沈玲玲, 徐海燕, 侯强川, 赵飞燕, 刘亚华, 王佼, 孙志宏, 张和平
内蒙古农业大学乳品生物技术与工程教育部重点实验室, 农业农村部奶制品加工重点实验室, 内蒙古自治区乳品生物技术与工程重点实验室, 内蒙古呼和浩特 010018
收稿日期:2019-09-05;修回日期:2020-03-01;网络出版日期:2020-03-16
基金项目:国家自然科学基金(31720103911);内蒙古自治区科技重大专项(ZDZX2018018)
*通信作者:张和平, Tel:+86-471-4319940;E-mail:hepingdd@vip.sina.com.
摘要:[目的] 以海南地区征集的29名健康青年志愿者为研究对象,分析该地区青年人肠道菌群多样性,并探究益生菌Lactobacillus paracasei subsp.paracasei Zhang(LCZ)对其肠道菌群的影响。[方法] 29名健康青年志愿者每日补充2 g益生菌LCZ(0.5×1010 CFU/g),为期14 d。采集摄入益生菌LCZ第0、14、28天的志愿者粪便样品,采用PacBio SMRT测序技术基于16S rRNA基因全长测序分析志愿者粪便微生物组成和结构,评估益生菌LCZ对其肠道菌群的影响。[结果] 在门水平上,Firmicutes(54.46%)和Bacteroidetes(33.79%)在志愿者粪便微生物中含量最高;在属水平上,Bacteroides(23.13%)的相对含量最高;在种水平上,优势菌种为Faecalibacterium prausnitzii(9.72%)、Eubacterium rectale(7.00%)和Prevotella copri(6.07%)等。摄入益生菌LCZ 14 d后,肠道中的优势菌属变化不显著,低丰度菌属如Oscillospira和Parabacteroides等显著增加,Aeromonas和Fusicatenibacter等显著减少(P < 0.05)。此外根据志愿者粪便中Lactobacillus含量的变化情况,将所有志愿者分为两组。其中一组志愿者在摄入LCZ后粪便中Lactobacillus菌属相对含量显著增加,同时该组志愿者肠道中其他菌种如Butyricicoccus pullicaecorum、Lactococcus raffinolactis和Parabacteroides distasoni亦显著增加;而另一组志愿者,Lactobacillus及上述菌种均未发生显著变化。[结论] 连续2周摄入益生菌LCZ对志愿者肠道菌群中优势菌属的相对丰度影响不显著,但对低丰度菌属的相对丰度影响显著。
关键词:海南地区青年人群肠道菌群细菌多样性Lactobacillus paracasei subsp.paracasei Zhang
Effect of probiotics Lactobacillus paracasei subsp. paracasei Zhang on gut microbiota composition of young people living in Hainan
Lingling Shen, Haiyan Xu, Qiangchuan Hou, Feiyan Zhao, Yahua Liu, Jiao Wang, Zhihong Sun, Heping Zhang
Key Laboratory of Dairy Biotechnology and Engineering, Ministry of Education, Key Laboratory of Dairy Products Processing, Ministry of Agriculture, Inner Mongolia Key Laboratory of Dairy Biotechnology and Engineering, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, Inner Mongolia Autonomous Region, China
Received: 5 September 2019; Revised: 1 March 2020; Published online: 16 March 2020
*Corresponding author: Heping Zhang, Tel:+86-471-4319940;E-mail:hepingdd@vip.sina.com.
Foundation item: Supported by the National Natural Science Foundation of China (31720103911) and by the Inner Mongolia Autonomous Region Major Science and Technology Project (ZDZX2018018)
Abstract: [Objective] Twenty-nine healthy young volunteers from Hainan were selected as the research objects to analyze the diversity of gut microbes and to explore the effects of Lactobacillus paracasei subsp. paracasei Zhang on the fecal microbiota. [Methods] Volunteers were supplemented with 1×1010 CFU LCZ powders per day for 14 days. Fecal samples were collected on 0, 14 and 28 days. Microbial composition and structure of fecal were analyzed by PacBio SMRT. [Results] Firmicutes and Bacteroidetes were the most abundant phylum. Meanwhile, Bacteroides were the predominant genus. At the species level, the dominant bacteria species were Faecalibacterium prausnitzii, Eubacterium rectale and Prevotella copri. After taking LCZ for 14 days, the dominant bacteria did not change significantly, while low-abundance bacteria such as Oscillospira and Parabacteroides were significantly increased (P < 0.05). In addition, volunteers were divided into two groups according to the changes of Lactobacillus. Butyricicoccus pullicaecorum, Lactococcus raffinolactis and Parabacteroides distasoni were significantly increased in samples of those with significantly increased content of Lactobacillus. Inversely, volunteers with no significant changes in the Lactobacillus content in their gut did not find similar changes. [Conclusion] Continuous consumption of probiotics LCZ for 2 weeks had no significant effect on the relative abundance of dominant bacteria in fecal microbiota of volunteers, while the low-abundance bacteria change significantly.
