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山东农业大学生命科学学院研究生导师简介-倪 敏

山东农业大学 免费考研网/2016-03-15




程  
 

姓名倪敏学历博士职称讲座教授
所属部门植物学系
联系方式nixxx008@num.edu

 
  
::教师简介::
倪敏教授1982毕业于山东农业大学,先后获美国肯塔基大学作物学硕士及美国奥克拉荷马大学植物学博士。然后在美国普渡大学及加州大学伯克利分校从事博士后研究。美国明尼苏达大学双城校区植物生物学系教授。2013年3月入选国家“****”,山东农业大学生科院植物发育分子生物学教授。



  


  
::科研方向::
实验室早年主要研究光形态建成和幼苗去黄化。发现了一个光信号途径中非常重要的组成成分PIF3,并分别在Cell(1998)和Nature(1999)上发表了论文研究其主要功能,两篇论文均为第一作者,已被引用500次以上。最近几年,我们利用遗传、分子生物学、细胞生物学和生物化学等手段将研究扩展到拟南芥和油菜的光调控气孔和种子发育方向。获多项美国国家科学基金及美国农业部资助。我们继续开展光形态建成方面的研究并且鉴定了一组对红蓝光敏感的突变体。这些突变体同样破坏蓝光诱导的气孔开放反应。突变体植株通过减少气孔活动来减少水分流失使得植株更耐干旱。气孔受自然环境中的蓝光调节,被认为由蓝光/紫外A光吸收的向光蛋白和蓝光受体介导。连接蓝光感应气孔开放的相应信号组件在很大程度上是未知的。我们现在正在研究这些组件在光导气孔运动的信号转导通路中的相互作用,已经在Plant Cell and PLoS Genetics发表了一系列的研究论文。我们的很多突变体也显示种子扩大或缩小的表型。拟南芥种子的发育首先经历了一个胚乳迅速增多的过程,而随后一个时期里胚乳又被迅速的消耗掉。种子大小由母本胚珠、胚乳和胚胎的生长相互协调决定。这种调控机制仍然没有得到很好的解释。但是种子构成了食物的主要来源。我们已经确定SHB1和其他的一些基因控制拟南芥和油菜的种子发育。目前,我们正在研究4个基因调节种子发育的分子机制。在这个领域,我们已经在Plant Cell 、PLoS Genetics 和Current Opinion in Plant Biology 发表了多篇论文。

光信号转导及光形态建成方向

1) 我们主要集中研究表观遗传修饰调控因子CLF与转录调控因子SHB1如何相互作用,以及这种相互作用的生物学意义是什么。同时研究SHB1是如何被招募到光信号调控因子PIF3和PIF4的启动子上,并调控其表达。

2) 我们筛选到一个参与红光信号传导途径半显性突变体62和一个参与红光和远红光信号传导途径的隐性突变体113。通过本实验室已建立的高通量测序与图位克隆相结合的方法,可在短时间内鉴定出其突变位点,并进一步研究其生理生化功能。

胚乳发育及种子发育方向

1) 通过对shb1-D进行EMS诱变筛选到2个抑制shb1-D表型的突变体,粗定位和高通量测序确定突变的SNP位点,进而研究其生理生化功能。

2) 本实验室研究一个在胚乳与种子发育过程中起重要作用的富含亮氨酸的跨膜受体激酶,我们计划进一步研究其表达的位置,以及它的结合的配体和调控的底物,以进一步揭示种子发育的分子调控机理。

  
::科研情况::


1) 国家自然科学基金面上项目,CLF抑制及SHB1激活PIF3PIF4 表达的研究,2015-2018,主持

2) 光信号传导及种子发育,山东农业大学, 2013-2018,主持



  
::学术论文::


Xiao, Y., Kang, X., and Ni, M. (2014). SHB1 or HAIKU2 mixexpression alters canola and Arabidopsis seed development.

Kang, X., Li, W., Zhou, Y., and Ni, M. (2013). A WRKY transcription factor recruits SYG1-like protein SHB1 to activate gene expression and seed cavity enlargement. PLoS Genetics. 9(3): e**.

Chen, C., Xiao, Y., Li, X., and Ni, M. (2012). Light-regulated stomatal aperture in Arabidopsis. Molecular Plant 5, 566-572.

Sun, X., Kang, X., and Ni, M. (2012). Hypersensitive to Red and Blue 1 and its modification by Protein Phosphatase 7 are implicated in the control of Arabidopsis stomatal aperture. PLoS Genetics 8(5): e**.

Sun X., and Ni M. (2011). HYPOSENSITIVE TO LIGHT, an alpha/beta fold protein, acts downstream of HY5 to regulate Arabidopsis seedling de-etiolation. Molecular Plant 4, 116-126.

Sun X., Shantharaj D., Kang X., and Ni M. (2010). Transcriptional and hormonal signaling control of Arabidopsis seed development. Current Opinion in Plant Biology 13, 611-620.

Zhou Y., and Ni, M. (2010). SHB1 truncations and mutations alter its association with a signaling protein complex. Plant Cell 22, 703-715.

Zhou Y., and Ni, M. (2009). SHB1 plays dual roles in photoperiodic and autonomous flowering. Developmental Biology 331, 50-57.

Zhou Y., Zhang, X., Kang, X., Zhao, X., Zhang, X., and Ni, M. (2009). SHORT HYPOCOTYL UNDER BLUE1 associates with MINISEED3 and HAIKU2 promoters in vivo to control Arabidopsis seed development. Plant Cell 21, 106-117.

Kang, X., Zhou, Y., Sun, X., and Ni, M. (2007). HYPERSENSITIVE TO RED AND BLUE 1 and its C-terminal regulatory function control FLOWERING LOCUS T expression. Plant Journal 52, 937-948.

Chen, M., and Ni, M. (2006). RED AND FAR-RED INSENSITIVE 2, a RING-domain zinc-finger protein, negatively regulates CONSTANS expression and photoperiodic flowering. Plant Journal 46, 823-833.

Kang, X., and Ni, M. (2006). Arabidopsis SHORT HYPOCOTYL UNDER BLUE 1 contains SPX and EXS domains and acts in cryptochrome signaling. Plant Cell 18, 921-934.

Chen, M., and Ni, M. (2006). RED AND FAR-RED INSENSITIVE 2, a RING-domain zinc-finger protein, mediates phytochrome-controlled seedling de-etiolation responses. Plant Physiology 140, 457-465.

Ni, M. (2005). Integration of light signaling with photoperiodic flowering and circadian regulation. Cell Research 15, 559-566.

Kang, X., Chong, J., and Ni, M. (2005). HYPERSENSITIVE TO RED AND BLUE 1, a ZZ-type zinc finger protein, regulates phytochrome B-mediated red and cryptochrome-mediated blue light responses. Plant Cell 17, 822-835.

Ni, M., Tepperman, J., and Quail, P.H. (1999). Binding of phytochrome B to its nuclear signaling partner PIF3 is reversibly induced by light. Nature 400, 781-784.

Ni, M., Tepperman, J., and Quail, P.H. (1998). PIF3, a phytochrome interacting factor necessary for photoinduced signal transduction, is a basic helix-loop-helix protein. Cell 95, 657-667.

Ni, M., Dehesh, K., Tepperman, J., and Quail, P.H. (1996). GT-2: In vivo transcriptional activation activity and definition of twin novel DNA-binding domains with reciprocal target-site selectivity. Plant Cell 8, 1041-1059.



  





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