魏娟 长聘教轨副教授

邮箱：wwwjuan@sjtu.edu.cn



个人简历 研究方向 发表论文 科研成果
魏娟博士，博士生导师，上海交通大学药学院生物多糖与糖蛋白类药物分析课题组组长，“上海市海外高层次人才引进计划专家“。回国工作前在美国波士顿大学生物医药质谱中心---全球生物多糖研究最顶尖的平台之一担任研究科学家。迄今发表SCI收录论文22 篇，其中近五年发表第一作者论文7篇，包括多篇化学分析方向最顶尖的杂志Analytical Chemistry和质谱研究的权威期刊Journal of American Society for Mass Spectrometry。数次在美国质谱年会（ASMS）等重要国际学术会议做口头报告，并担任Analytical Chemistry等国际期刊杂志的评审。

工作经历：
2020年11月–今 上海交通大学药学院 长聘教轨副教授、博士生导师
2020年1月–2020年10月 波士顿大学医学院、生物医药质谱中心 研究科学家
2017年2月–2019年12月 波士顿大学医学院、生物医药质谱中心 博士后
2015年12月– 2016年11月 布鲁克科技有限公司 蛋白质组学/生物制药应用科学家
2015年2月– 2015年11月 南洋理工大学结构生物学和生物化学中心 博士后
教育经历:
2011年10月– 2014年12月 英国University of Warwick化学系 博士
The Chancellor International Scholarship （校长国际全额奖学金）
2008年9月– 2011年3月 上海交通大学 药学院 硕士
上海交通大学优秀毕业生
2004年9月– 2008年6月 武汉大学 药学院 学士
武汉大学优秀毕业生


多糖是自然界丰度最高的重要组份，超过一半的蛋白质都有糖基化修饰。血液中超过90%的蛋白质以及抗体等多种生物药物都是糖蛋白。糖型结构和糖基化修饰的信息与生理功能密切相关，近几年相关的研究进展迅速，更是当前生物制药领域研究的热点和难点。由于种类和结构极其复杂，生物多糖和蛋白质糖基化修饰的解析仍然是生物分析中最有挑战的难题之一。本课题组的主要研究兴趣：
1.针对生物多糖和蛋白质糖基化修饰分析的现有问题，开发从样品处理到分离检测的完整流程，推动复杂多糖混合物和糖肽的高灵敏准确分析。
2.搭建深度糖组学和糖蛋白组学方法用于提升生物多糖或糖蛋白的生物标记物研究。为多组学交叉学科研究提供最前沿的糖基化修饰解决方案。
3.结合抗体等糖蛋白药物糖基化解析的需求，建立定性定量方法和系统的研究流程。
欢迎对探索生物多糖结构和糖蛋白药物分析感兴趣的学生和研究人员加入！本实验室长期招聘：硕士，博士，博士后和科研人员！联系邮箱：www-juan@sjtu.edu.cn