Keywords: Young people in Hainan provincegut microbiotabacterial diversityLactobacillus paracasei subsp. paracasei Zhang
人体肠道中栖息着种类繁多、数量庞大的微生物[1],肠道菌群编码的基因组被视为人体的“第二基因组”。近年来研究发现肠道菌群结构受宿主自身因素和外界环境影响[2],其中膳食被认为是影响肠道菌群的重要因素之一,能够在24 h内改变肠道菌群结构[3],并且不同的膳食结构会对肠道菌群结构产生不同的影响[4]。此外,地理环境对肠道菌群的影响同样不容忽视[5]。海南省地处热带边缘,四面环海,果蔬和水产资源丰富。海南独特的饮食和地理环境,可能使得该地人群的肠道菌群不同于其他地区。因此对该地区青年人肠道菌群多样性进行研究是十分必要的。
目前使用益生菌补充剂来改变肠道菌群进而促进机体健康是一种常见的方法[6]。Lactobacillus paracasei subsp. paracasei Zhang (LCZ)(注:菌株Lactobacillus paracasei subsp. paracasei Zhang于2002年时鉴定为Lactobacillus casei,此后经过重新与Lactobacillus casei近缘物种进行比对,发现菌株Zhang实际菌种信息为Lactobacillus paracasei subsp. paracasei,但由于该菌株已在中国普通微生物菌种保藏管理中心备案(CGMCC1679),并且已经授权了发明专利,因此,在本实验室的众多研究中一直沿袭了Lactobacillus casei Zhang的菌株名,本研究使用的菌株Lactobacillus paracasei subsp. paracasei Zhang与之前研究中使用的Lactobacillus casei Zhang为同一株菌,特此说明。)是分离自内蒙古地区传统发酵酸马奶中1株性能优异的益生菌[7],具有耐人工胃液[8]、胆盐消化[9]、免疫调节[10]、抗氧化[11]等益生功能。有研究指出益生菌对不同人群肠道菌群的影响不同,如Zhang等[12]分析了摄入LCZ对内蒙古地区青年人肠道菌群的影响,发现LCZ的摄入显著改变了肠道菌群的组成和多样性。而海南地区青年人所处环境及饮食特点均不同于内蒙古地区,Zhang等的研究结果并不能完全适用于海南地区人群。PacBio SMRT测序技术具有高通量、长读取长度及测序时间短等优点,并能在种水平准确获取样品中的菌群组成[13-14]。此外有关益生菌对海南地区青年人肠道菌群的影响鲜有报道,因此本研究在揭示海南地区青年人肠道菌群的特点上,进一步探究LCZ对该地区青年人肠道菌群的具体影响。
1 材料和方法 1.1 试验设计 本研究从海南地区共征集了29名健康志愿者,其中男性10名,女性19名。志愿者年龄为20–24岁,BMI均小于30kg/m2,具体信息详见表 1。所有志愿者身体健康,均没有内分泌失调、糖尿病或其他任何胃肠道疾病,并且在最近的6个月内没有服用过抗生素类药物。所有志愿者均自愿参与本试验,并签署了知情同意书,且本试验申请了内蒙古农业大学伦理审查。在志愿者获得知情同意书后,通过食物调查问卷记录志愿者长期饮食,并参照《食物成分表》[15]换算成各类营养素的量,详细信息见表 2。所有志愿者保持正常饮食及睡眠,每天午饭后摄入2 g益生菌LCZ (0.5×1010 CFU/g),持续14 d,采集摄入益生菌LCZ第0、14、28天3个时间点的粪便样品,并在益生菌摄入期间,记录饮酒和服药等特殊情况。
表 1. 志愿者信息 Table 1. The information of volunteers
Sample | Gender | Age | Stature/cm | Body weight/kg | BMI |
HN1 | male | 20 | 171 | 72 | 24.62 |
HN2 | male | 20 | 168 | 65 | 23.03 |
HN3 | male | 21 | 165 | 61 | 22.41 |
HN4 | male | 20 | 170 | 75 | 25.95 |
HN5 | male | 20 | 162 | 65 | 24.77 |
HN6 | male | 21 | 166 | 61 | 22.14 |
HN7 | male | 21 | 170 | 62 | 21.45 |
HN8 | male | 23 | 173 | 83 | 27.73 |
HN9 | male | 21 | 182 | 95 | 28.68 |
HN10 | female | 20 | 161 | 56 | 21.60 |
HN11 | female | 21 | 158 | 52 | 20.83 |
HN12 | female | 20 | 155 | 50 | 20.81 |
HN13 | female | 23 | 161 | 50 | 19.29 |
HN14 | female | 21 | 152 | 48 | 20.78 |
HN15 | female | 21 | 155 | 46 | 19.15 |
HN16 | female | 23 | 155 | 48 | 19.98 |
HN17 | female | 21 | 168 | 49 | 17.36 |
HN18 | female | 21 | 162 | 55 | 20.96 |
HN19 | female | 20 | 160 | 53 | 20.70 |
HN20 | female | 21 | 153 | 45 | 19.22 |
HN21 | female | 21 | 158 | 51 | 20.43 |
HN22 | female | 21 | 160 | 49 | 19.14 |
HN23 | female | 23 | 155 | 46 | 19.15 |
HN24 | female | 24 | 165 | 55 | 20.20 |
HN25 | female | 24 | 159 | 48 | 18.99 |
HN26 | female | 24 | 166 | 51 | 18.51 |
HN27 | female | 24 | 159 | 46 | 18.20 |
HN28 | female | 23 | 161 | 50 | 19.29 |
HN29 | male | 23 | 173 | 83 | 27.73 |
表选项
表 2. 饮食调查 Table 2. Dietary questionnaires
Sample | Protein/ (g/day) | Fat/ (g/day) | Carbohydrate/ (g/day) | Dietary fiber/ (g/day) |
HN1 | 54.07 | 38.24 | 137.76 | 23.80 |
HN2 | 59.48 | 37.90 | 209.85 | 14.60 |
HN3 | 63.09 | 32.87 | 187.42 | 16.44 |
HN4 | 56.48 | 35.55 | 192.23 | 23.88 |
HN5 | 63.69 | 32.20 | 192.23 | 14.60 |
HN6 | 51.81 | 24.48 | 234.74 | 13.65 |
HN7 | 61.96 | 25.42 | 296.39 | 21.94 |
HN8 | 65.49 | 33.21 | 164.99 | 16.50 |
HN9 | 55.28 | 28.51 | 187.42 | 28.70 |
HN10 | 79.91 | 34.55 | 158.59 | 38.30 |
HN11 | 51.28 | 23.78 | 310.62 | 16.75 |
