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--> --> --> 随着全球气候变暖和江河、湖泊等水体富营养化程度加剧，蓝藻水华现象日益严重[1]。蓝藻暴发会导致水体溶解氧(DO)含量急剧降低、水生生物大量死亡，其在代谢过程中释放的具有极强肝毒性和遗传毒性的藻毒素(MCs)[2]，也会对人类的生命健康造成严重威胁。根据理化性质及适用条件，传统蓝藻水华治理方法可分为物理法、化学法和生物法。物理法可在短期内大幅削减蓝藻密度，但存在二次污染、滤池堵塞及成本较高等不足[3]；化学法灭藻效率高，但难以避免IOMs释放、DBPs产生及出水金属离子含量增加等环境风险[4-5]；生物法操作简单、对环境影响较小，但见效周期长，且易受气候、温度等环境因素影响[6]。因此，如何高效、安全地治理蓝藻水华，已成为国内外****关注和研究的热点。AOPs是一种通过诱发链式反应产生·OH或
1.1. 实验材料
实验藻种为铜绿微囊藻，FACHB526，购自中国科学院水生生物研究所；培养基为BG11培养基[10]；过硫酸氢钾(PMS) 为分析纯，麦克林生化科技有限公司；七水合硫酸亚铁(FeSO4?7H2O)、五水合硫代硫酸钠(Na2S2O3?5H2O)、硫酸(H2SO4)、氢氧化钠(NaOH)、磷酸氢二钠(Na2HPO4)、硝酸钠(NaNO3)、戊二醛、无水乙醇、叔丁醇、甲醇为分析纯，国药集团化学试剂有限公司；磷酸盐(PBS)缓冲液，北京索莱宝科技有限公司。实验用水均为超纯水。1.2. 实验仪器
AR124CN型电子天平，上海奥豪斯仪器有限公司；S400-K型多参数测定仪，上海梅特勒-托利多仪器有限公司；TDZ4-WS型台式低速离心机，湖南湘仪实验室仪器开发有限公司；BXM-75型立式压力蒸汽灭菌器，上海博迅医疗生物仪器股份有限公司；Smart2pure12型超纯水仪，美国赛默飞世尔公司；台式低速离心机，湖南湘仪实验室仪器开发有限公司；UV-8000型紫外可见分光光度计，上海元析仪器有限公司；六联数显磁力搅拌器，宁波市鄞州群安实验仪器有限公司；F-320型荧光分光光度计，天津港东科技股份有限公司；SCIENTZ-18N型冷冻干燥机，宁波新芝生物科技股份有限公司；TOC-VSH型有机碳测定仪，岛津国际贸易有限公司；Zeta电位分析仪，美国布鲁克海文仪器公司；S-3400N型扫描电子显微镜，日本日立公司。1.3. 铜绿微囊藻的藻细胞浓度与OD680的相关性
取对数期的铜绿微囊藻液，利用超纯水依次稀释至原体积的1、1.33、2、4、6、8和10倍，采用血球计数板在400倍双目显微镜下进行藻细胞计数。藻细胞浓度与藻液在680 nm处的光吸收(OD680)有良好的线性关系[11]，如图1所示。藻细胞浓度和藻细胞去除率分别采用式(1)和式(2)计算。
式中：y为藻液在680 nm处的吸光度值；x为藻细胞浓度，106 细胞数·mL?1。
式中：R为藻细胞去除率，%；x0为初始藻细胞浓度，106 细胞数·mL?1；xt为处理不同时刻的藻细胞浓度，106 细胞数·mL?1。
1.4. FeSO4协同PMS去除铜绿微囊藻实验
1)藻液的稀释和储备液的配置。取对数期的铜绿微囊藻液，使用超纯水稀释混匀，藻细胞终浓度为106 细胞数·mL?1，初始OD680为0.144，调节pH至7.5±0.1[12]。称取2.78 g FeSO4?7H2O、1.52 g PMS、2.48 g Na2S2O3?5H2O、1.419 g Na2HPO4和0.849 9 g NaNO3分别溶于超纯水并定容至100 mL，配制成浓度均为0.1 mol·L?1的相应储备液。2)考察FeSO4投加量、pH、HPO42?和