1.Wei, J., Tang Y, Ridgeway, M. E., Park, M. A., Costello, C. E., Lin, C. Accurate Identification of Isomeric Glycans by Trapped Ion Mobility Spectrometry-Electronic Excitation Dissociation Tandem Mass Spectrometry Analytical Chemistry, 2020, 92 (19):13211-13220 (JCR:1区)
2.Wei J., Tang Y., Zaia J., Castello C, Lin, C. Variation of Glycosylation Patterns Revealed by PGC-LC- and Gated-TIMS-EED Tandem Mass Spectrometry. FASEB J, 2020, Doi:10.1096/fasebj.2020.34.s1.08858 (JCR:2区)
3.Wei J., Tang Y., Bai, Y., Zaia, J., Costello, C. E., Lin, C. Toward Automatic and Comprehensive Glycan Characterization by Online PGC-LC-EED MS/MS. Analytical Chemistry, 2020, 92(1):782-791 (JCR:1区)
4.Lam, Y .P., Wootton, C. A., Hands-Portman, I., Wei, J., Chiu, C. K., Romero-Canelon, I., Lermyte, F., Barrow, M. P., and O’Connor, P. B. Determination of the Aggregate Binding Site of Amyloid Protofibrils Using Electron Capture Dissociation Tandem Mass Spectrometry. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 2020, 5;31(2):267-276 (JCR:2区)
5.Wei, J., Wu, J., Tang, Y., Ridgeway, M. E., Park, M. A., Costello, C. E., Zaia, J., Lin, C. Characterization and Quantification of Highly Sulfated Glycosaminoglycan Isomers by Gated-TIMS NETD MS/MS. Analytical Chemistry, 2019, 91(4), 2994-3001 (JCR:1区)
6.Wu, J., Wei, J., Hogan, J.D., Boons, G.J., Lin, C. and Zaia, J. Sequencing Heparan Sulfate Using HILIC LC-NETD-MS/MS. Analytical Chemistry, 2019, 91(18): 11738-11746 (JCR:1区)
7.Lam, Y.P., Wootton, C.A., Hands-Portman, I., Wei, J., Chiu, C.K., Romero-Canelon, I., Lermyte, F., Barrow, M.P. and O’Connor, P.B. Does Deamidation of Islet Amyloid Polypeptide Accelerate Amyloid Fibril Formation? Chemical Communications, 2018, 54(98), 13853-13856 (JCR:1区)
8.Tang, Y.,? Wei, J.,? Costello, C. E., Lin, C. Characterization of Isomeric Glycans by Reversed Phase Liquid Chromatography-Electronic Excitation Dissociation Tandem Mass Spectrometry. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 2018, 29(6):1295–1307. (共同第一作者) (JCR:2区)
9.Wu, J., Wei, J., Hogan, J. D., Chopra, P., Joshi, A., Lu, W., Zaia, J. Negative Electron Transfer Dissociation Sequencing of 3-O-Sulfation-Containing Heparan Sulfate Oligosaccharides. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 2018, 29: 1262-1272 (JCR:2区)
10.Khatri, K., Pu, Y., Klein, J. A., Wei, J., Costello, C. E., Lin, C., Zaia, J. Comparison of Collisional and Electron-based Dissociation Modes for Middle-down Analysis of Multiply Glycosylated Peptides. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 2018, 29: 1075-1083 (JCR:2区)
11.Maqueda A. S., Xavier G-P, Wei J., Sze S. K. In-depth Analysis of Glutamine Deamidation by LERLIC-MS/MS in Shotgun Proteomics. Analytical Chemistry, 2016, 88(21): 10573-10582
12.Wei J., Antzutkin O. N., Barrow M. P., Dupree R., Brown S. P., O'Connor P. B. Amyloid Hydrogen Bonding Polymorphism Evaluated by 15N{17O}REAPDOR Solid-state NMR and Ultra-high Resolution FTICR-MS. Biochemistry, 2016, 55(14): 2065-2068
13.van Agthoven M. A., Wootton C. A., Chiron L., Coutouly M. A., Soulby A., Wei J., Barrow M. P., Delsuc M-A, Christian-Rolando C., O’Connor P. B. Two-Dimensional Mass Spectrometry for Proteomics, a Comparative Study with Cytochrome C. Analytical Chemistry, 2016, 88(8): 4409-4417
14.Wei J, O'Connor P. B. Extensive Fragmentation of Pheophytin-a by Infrared Multiphoton Dissociation Tandem Mass Spectrometry. Rapid Communications in Mass Spectrometry, 2015, 29(24): 2411-2418
15.van Agthoven M. A., Barrow M. P., Chiron L., Coutouly M. Wootton C. A., Wei J., A., Soulby A., Delsuc M-A, Christian-Rolando C., O’Connor P. B Differentiating Fragmentation Pathways of Cholesterol by Two-Dimensional Fourier Transform Ion Cyclotron Resonance Mass Spectrometry. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 2015, 25: 2105-2114
16.Wei J., Bristow A. W. T., O'Connor P. B. The Competitive Influence of Li+, Na+, K+, Ag+, and H+ on the Fragmentation of a PEGylated Polymeric Excipient. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 2015, 26: 166-173
17.Wei J., Bristow A. W. T., McBride E., Kilgour D. P. A., O'Connor P. B. d-α-tocopheryl Polyethylene Glycol 1000 Succinate: A View from FTICR MS and Tandem MS. Analytical Chemistry, 2014, 86(3):1567-1574
18.Wei J., Li H. L., Barrow M., O’Connor P. B. Structural Characterization of Chlorophyll-a by High Resolution Tandem Mass Spectrometry. Journal of the American Society for Mass Spectrometry, 2013, 24: 753-760
19.Wei J., Gu X., Wang Y., Wu Y, Yan C. Two-dimensional Separation System by on-line Hyphenation of Capillary Isoelectric Focusing with Pressurized Capillary Electrochromatography for Peptide and Protein Mapping. Electrophoresis, 2011, 32(2):230-237
20.Wei J., Gu X., Wang Y., Yan C. Off-line two-dimensional separation system cIEF/pCEC for peptides separation. Chinese Journal of Analytical Chemistry, 2011, 39(2):45-51
21.Mei J., Tian Y. P., He W., Xiao Y. X., Wei J., Feng Y. Q. Preparation approaches of the coated capillaries with liposomes in capillary Electrophoresis. Journal of Chromatography A, 2010, 1217:6979-6986
22.Wu Y., Zhang X. H., Wei J., Xue Y., Bahatibieke M., Wang Y., Yan C. Recent advances and applications of CEC and pCEC. Chinese Journal of Chromatography, 2009, 27(5):609-620