HN12 | 95.35 | 25.19 | 296.39 | 14.60 |
HN13 | 75.10 | 41.59 | 166.60 | 14.60 |
HN14 | 55.88 | 35.55 | 150.58 | 19.00 |
HN15 | 53.62 | 27.94 | 159.31 | 13.97 |
HN16 | 77.51 | 41.26 | 168.20 | 18.30 |
HN17 | 48.01 | 30.22 | 163.39 | 20.30 |
HN18 | 69.70 | 40.25 | 203.44 | 20.05 |
HN19 | 54.67 | 44.61 | 160.19 | 22.88 |
HN20 | 76.30 | 43.27 | 208.25 | 17.75 |
HN21 | 81.04 | 21.41 | 251.93 | 12.41 |
HN22 | 76.30 | 43.27 | 147.37 | 23.20 |
HN23 | 75.10 | 29.85 | 152.18 | 20.20 |
HN24 | 65.88 | 35.07 | 142.97 | 15.56 |
HN25 | 60.36 | 30.13 | 296.39 | 21.67 |
HN26 | 49.14 | 29.90 | 312.99 | 24.06 |
HN27 | 46.47 | 37.92 | 136.16 | 19.45 |
HN28 | 63.84 | 25.37 | 129.35 | 17.17 |
HN29 | 41.77 | 25.41 | 266.04 | 20.45 |
表选项
1.2 主要试剂与仪器 Sample Protector for RNA/DNA,大连宝生物工程有限公司;QIAamp?Fast DNA Stool Mini Kit试剂盒,德国QIAGEN公司;KAPA HiFi Hotstart Ready Mix PCR Kit,美国KAPA公司;SMRT建库试剂盒(DNA Template Prep Kit 1.0)、测序试剂(DNA/Polymerase Bingding Kit P6 v2),美国太平洋生物科学公司。PacBio SMRT RS Ⅱ测序平台,美国Pacific Biosciences公司;Applied Biosystems PCR仪,美国应用生物系统公司;Qubit 2.0,美国生命技术有限公司。
1.3 样品采集 采集第0、14、28天的粪便样品,样品采集均由志愿者个人完成,使用无酶无菌管采集约15 g的新鲜粪便样品,加入DNA保护液(sampleprotector of RNA/DNA)后冷冻,并尽快运回实验室。
1.4 粪便细菌宏基因组DNA提取 将粪便样品充分混匀后取0.3 g备用,依照QIAamp?Fast DNA Stool Mini Kit试剂盒说明书的步骤提取细菌宏基因组DNA,用ND-1000型微量紫外分光光度计检验DNA样品的浓度。
1.5 细菌16S rRNA基因全长扩增 使用16S rRNA通用引物对所有样品宏基因组DNA的16S rRNA基因全长进行扩增,扩增引物为27F(5′-AGAGTTTGATCMTG-GCTCAG-3′)和1492R(5′-ACCTTGTTACGACTT-3′)[16]。因测序时每个文库需要等质量的12个样品,所以为了区分同一个文库中的不同样品,用带有识别标签(barcode)的引物对每个样品进行PCR扩增,以区分文库中的不同样品,扩增条件参照说明书。PCR程序设置为:95 ℃ 3 min;98 ℃ 20 s,58 ℃ 45 s,72 ℃ 1 min,循环28次;72 ℃ 1 min,4 ℃终止。
1.6 文库构建和PacBio SMRT三代测序 将每个文库中样品的PCR产物纯化后等质量混匀,依据SMRT建库试剂盒的说明书构建文库。将构建好的文库,加测序试剂后,使用PacBio RS Ⅱ仪器上机测序。
1.7 高质量序列的提取 使用RS_ReadsOfinsert.1对原始序列进行质控,将符合以下标准的序列保留:(1)插入片段重复测序的次数≥5;(2)最小预测精确度为90%;(3)最短插入序列长度为1400 bp;(4)最长插入序列长度为1800 bp。
1.8 生物信息学分析和数据处理 根据标记的Barcode信息将原始序列划分到每个样品中,应用QIIME平台(v1.70)对高质量的序列进行生物信息学分析。(1)采用PYNAST校准并将序列排齐后在97%相似性下进行UCLUST归并,随后按照序列相似性划分操作分类单元(operational taxonomic units,OTU),应用Chimera Slayer检测嵌合体序列并在QIIME平台下去除。(2)从各OTU中选取1条代表性序列,分别使用RDP (Ribosomal database project)、Greengenes (V13.8)和Silva (Livingtree project)数据库对其进行序列同源性比对,将3个数据库比对结果中最精确的一个,确定为相应OTU的最终注释结果,然后进行后续分析。基于OTU table计算各样品菌群在细菌门、属和种水平的组成。(3)使用FastTree (v2.1.3)软件构建基于OTU代表性序列的进化树。随后计算各样品的香农指数(Shannon index)、超1指数(Chao1 index)、发现物种数(Observed species index)和辛普森指数(Simpson index),采用Mann-whitney U检验和Wilcoxon检验评估各样品的细菌丰度和多样性。采用Origin 8.6软件、GraphPad 7.0和R语言软件(v3.3.2)对QIIME产生的结果进行分析和作图。
1.9 核酸序列登录号 本试验所有的测序数据均已上传到MG-RAST数据库(http://metagenomics.anl.gov/),项目号为mgp90631。
2 结果和分析 2.1 测序深度评估及α多样性分析 应用三代测序平台对细菌16S rRNA基因序列全长测序,测序后经过质量控制,纳入本研究的87个样品共获得541848条高质量16S rRNA基因序列,平均每个样品的序列数为6228条(范围:3058–16195,SD=2546)。共划分得到178130个OTUs进行下一步分析,平均每个样品OTU的数量为2047个(范围:571–3859,SD=698)。
本研究绘制稀疏曲线和香农曲线用于评估测序量是否满足后续分析(图 1)。为了尽可能地捕获之前研究中未发现的菌种,本研究在划分OTU时采用无参考数据集(de novo)的方式进行。包括本研究在内的众多研究均采用该OTU划分方式,其稀疏曲线随着测序量增加均无法达到完全水平状态[17-18],但如果香农曲线能够达到水平状态,则表明测序量已能够捕获样品中绝大多数的菌群组成。图 1可以看出本研究中稀疏曲线未进入平台期,但香农曲线已接近平台期,表明虽然随着测序深度的增加,有可能发现新的物种,但当前测序量已覆盖样品中大部分的微生物组成,可以满足后续分析的需要。
图 1 稀疏曲线图(A)和香农多样性图(B) Figure 1 Rarefaction curves (A) and Shannon diversity index (B). |
图选项 |
为了评估摄入LCZ对志愿者肠道菌群多样性的影响,分别采用香农指数和辛普森指数评价肠道菌群的多样性,超1指数和发现物种数评价其丰度。通过Mann-whitney U检验比较摄入益生菌LCZ第0、14、28天的α多样性指数,发现摄入LCZ没有显著改变志愿者肠道菌群多样性(P > 0.05),如表 3所示。
表 3. 样品α多样性指数 Table 3. α-diversity in all samples
