CRISPR/Cas系统是古菌和细菌的抵抗病毒和质粒侵染的重要免疫防御系统。CRISPR-Cas系统划分为两大类，第一大类CRISPR-Cas系统由多亚基组成的效应复合物发挥功能；第二大类是由单个效应蛋白（如Cas9, Cas12a, Cas12b, Cas13等）来发挥功能。其中，Cas9, Cas12a, Cas12b均具有RNA介导的DNA核酸内切酶活性, Cas13a具有RNA介导的RNA核酸酶活性。面对细菌的免疫系统（CRISPR-Cas），噬菌体也相应的进化出了自己的防御系统（Anti-CRISPR）。2017年首次发现了Listeria monocytogenes 噬菌体来源的四个Anti-CRISPR蛋白，AcrIIA1, AcrIIA2, AcrIIA3 和AcrIIA4。研究发现AcrIIA2和AcrIIA4蛋白在细胞内能够抑制SpyCas9的基因编辑活性。随后的结构和功能研究表明AcrIIA4通过阻断DNA与SpyCas9的结合来抑制SpyCas9的功能，然而AcrIIA2抑制SpyCas9活性的分子机制一直未能阐述清楚。
在该研究中，研究人员首先通过生化实验发现AcrIIA2只与结合有sgRNA的SpyCas9二元复合物结合，并不与自由状态下的SpyCas9结合，也并不与同时结合有sgRNA和dsDNA的SpyCas9三元复合物结合。为了研究AcrIIA2直接抑制SpyCas9活性的分子机制，研究人员利用X-ray晶体学的方法成功解析了AcrIIA2-SpyCas9-sgRNA的三元复合物晶体结构 （3.3 埃）。结构发现AcrIIA2是由三个α螺旋及一个β折叠组成的紧凑结构，它结合在SpyCas9的一个带正电荷的凹槽区域。该区域由PI, HNH, WED, 和 REC2 结构域形成。PI结构域上R1333和R1335是识别dsDNA的PAM序列的关键氨基酸，AcrIIA2通过与R1333和R1335形成稳固的氢键从而阻断SpyCas9对PAM序列的识别，进而阻止SpyCas9对dsDNA的结合。而AcrIIA2的α1螺旋与HNH结构域的相互作用可以锚定HNH结构域，阻止其结合DNA必须发生的构象变化。另外，通过结构比对分析发现AcrIIA2有大量的带负电荷的氨基酸占据着dsDNA中PAM结合的位置，这表明AcrIIA2模拟带负电荷的DNA与SpyCas9结合从而阻止DNA与SpyCas9的结合。有趣的是，竞争性结合实验表明AcrIIA2并不能取代已经与SpyCas9-sgRNA结合的dsDNA, 而dsDNA也不能取代已经与SpyCas9-sgRNA结合的AcrIIA2。总之，通过结构和功能实验的证明，AcrIIA2主要通过三个步骤来抑制dsDNA的结合。首先，AcrIIA2可以阻断PAM的识别；其次，AcrIIA2占据了dsDNA的结合位点；最后，AcrIIA2通过限制HNH结构域的构象变化来抑制dsDNA的结合。
目前，SpyCas9蛋白作为基因组编辑工具被广泛应用于DNA领域的基因编辑，克服了传统基因编辑技术步骤繁琐、耗时长、效率低等缺点，以其较少的成分、便捷的操作以及较高的效率满足了大多数领域的基因编辑需求，并有着潜在的临床应用价值。但是CRISPR-SpyCas9基因编辑系统也存在着一定的脱靶问题，该研究对Anti-CRISPR 蛋白抑制SpyCas9活性分子机制的阐述为控制或终止SpyCas9活性提供了新的参考和思路。有望将Anti-CRISPR 蛋白开发成新的基因编辑终止工具，实现精准基因编辑。
中国科学院生物物理所王艳丽研究员为本文的通讯作者。王艳丽课题组的刘亮为本文的第一作者，该研究得到科技部、国家自然科学基金以及中国科学院战略性先导科技专项（B类）的资助，上海同步辐射光源（SSRF）以及日本同步辐射光源SPring-8为该研究提供了重要的技术支持。
图注：AcrIIA2-SpyCas9-sgRNA三元复合物的晶体结构
（A）SpyCas9的结构域。
（B）AcrIIA2-SpyCas9-sgRNA三元复合物的结构展示图。
文章链接：https://www.cell.com/molecular-cell/fulltext/S1097-2765(18)30981-X
（供稿：王艳丽研究组）
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