1．开拓性的利用Omnitrap将基于电子激发裂解的多糖结构研究方法应用于离子轨道阱平台，在提高复杂多糖分析灵敏度的同时，结合导向性的多级串联质谱方法进一步推动深度多糖结构解析。（2020 ASMS, 大会口头报告）
2．首次在不依赖数据库的情况下，实现对复杂多糖混合物组份拓扑结构的自动解析。从色谱方法上的改进，到糖链链接的准确定性、 GlycoDenovo软件的辅助解析、以及对同分异构体糖型的相对定量，有效地填补了目前分析方法在生物多糖解析方面缺失的信息、推进蛋白质糖基化修饰和糖组学研究。（Anal. Chem. 2020, 92(1):782-791; J. Am. Soc. Mass Spectrom. 2018, 29(6):1295–1307）
3．开发色谱和离子淌度的分离新方法，结合碰撞诱导裂解和基于电子碎裂的串联质谱模式，对N-/O-糖、糖胺聚糖和糖肽等实现高分辨率分离和精细结构解析。（Anal. Chem. 2020, 92 (19):13211-13220；Anal. Chem. 2019, 91(4): 2994-3001; Anal. Chem. 2019, 91(18): 11738-11746等）
4．开发新型bottom-up蛋白质组学方法、top-down蛋白质分析流程、以及非标定量的糖蛋白质组学方法等，分别用于蛋白质脱酰胺作用、磷酸化修饰、糖基化修饰等翻译后修饰的研究，并应用于人体组织或血液中的生物标记物研究。（Anal. Chem. 2016, 88(21): 10573-10582；J. Am. Soc. Mass Spectrom.2018, 29: 1075-1083；Anal. Chem. 2016, 88(8): 4409-4417）
5．Amyloid-β 多肽和纤维的同位素精细结构分析以及纤维化过程研究，用于解析淀粉样纤维化的分子间相互作用和纤维化机理。（Biochemistry 2016, 55(14): 2065-2068；Chem. Comm. 2018, 54(98), 13853-13856；J. Am. Soc. Mass Spectrom. 2020, 5;31(2):267-276）
6．利用高分辨质谱方法提升药物辅料混合物组成成分的定性定量分析。（AstraZeneca合作项目，Anal. Chem. 2014, 86(3):1567-1574）