α-diversity | Day 0 | Day 14 | Day 28 | P-value |
Shannon index | 7.78±1.22 | 7.94±1.20 | 7.56±1.16 | 0.37 |
Chao1 index | 7715.72±3747.72 | 7556.72±3431.48 | 7176.40±2907.06 | 0.95 |
Observed species index | 1098.74±320.95 | 1148.26±301.12 | 1071.16±287.28 | 0.74 |
Simpson index | 0.96±0.04 | 0.96±0.05 | 0.95±0.04 | 0.22 |
表选项
2.2 志愿者肠道菌群的细菌群落结构分析 为了进一步分析LCZ对肠道菌群结构的影响,本研究基于加权UniFrac距离(weighted UniFrac distances)采用主成分分析评估志愿者在摄入益生菌LCZ前后肠道菌群结构的差异(图 2),图中每个点代表每个志愿者摄入LCZ不同时期的肠道菌群组成。图中可以看出志愿者第0、1、28天的粪便样品存在交叠现象,无明显的聚类趋势。
图 2 志愿者菌群结构的主坐标分析图 Figure 2 The PCA of gut microbiota population structure. |
图选项 |
2.3 海南地区青年人肠道菌群组成 本研究对第0天的肠道菌群数据进行分析,结果显示在门水平上,Firmicutes、Bacteroidetes、Proteobacteria和Actinobacteria是4个最主要的细菌门,分别占总序列的54.46%、33.79%、8.04%和1.33%。其中Firmicutes和Bacteroidetes占绝对优势,比例占肠道内总细菌的85%以上。在属水平上,Bacteroides是相对含量最多的菌属,Faecalibacterium、Eubacterium、Clostridium、Prevotella、Phascolarctobacterium和Ruminococcus等相对含量均大于1%。在种水平上,Faecalibacterium prausnitzii (9.72%)为优势菌种,它是该地区健康青年人肠道中含量最多的共生厌氧菌。Eubacterium rectal (6.98%)、Prevotella copri (6.07%)、Bacteroides plebeius (4.72%)、Bacteroides vulgates (4.27%)等相对含量较高,如图 3所示。
图 3 志愿者肠道菌群组成 Figure 3 The gut bacterial composition of volunteers. A: Phylum; B: Genus; C: Species. |
图选项 |
2.4 LCZ对志愿者肠道菌群组成的影响 由前面分析可知海南地区青年人肠道菌群的原始组成及摄入益生菌LCZ对志愿者肠道细菌多样性没有显著影响,在此基础上进一步分析LCZ对志愿者肠道细菌组成的影响。首先基于细菌属水平进行分析,通过Mann-whitneyU检验发现在摄入LCZ期间,志愿者肠道中优势菌属变化差异不显著。但一些低丰度菌属,如Akkermansia、Flavonifractor、Howardella、Oscillospira和Parabacteroides显著增高(P < 0.05),而Aeromonas和Fusicatenibacter显著下降(P < 0.05),如表 4所示。
表 4. 摄入益生菌前后志愿者肠道中细菌属变化 Table 4. Changes in the genus in the volunteers' intestines after supplement probiotic
Genus | Relative contribution/% | P-value | |||||
Day 14 | Day 28 | Day 28 | Day 0 | Day 14 | Day 0 | ||
VS 0 | VS 14 | VS 0 | VS 14 | VS 28 | VS 28 | ||
Aeromonas | ↓ | ↑ | ↓ | 0.04 | 0.18 | 0.40 | |
Akkermansia | ↑ | ↓ | ↑ | 0.12 | 0.88 | 0.03 | |
Flavonifractor | ↑ | ↓ | ↓ | 0.05 | 0.17 | 0.27 | |
Fusicatenibacter | ↓ | ↑ | ↓ | 0.01 | 0.27 | 0.20 | |
Howardella | ↑ | ↓ | ↑ | 0.04 | 0.12 | 0.72 | |
Oscillospira | ↑ | ↓ | ↑ | 0.01 | 0.41 | 0.02 | |
Parabacteroides | ↑ | ↓ | ↑ | 0.04 | 0.73 | 0.97 |
表选项
在细菌种水平,本研究发现志愿者肠道中优势菌种的相对丰度没有发生显著变化,但是低丰度菌种变化显著。经mann-whitney U检验发现,摄入益生菌LCZ后志愿者肠道中的Alistipes indistinctus、Flavonifractor plautii、Lactobacillus casei、Lactobacillus prepcasei 、Parabacteroides distasonis和Parabacteroides johnsonii的相对含量显著增加,Fusicatenibacter saccharivorans的相对含量显著降低(P < 0.01),具体变化如表 5所示。而在6名志愿者的原始肠道菌群中检测到Lactobacillus paracasei,其相对含量在0.001%–0.01%。将原始志愿者肠道中Lactobacillus paracasei的序列和LCZ的序列进行比对,发现它们的序列并不一致,而将摄入LCZ后检测到的Lactobacillus paracasei的序列与LCZ的序列进行比对,发现肠道中检测到的Lactobacillus paracasei的89%序列与LCZ的序列相同,在停止摄入LCZ后,仍可检测到与LCZ完全一致的序列,表明LCZ在志愿者的肠道中可以存活2周以上。
表 5. 摄入益生菌前后志愿者肠道中细菌种比较分析 Table 5. Comparison of species in the intestines of the volunteers after supplement probiotic
Species | Relative contribution/% | P-value | |||||
Day 14 | Day 28 | Day 28 | Day 0 | Day 14 | Day 0 | ||
VS 0 | VS 14 | VS 0 | VS 14 | VS 28 | VS 28 | ||
Akkermansia muciniphila | ↑ | ↓ | ↑ | 0.12 | 0.88 | 0.03 | |
Alistipes indistinctus | ↑ | ↓ | ↓ | 0.02 | 0.09 | 0.47 | |
Flavonifractor plautii | ↑ | ↓ | ↓ | 0.05 | 0.17 | 0.27 | |
Fusicatenibacter saccharivorans | ↓ | ↑ | ↓ | 0.01 | 0.27 | 0.20 | |
Lactobacillus casei | ↑ | ↓ | ↑ | 0.01 | 0.05 | 0.68 | |
Lactobacillus prepcasei | ↑ | ↓ | ↑ | 0.01 | 0.04 | 0.67 | |