1.5. 分析方法
OD680、UV254和叶绿素a(Chl-a)采用分光光度法测定；溶解性有机碳(DOC)采用有机碳测定仪测定；Zeta电位采用Zeta电位分析仪测定。利用荧光分光光度计对具有荧光特性的藻源性有机质(AOMs)进行表征，仪器参数设置：激发波长(Ex)为220~450 nm，发射波长(Em)为200~500 nm，激发间隔和发射间隔均为5 nm，扫描速度为2 400 nm·min?1，以超纯水为空白样，在数据处理中用以扣除拉曼散射。利用扫描电镜进行藻细胞形态观察，样品处理步骤为：以4 000 r?min?1离心10 min收集铜绿微囊藻细胞；在4 ℃下利用2.5%戊二醛固定藻细胞4 h；利用pH为7.0的PBS缓冲液反复清洗样品3次；分别采用30%、50%、70%、90%和100%的乙醇溶液依次对样品进行脱水处理；利用叔丁醇溶液置换乙醇溶液；在?40 ℃下冷冻干燥12 h后喷金；利用扫描电镜在15.0 kV下拍照。2.1. 铜绿微囊藻的去除效果
1) FeSO4投加量的影响。由图2可知，单独投加PMS时，藻细胞浓度无明显变化，藻细胞去除率仅为3.49%；而投加FeSO4后，随着反应进行，藻细胞去除率与反应时间的关系符合为二级反应动力学模型，藻细胞去除率在前30 min内急剧升高，而后趋于平稳。当FeSO4投加量依次增加为0.025、0.05、0.075、0.1和0.15 mmol·L?1时，藻细胞去除率分别提高至22.64%、55.81%、86.82%、94.66%和95.00%。
有研究[14]表明，带负电荷的AOMs可以提升藻细胞表面的负电性，藻细胞稳定性得以提高。常温下PMS极其稳定，对AOMs及藻细胞氧化效果较差，而投加FeSO4后，藻细胞去除率大幅度上升。这是因为Fe2+催化PMS分解产生了大量的
为分析藻细胞去除过程中氧化、絮凝阶段的贡献率，采用甲醇(MeOH)作为
2)初始pH的影响。当FeSO4和PMS投加量均为0.1 mmol?L?1时，不同pH条件下，藻细胞去除率随时间变化如图3所示。由图3可知，当pH为6.0~10.0时，藻细胞去除率均保持较高水平，随着pH升高，藻细胞去除率呈现缓慢降低的趋势。当pH分别为6.0、7.0、8.0、9.0和10.0时，在反应时间30 min时藻细胞去除率增幅最大，分别为81.12%、79.46%、78.37%、77.52%和74.32%；当反应时间为120 min时，藻细胞去除率趋于稳定，分别为97.37%、95.69%、94.25%、92.48%和89.79%。在碱性条件下，藻细胞去除率有所降低。这是因为：一方面Fe2+与OH?络合生成了Fe(OH)2沉淀，使参与协同反应的Fe2+减少；另一方面，FeSO4-PMS体系中自由基种类主要为
3)无机离子的影响。不同HPO42?浓度下，藻细胞去除率随时间的变化如图4所示。随着HPO42?浓度的升高，藻细胞去除率呈现出连续降低的趋势。当HPO42?浓度为0 mmol?L?1时，藻细胞去除率达到了94.20%；当HPO42?依次增加至0.5、1.0、1.5和2.0 mmol·L?1，藻细胞去除率分别降低至90.02%、85.45%、80.10%和74.64%。这是因为HPO42?是
不同
2.2. 溶解性有机碳(DOC)和UV254的去除效果
