biology Sinica, 2007, 16(2): 173–178. (in Chinese)
[20] Journal of Central South University(Science and Technology), 41(2):649-654.-->崔永兰, 王鹏程, 杨仲南, 等. 拟南芥未知功能基因At3g61870编码蛋白的叶绿体定位研究[J]. 西北植物学报, 2008, 28(4): 662–666.CUI Yonglan, WANG Pengcheng, YANG Zhongnan, et al. Chloroplast localization of the expressed protein encoded by At3g61870 in arabidopsis thaliana[J]. Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2008, 28(4): 662–666. (in Chinese)

相关话题/激光 图像

  • 领限时大额优惠券,享本站正版考研考试资料!
    大额优惠券
    优惠券领取后72小时内有效,10万种最新考研考试考证类电子打印资料任你选。涵盖全国500余所院校考研专业课、200多种职业资格考试、1100多种经典教材,产品类型包含电子书、题库、全套资料以及视频,无论您是考研复习、考证刷题,还是考前冲刺等,不同类型的产品可满足您学习上的不同需求。 ...
    本站小编 Free壹佰分学习网 2022-09-19
  • 基于边界扩展的图像显著区域检测
    刘杰1,2,3,王生进1,2,31.清华大学电子工程系,北京100084;2.智能技术与系统国家重点实验室,北京100084;3.清华大学信息技术国家实验室,北京100084收稿日期:2016-06-02基金项目:国家“八六三”高技术项目(2012AA011004);国家科技支撑计划项目(2013B ...
    本站小编 Free考研考试 2020-04-15
  • 基于图像处理的净浆扩展度测量工具开发
    聂鼎,安雪晖清华大学,水沙科学与水利水电工程国家重点实验室,北京100084收稿日期:2016-02-02基金项目:国家“八六三”高技术项目(2012AA06A112);国家自然科学基金重点资助项目(51239006);国家科技支撑计划项目(2015BAB07B07);水沙科学与水利水电工程国家重点 ...
    本站小编 Free考研考试 2020-04-15
  • 融合聚类与排序的图像显著区域检测
    刘杰1,2,3,王生进1,2,31.清华大学电子工程系,北京100084;2.智能技术与系统国家重点实验室,北京100084;3.清华信息科学与技术国家实验室,北京100084收稿日期:2016-04-18基金项目:国家“八六三”高技术项目(2012AA011004);国家科技支撑计划项目(2013 ...
    本站小编 Free考研考试 2020-04-15
  • 基于Riemann核Fisher准则的极化SAR图像人造目标检测
    高伟1,殷君君2,杨健11.清华大学电子工程系,北京100084;2.北京科技大学计算机与通信工程学院,北京100083收稿日期:2016-03-10基金项目:国家自然科学基金重大项目(61490693);航空科学基金项目(20132058003)作者简介:高伟(1987-),男,博士研究生通讯作者 ...
    本站小编 Free考研考试 2020-04-15
  • 基于散射成分一致性参数的极化SAR图像分类
    焦智灏1,2,杨健1,叶春茂3,宋建社41.清华大学电子工程系,北京100084;2.工业和信息化部信息中心,北京100846;3.北京无线电测量研究所,北京100854;4.第二炮兵工程大学,西安710025收稿日期:2012-08-13基金项目:国家自然科学基金资助项目(41171317,611 ...
    本站小编 Free考研考试 2020-04-15
  • 研究生课程高级数字图像处理的建设方案
    研究生课程高级数字图像处理的建设方案 张林;沈莹; 1:同济大学软件学院 摘要(Abstract): 分析高级数字图像处理课程的教学内容,提出教学内容要紧密围绕图像处理研究领域的最新研究成果展开,围绕课堂授课内容、实践环节、论文阅读3个方面对这门课程的建设方案进行 ...
    清华大学 辅仁网 2017-07-08
  • 基于Matlab GUI的医学图像处理课程虚拟实验平台设计
    基于Matlab GUI的医学图像处理课程虚拟实验平台设计 郁芸;王锦程;浦祎玮;赵宇; 1:南京医科大学基础医学院 2:南京航空航天大学自动化学院 3:南京医科大学第一临床医学院 摘要(Abstract): 针对医学生工程技术缺乏的状况,分析医学生学习医学图像处理存 ...
    清华大学 辅仁网 2017-07-08
  • 文本图像的倾斜角检测在教学方法改革中的应用
    文本图像的倾斜角检测在教学方法改革中的应用 巨志勇;何晓蕾;王超男; 1:上海理工大学光电信息与计算机工程学院 摘要(Abstract): 为了加强学生对于基础知识的理解和应用,以文本图像的倾斜角检测为例,提出在教学环节中引进一种不同于传统经典倾斜角检测的算法,即 ...
    清华大学 辅仁网 2017-07-08
  • 数字图像处理课程的“微项目”教学模式
    数字图像处理课程的“微项目”教学模式 胡伏原;班建民;程成;王俭;欧扬; 1:苏州科技学院电子信息工程学院 摘要(Abstract): 数字图像处理技术是电子信息类的重要专业课程,文章强调该课程应和实践应用紧密结合,教学改革的内容不能局限于基础,更应注重学生动手能 ...
    清华大学 辅仁网 2017-07-08
  • 面向图像处理的数值分析教学案例设计
    面向图像处理的数值分析教学案例设计 何进荣; 1:西北农林科技大学信息工程学院 摘要(Abstract): 数值分析是一门理论性和实践性较强的数学类课程,对提高学生数值算法设计与分析能力、培养计算思维有十分重要的意义。文章针对信息类专业数值分析课程教学中存在的问题 ...
    清华大学 辅仁网 2017-07-08