Parabacteroides distasonis | ↑ | ↓ | ↓ | 0.01 | 0.38 | 0.93 | |
Parabacteroides johnsonii | ↑ | ↓ | ↑ | 0.01 | 0.33 | 0.05 |
表选项
2.5 LCZ对志愿者肠道中Lactobacillus的影响 Lactobacillus是人体中常见的有益菌之一,本研究进一步分析了试验期间志愿者肠道中Lactobacillus相对丰度的变化。志愿者在摄入益生菌LCZ后,其肠道中Lactobacillus的变化趋势并不相同。在摄入LCZ后,15名志愿者肠道中Lactobacillus 的含量显著增加,5名志愿者肠道中Lactobacillus的含量显著减少,其余9名志愿者肠道中Lactobacillus的含量没有变化,如图 4所示。
图 4 Lactobacilluss的变化 Figure 4 Changes in the Lactobacillus. |
图选项 |
根据上述结果,将Lactobacillus含量增加的15名将志愿者归为A组,剩余志愿者(包括5名Lactobacillus含量下降和9名没有变化的志愿者)归为B组。经mann-whitney U检验发现A组志愿者肠道中Butyricicoccus pullicaecorum、Lactobacillus casei、Lactobacillus prepcasei、Lactococcus raffinolactis和Parabacteroides distasoni的丰度显著增加(表 6),而在B组中没有发现类似的变化(P < 0.05),B组中Clostridium disporicum 和Fusicatenibacter saccharivorans的丰度显著减少(表 7)。通过对摄入LCZ 14 d时两组数据分析发现,A组志愿者肠道中Lactobacillus casei和Lactobacillus prepcasei的含量更高(表 8)。
表 6. A组志愿者肠道中细菌种比较分析 Table 6. comparison of species in the intestines of group A volunteers
Species | Relative contribution/% | P-value | |
Day 0 | Day 14 | ||
Alistipes onderdonkii | 0.02 | 0.07 | 0.028 |
Bacteroides plebeius | 8.39 | 2.54 | 0.050 |
Blautia faecis | 0.06 | 0.02 | 0.028 |
Butyricicoccus pullicaecorum | 0.00 | 0.02 | 0.028 |
Curvibacter lanceolatus | 0.03 | 0.00 | 0.038 |
Lactobacillus casei | 0.01 | 0.06 | 0.001 |
Lactobacillus prepcasei | 0.01 | 0.07 | 0.001 |
Lactococcus raffinolactis | 0.00 | 0.01 | 0.043 |
Parabacteroides distasonis | 0.87 | 1.28 | 0.048 |
Weissella confusa | 0.08 | 0.00 | 0.043 |
表选项
表 7. B组志愿者肠道中细菌种比较分析 Table 7. Comparison of species in the intestines of group B volunteers
Species | Relative contribution/% | P-value | |
Day 0 | Day 14 | ||
Clostridium disporicum | 0.04 | 0.01 | 0.036 |
Fusicatenibacter saccharivorans | 1.42 | 0.17 | 0.009 |
Paraprevotella clara | 0.05 | 0.13 | 0.028 |
Parasutterella excrementihominis | 0.18 | 0.41 | 0.013 |
Roseburia hominis | 0.11 | 0.43 | 0.041 |
Ruminococcus torques | 0.08 | 0.12 | 0.025 |
Streptococcus vestibularis | 0.01 | 0.00 | 0.043 |
Thermus scotoductus | 0.01 | 0.00 | 0.028 |
表选项
表 8. A组和B组摄入LCZ14 d志愿者肠道中细菌种比较分析 Table 8. Comparison of species in the intestines of volunteers between group A and B during taking LCZ for 14 days
Species | Relative contribution/% | P-value | |
A group | B group | ||
Alistipes shahii | 0.1 | 0.16 | 0.036 |
Bacteroides salyersiae | 0.07 | 0.14 | 0.019 |
Lactobacillus casei | 0.06 | 0.04 | 0.001 |
Lactobacillus prepcasei | 0.07 | 0.01 | 0.001 |
Paraprevotella clara | 0.07 | 0.13 | 0.03 |
Phascolarctobacterium succinatutens | 0 | 0.37 | 0.014 |
表选项
2.6 菌群关联性分析 本研究进一步利用Spearman相关性检验分析了摄入益生菌LCZ后肠道菌群之间的相互关系,图中红线代表正相关,蓝线代表负相关,结果显示Lactobacillus casei与Parabacteroides distasonis、Phascolarctobacterium faecium和Eubacterium rectale呈显著正相关,如图 5所示。
图 5 摄入益生菌LCZ 14 d志愿者肠道菌群之间的相关性 Figure 5 The correlation of intestinal flora bacterial species level during taking LCZ for 14 days. |
图选项 |
3 讨论 影响肠道菌群组成的因素有很多,如饮食、宿主遗传、疾病药物和环境等,有关研究表明人类肠道微生物群主要受饮食、生活方式和环境的影响[19]。在本研究中,为将饮食、生活方式和环境等因素对粪便微生物群的影响最小化,参与本试验的志愿者均来自海南大学,身体健康,且他们的年龄、日常活动和生活方式都相似[20]。本研究发现该地区健康青年人肠道菌群主要由Firmicutes和Bacteroidetes中的细菌属组成[21],这也与之前的多数研究结果相一致[22-23]。优势菌属为Bacteroides、Faecalibacterium、Eubacterium、Prevotella和Ruminococcus等,其中Bacteroides占绝对优势[23]。而Zhang等[21]对中国内蒙古、新疆、云南和广西等地健康成年人肠道菌群的研究发现Phascolarctobacterium、Roseburia、Prevotella、Bacteroides和Blautia等是优势菌属,这表明海南地区青年人的肠道菌群不同于其他地区。Faecalibacterium prausnitzii一般在健康人体肠道中的相对含量超过细菌总数的5%[24],在本研究中它是该地区健康青年人肠道中最丰富的细菌,其含量达到9.72%。它能够为肠上皮细胞提供能量,并影响宿主的多个代谢通路;它也是产丁酸盐最丰富的细菌之一[25],通过在肠道中产生丁酸盐,从而影响宿主生理功能和维持宿主健康稳态[26]。它的相对含量较高可能与该地的环境和饮食密切相关。首先海南地处热带边缘,富含纤维素的果蔬种类繁多。其次据饮食调查表显示,志愿者每天至少食用14 g纤维,有的志愿者可以达到24 g/d。Shen等[27]研究表明纤维摄入量与Faecalibacterium prausnitzii 在肠道中的含量显著相关,这也证明了上述观点。Faecalibacterium prausnitzii被认为是成年人肠道健康的指标和参与者[28],可以将其作为该地区肠道健康的标志物之一。