UV254反映了AOMs中含不饱和碳键及芳香结构有机物的含量[24]。图6为在不同FeSO4投加量下反应120 min后DOC和UV254的去除效果。随着FeSO4投加量的增加，体系中DOC含量和UV254持续降低。当FeSO4投加量为0.025 mmol·L?1时，DOC含量为6.35 mg·L?1，DOC去除率为11.56%, UV254为0.167，UV254去除率仅为2.01%；继续增加FeSO4投加量分别至0.05、0.075、0.1和0.15 mmol·L?1时，DOC去除率分别为40.56%、47.36%、58.92%和61.00%，UV254去除率分别达到了13.01%、24.15%、40.83%和52.67%。
FeSO4-PMS产生的
2.3. AOMs的变化
荧光光谱技术可以实时鉴别AOMs组成及变化[27]，具有灵敏度高、选择性好等优点。CHEN等[28]将整个荧光光谱划分为5个区域：区域Ⅰ和Ⅱ代表芳香结构的蛋白质，区域Ⅲ代表富里酸类物质，区域Ⅳ代表溶解性微生物代谢类物质，区域Ⅴ代表腐殖酸类物质。在FeSO4和PMS投加量均为0.1 mmol·L?1的条件下，水样经FeSO4-PMS处理前后的三维荧光光谱分别如图7(a)和图7(b)所示。原水以腐殖酸类物质和溶解性微生物代谢类物质为主，同时含有少量的芳香结构的蛋白质。经FeSO4-PMS协同氧化后，各区域荧光强度均出现不同程度降低，其中溶解性微生物代谢类物质和腐殖酸类代谢物质的荧光强度变化最为明显；区域Ⅰ、Ⅱ和Ⅳ荧光强度急剧减弱甚至消失，表明芳香结构的蛋白质类物质和微生物代谢类AOMs极易被去除，因为蛋白质类物质和微生物代谢类物质具有极强的亲水性以及较差的沉降性，极易被强氧化性的
2.4. 不同FeSO4投加量下Zeta电位与藻细胞、Chl-a去除率的变化关系
Zeta电位反映藻细胞表面所带电荷大小，其净值越高，藻细胞间的静电斥力越大，藻细胞越稳定[30]。为进一步探究FeSO4-PMS去除藻细胞的机理，分析了在不同FeSO4投加量下，Zeta电位净值及藻细胞、Chl-a去除率的变化。由图8可知，原藻液含有大量带负电荷的AOMs[31]，Zeta电位净值较高，为28.44 mV。当FeSO4浓度为0~0.1 mmol·L?1时，随着体系中FeSO4投加量的增加，Zeta电位净值持续降低，藻细胞和Chl-a去除率显著提高。当FeSO4投加量依次为0.025、0.05、0.075、0.10 mmol·L?1时，Zeta电位净值分别为22.01、10.57、7.97和0.33 mV，Chl-a去除率分别为29.42%、60.18%、89.05%和94.92%；当继续增加FeSO4投加量为0.15 mmol·L?1时，Zeta电位净值略有升高，为1.29 mV。这是因为：一方面，带负电荷的AOMs被
2.5. FeSO4-PMS协同处理对铜绿微囊藻细胞形态的影响
使用高倍扫描电镜对铜绿微囊藻细胞的表面形态进行了分析。由图9(a)和图9(b)可知，正常的藻细胞为椭球形，形状饱满且通体光滑，尺寸为2.0~3.5 μm；而经FeSO4-PMS协同处理后，藻细胞被致密的絮体包裹、粘结，表面出现少量褶皱，整体结构依旧完整(图9(c)、图9(d))。其原因可能是：一方面
2)碱性环境、HPO42?和
3)当FeSO4浓度为0~0.1 mmol?L?1时，Zeta电位净值和藻细胞、Chl-a去除率呈负相关，藻细胞去除率随Zeta电位净值的降低持续升高。
4)藻细胞高效去除的原因是AOMs组分及藻细胞表面电荷的变化。带负电荷的AMOs被SO4?·和?OH有效降解，同时原位形成的Fe3+中和藻细胞表面的负电荷，导致Zeta电位净值降低，最后通过吸附、网捕作用，藻细胞聚集形成块状的絮体沉降得以去除。
参考文献