一个健康的肠道菌群具有一定的自我调节能力,面对内外的压力时(例如饮食、药物、年龄等因素),肠道菌群恢复到原有状态是健康肠道菌群潜在的特征之一[29]。本研究中摄入益生菌LCZ后α多样性没有显著变化也验证了该结论。虽然摄入益生菌LCZ期间优势菌属菌种的变化差异小,但低丰度菌属菌种变化显著。在细菌属水平,本研究发现志愿者肠道中Aeromonas的相对含量显著下降,而Akkermansia、Oscillospira和Parabacteroides的相对含量显著增加。Janda等[30]研究表明Aeromonas是引起免疫功能低下者和免疫功能不全者各种感染并发症的病原。Akkermansia在为宿主提供能量的同时还可以调控脂质代谢、糖代谢和免疫反应等生物学过程以促进人体健康[31]。Konikoff等[32]研究发现Oscillospira虽然仍无法培养,但基于测序技术使得它在肠道中经常被发现,且它和人体的健康密切相关,其含量减少可能会导致肥胖或炎症的发生。在种水平上,志愿者肠道中Alistipes indistinctus、Parabacteroides distasonis和Parabacteroides johnsonii等菌种的含量显著增加,Fusicatenibacter saccharivorans等显著降低。Parabacteroides distasonis是一种很有前途的益生菌,可以调节宿主的代谢,减轻肥胖和代谢功能障碍,其含量与肥胖、非酒精性脂肪肝、糖尿病等疾病状态呈显著负相关[33],在本研究中发现LCZ摄入后,志愿者肠道中Parabacteroides distasonis的含量显著增加,说明服用LCZ可能对人体健康有益。这些结果均表明摄入益生菌LCZ可以增加该地区青年人肠道中有益菌的含量,降低有害菌的含量。
此外,通过摄入益生菌LCZ后志愿者肠道中Lactobacillus的变化,本研究发现了不一样的结果。按照Lactobacillus的变化,可以将他们分为两组,摄入菌粉后含量增加的志愿者为一组(A组),其余志愿者为一组(B组)。A组志愿者肠道中Butyricicoccus pullicaecorum、Lactobacillus casei、Lactococcus raffinolactis和 Parabacteroides distasoni显著增加,而在B组中没有发现类似的变化。这表明LCZ对每个志愿者肠道菌群的影响是不同的,其原因可能是个体肠道菌群的特异性,导致其对LCZ的应答不同[8];且益生菌的定植模式高度依赖个体情况,可能其中一些志愿者的肠道接受了LCZ的定殖,从而对人体产生有益的影响。菌群关联性分析也发现Lactobacillus casei与Parabacteroides distasonis、Phascolarctobacterium faecium和Eubacterium rectale呈显著正相关。此外从Lactobacillus 的含量变化发现,A组志愿者在摄入菌粉期间,肠道中Lactobacillus paracasei的含量显著增加,但在停止摄入菌粉14 d,其含量又几乎恢复到原有水平,说明益生菌的补充可能需要一个持续的过程[2]。
4 结论 本研究发现,海南地区健康青年人的肠道微生物主要由Firmicutes和Bacteroidetes中的细菌属组成,Faecalibacterium Prausnitzii在其肠道中的相对含量最高。摄入2周的益生菌LCZ对健康志愿者粪便微生物多样性的影响不显著,但可以增加肠道中的低丰度有益菌,如Oscillospira、Parabacteroides和Akkermansia等。在LCZ摄入后粪便中Lactobacillus菌属相对含量显著增加的志愿者,其肠道中其他菌种如Butyricicoccus pullicaecorum、Lactococcus raffinolactis和Parabacteroides distasoni亦显著增加,而Lactobacillus变化不显著的志愿者,其肠道中没有发现类似的变化。
References
[1] | Tremaroli V, Backhed F. Functional interactions between the gut microbiota and host metabolism. Nature, 2012, 71(7415): 242-249. |
[2] | Khalesi S, Bellissimo N, Vandelanotte C, Williams S, Stanley D, Irwin C. A review of probiotic supplementation in healthy adults:helpful or hype?. European Journal of Clinical Nutrition, 2018, 73(1): 24-37. |
[3] | Aguirre M, Eck A, Koenen ME, Savelkoul PHM, Budding AE, Venema K. Diet drives quick changes in the metabolic activity and composition of human gut microbiota in a validated in vitro gut model. Research in Microbiology, 2016, 167(2): 114-125. |
[4] | Liu WJ, Zhang JC, Wu CY, Cai SF, Hang WQ, Chen J, Xi XX, Liang ZB, Hou QC, Zhou B, Qin N, Zhang HP. Unique features of ethnic mongolian gut microbiome revealed by metagenomic analysis. Scientific Reports, 2016, 6: 34826. |
[5] | He Y, Wu W, Zheng HM, Li P, McDonald D, Sheng HF, Chen MX, Chen ZH, Ji GY, Zheng ZDX, Mujagond P, Chen XJ, Rong ZH, Chen P, Lyu LY, Wang X, Wu CB, Yu N, Xu YJ, Yin J, Raes J, Knight R, Ma WJ, Zhou HW. Regional variation limits applications of healthy gut microbiome reference ranges and disease models. Nature Medicine, 2018, 24(10): 1532-1535. |
[6] | Kristensen NB, Bryrup T, Allin KH, Nielsen T, Hansen TH, Pedersen O. Alterations in fecal microbiota composition by probiotic supplementation in healthy adults:a systematic review of randomized controlled trials. Genome Medicine, 2016, 8(1): 52. |
[7] | Wu RN, Wang LP, Wang JC, Li HP, Menghe B, Wu JR, Guo MR, Zhang HP. Isolation and preliminary probiotic selection of Lactobacilli from koumiss in Inner Mongolia. Journal of Basic Microbiology, 2010, 49(3): 318-326. |
[8] | Wu RN, Wang WW, Yu DL, Zhang WY, Li Y, Sun ZH, Wu JR, Meng H, Zhang HP. Proteomics analysis of Lactobacillus casei Zhang, a new probiotic bacterium isolated from traditional home-made koumiss in Inner Mongolia of China. Molecular & Cellular Proteomics, 2009, 8(10): 2321-2338. |
[9] | Wu R, Sun Z, Wu J, Meng H, Zhang H. Effect of bile salts stress on protein synthesis of Lactobacillus casei Zhang revealed by 2-dimensional gel electrophoresis. Journal of Dairy Science, 2010, 93(8): 3858-3868. |
[10] | Ya T, Zhang QJ, Chu FL, Merritt J, Bilige MH, Sun TS, Du RT, Zhang HP. Immunological evaluation of Lactobacillus casei Zhang:a newly isolated strain from koumiss in Inner Mongolia, China. BMC Immunology, 2008, 9(1): 68. |
[11] | Zhang Y, Du RT, Wang LF, Zhang HP. The antioxidative effects of probiotic Lactobacillus casei Zhang on the hyperlipidemic rats. European Food Research and Technology, 2010, 231(1): 151-158. |
[12] | Zhang JC, Wang LF, Guo Z, Sun ZH, Gesudu Q, Kwok L, Menghebilige, Zhang HP. 454 pyrosequencing reveals changes in the faecal microbiota of adults consuming Lactobacillus casei Zhang. FEMS Microbiology Ecology, 2014, 88(3): 612-622. |
[13] | Cao CX, Han W, Zhang HP. Application of third generation sequencing technology to microbial research. Microbiology China, 2016, 43(10): 2269-2276. (in Chinese) 曹晨霞, 韩琬, 张和平. 第三代测序技术在微生物研究中的应用. 微生物学通报, 2016, 43(10): 2269-2276. |
[14] | Mosher JJ, Bowman B, Bernberg EL, Shevchenko O, Kan JJ, Korlach J, Kaplan LA. Improved performance of the PacBio SMRT technology for 16S rDNA sequencing. Journal of Microbiological Methods, 2014, 104: 59-60. |
[15] | Yang YX, Wang GY. China of food composition 2002. Peking University Medical Press, 2002. (in Chinese) 杨月欣, 王光亚. 中国食物成分表2002. 北京大学医学出版社, 2002. |
[16] | Mosher JJ, Bernberg EL, Shevchenko O, Kan JJ, Kaplan LA. Efficacy of a 3rd generation high-throughput sequencing platform for analyses of 16S rRNA genes from environmental samples. Journal of Microbiological Methods, 2013, 95(2): 175-181. |
[17] | Xu HY, Ma HM, Wang YJ, Zhao FY, Liu YH, Hai T, Zhang HP, Sun ZH. The study on intestinal bacterial diversity in obese individuals. Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology, 2018, 18(1): 1-11. (in Chinese) 徐海燕, 马慧敏, 王彦杰, 赵飞燕, 刘亚华, 海棠, 张和平, 孙志宏. 肥胖人群肠道细菌多样性研究. 中国食品学报, 2018, 18(1): 1-11. |
[18] | 薛正晟.以健康人和大熊猫为模型的哺乳动物肠道菌群多样性分布与核心功能种属的研究.上海交通大学博士学位论文, 2015. |
[19] | Schnorr SL, Candela M, Rampelli S, Centanni M, Consolandi C, Basaglia G, Turroni S, Biagi E, Peano C, Severgnini M, Fiori J, Gotti R, De Bellis G, Luiselli D, Brigidi P, Mabulla A, Marlowe F, Henry AG, Crittenden AN. Gut microbiome of the Hadza hunter-gatherers. Nature Communications, 2014, 5: 3654. |
[20] | Noh CK, Kim BS, Hong G, Cheong JY, Lee KJ. Effects of the Administration of probiotics on fecal microbiota diversity and composition in healthy individuals. Journal of Neurogastroenterology and Motility, 2018, 24(3): 452-459. |
[21] | Zhang JC, Guo Z, Xue ZS, Sun ZH, Zhang MH, Wang LF, Wang GY, Wang F, Xu J, Cao HF, Xu HY, Lv Q, Zhong Z, Chen YF, Qimuge SD, Menghe BLG, Zheng Y, Zhao LP, Chen W, Zhang HP. A phylo-functional core of gut microbiota in healthy young Chinese cohorts across lifestyles, geography and ethnicities. The ISME Journal, 2015, 9(9): 1979-1990. |
[22] | Arumugam M, Raes J, Pelletier E, Le Paslier D, Yamada T, Mende DR, Fernandes GR, Tap J, Bruls T, Batto JM, Bertalan M, Borruel N, Casellas F, Fernandez L, Gautier L, Hansen T, Hattori M, Hayashi T, Kleerebezem M, Kurokawa K, Leclerc M, Levenez F, Manichanh C, Nielsen HB, Nielsen T, Pons N, Poulain J, Qin JJ, Sicheritz-Ponten T, Tims S, Torrents D, Ugarte E, Zoetendal EG, Wang J, Guarner F, Pedersen O, de Vos WM, Brunak S, Doré J, MetaHIT Consortium (additional members), Weissenbach J, Ehrlich SD, Bork P. Enterotypes of the human gut microbiome. Nature, 2011, 473(7346): 174-180. |
[23] | Deschasaux M, Bouter KE, Prodan A, Levin E, Groen AK, Herrema H, Tremaroli V, Bakker GJ, Attaye I, Pinto-Sietsma SJ, van Raalte DH, Snijder MB, Nicolaou M, Peters R, Zwinderman AH, B? ckhed F, Nieuwdorp M. Depicting the composition of gut microbiota in a population with varied ethnic origins but shared geography. Nature Medicine, 2018, 24(10): 1526-1531. |
[24] | Miquel S, Martin R, Bridonneau C, Robert V, Sokol H, Bermudez-Humaran LG, Thomas M, Langella P. Ecology and metabolism of the beneficial intestinal commensal bacterium Faecalibacterium prausnitzii. Gut Microbes, 2014, 5(2): 146-151. |
[25] | Flint HJ, Scott KP, Duncan SH, Louis P, Forano E. Microbial degradation of complex carbohydrates in the gut. Gut microbes, 2012, 3(4): 289-306. |
[26] | Macfarlane GT, Macfarlane S. Fermentation in the human large intestine:its physiologic consequences and the potential contribution of prebiotics. Journal of Clinical Gastroenterology, 2011, 45 Suppl: S120-S127. |
[27] | Shen Q, Zhao L, Tuohy KM. High-level dietary fibre up-regulates colonic fermentation and relative abundance of saccharolytic bacteria within the human faecal microbiota in vitro. European Journal of Nutrition, 2012, 51(6): 693-705. |
[28] | Miquel S, Martín R, Rossi O, Bermúdez-Humarán LG, Chatel JM, Sokol H, Thomas M, Wells JM, Langella P. Faecalibacterium prausnitzii and human intestinal health. Current Opinion in Microbiology, 2013, 16(3): 255-261. |
[29] | Lloyd-Price J, Abu-Ali G, Huttenhower C. The healthy human microbiome. Genome Medicine, 2016, 8(1): 51. |
[30] | Janda JM, Abbott SL. The genus Aeromonas:taxonomy, pathogenicity, and infection. Clinical Microbiology Reviews, 2010, 23(1): 35-73. |
[31] | Zhao F, Li CB. Characteristics of intestinal bacterium Akkermansia muciniphila and the association with host health. Microbiology China, 2017, 44(6): 1458-1463. (in Chinese) 赵凡, 李春保. 肠道菌Akkermansia muciniphila的特性及其与机体健康的关系. 微生物学通报, 2017, 44(6): 1458-1463. |
[32] | Konikoff T, Gophna U. Oscillospira:a central, enigmatic component of the human gut microbiota. Trends in Microbiology, 2016, 24(7): 523-524. |
[33] | Wang K, Liao MF, Zhou N, Bao L, Ma K, Zheng ZY, Wang YJ, Liu C, Wang WZ, Wang J, Liu SJ, Liu HW. Parabacteroides distasonis alleviates obesity and metabolic dysfunctions via production of succinate and secondary bile acids. Cell Reports, 2019, 26(1): 222-235.e5. |