姓名： 李晋成 导师类别： 硕导

所在专业： 水产养殖 研究方向： 水产品中药残检测及代谢规律
学院/单位： 水科院院部
专业所属学院： 水产与生命学院
专业技术职务： 副研究员 行政职务：
性别： 男 E-Mail： lijc@cafs.ac.cn
最高学位： 博士
通讯地址： 北京市丰台区永定路南青塔村150号
备注：
简历

自2012年博士毕业后进入水科院工作以来，紧紧围绕水产品质量安全学科的行业需求，将研究主要聚焦在水产品中麻醉剂等残留检测技术、抗生素的高通量样品前处理方法开发等领域研究。相关成果先后获2017年度中国分析测试协会科学技术奖青年奖和2016年度中国水产科学研究院科技进步奖等奖励5项。入选第4批中国水产科学研究院“百名科技英才培育”计划。任上海海洋大学硕士生导师、中国水产学会青年工作委员会委员。

教育经历

2012年毕业于中国科学院化学研究所和北京大学联合培养博士生项目，获北京大学分析化学专业博士学位，研究领域：新型样品前处理技术
2007年毕业于河南大学，获学士学位

工作经历

2016年-迄今中国水产科学研究院质量与标准研究中心，副研究员
2012年-2015年中国水产科学研究院质量与标准研究中心，助理研究员

研究成果

近3年以第一作者或通讯身份发表SCI收录学术论文6篇，报批食品检测国家标准1项（第一完成人），获授权实用新型专利5项、发明专利1项；由于在水产品质量安全领域开展了卓有成效的工作，被聘为《Food chemistry》、《Journal of Chromatography A》、《食品科学》等期刊审稿人。（1）麻醉剂残留检测技术研究：针对我国鲜活水产品在运输、暂养等环节存在麻醉剂滥用的问题，开展了水产品中丁香酚、MS-222、地西泮等3种典型麻醉剂类药物及其代谢物的分析测定新技术，发展出3套基于色谱质谱联用技术的高准确度、高灵敏度、高检测效率的典型麻醉剂类药物及其代谢物的检测方法，阐明了2种典型麻醉剂类药物在鱼体内的分布和消除规律，建立了水产品中麻醉剂类药物检测分析及消除规律研究技术体系，相关研究成果于2019年3月29日被农业农村部科技发展中心鉴定为国际先进水平（1/15）。（2）抗生素残留的高通量样品前处理研究：创新性地将磁性颗粒引入到水产品中8种磺胺类抗生素高通量样品前处理中，缩短了样品前处理时间，提高了检测效率。

获奖情况

（1）水产品中主要危害物快速检测及毒性评价技术研发与应用, 中国水产科学研究院科技进步奖三等奖（排名：5/10），2018
（2）水产品中典型麻醉剂类药物残留检测技术研发及应用， 中国分析测试协会科学技术奖青年奖（排名：1/10），2017
（3）中国水产科学研究院“百名科技英才培养计划”人选，2017
（4）农产品质量安全质谱分析优秀论文一等奖，2017
（5）水产品中典型麻醉剂类药物残留检测技术研发及应用， 中国水产科学研究院科技进步奖三等奖（排名：1/10），2016
（6）全国有机质谱学术年会优秀论文奖，2016
（7）北京青年水产科技论坛科技论文三等奖，2015

专利著作

近5年代表作（第一作者）：
1. 授权发明专利：一种基于磁分离快速测定动物肌肉组织中磺胺类抗生素残留量的方法 ，专利号0.7
2. 授权实用新型专利：一种圆盘状可旋转固相萃取装置，专利号：6.6。
3. 授权实用新型专利：一种流出液收集界面高度可调的固相萃取仪装置,专利号: 20**820。
4. 授权实用新型专利：全自动震荡提取净化装置. 专利号CNU。
5. 授权实用新型专利： 推杆式滤过型净化柱. 专利号CNU。
6. 授权实用新型专利： 基于磁分离的全自动QuEChERS前处理一体机. 专利号CNU。
7. 授权实用新型专利： 全自动磁分离提取-固相萃取联用一体机. 专利号CNU。
8. 授权实用新型专利：基于磁分离全自动样品震荡提取分离装置. 专利号CNU。

论文发表

近5年代表作（第一作者或者通讯作者）：
1. Quantitative determination of rifampicin in aquatic products by stable isotope-dilution high liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Biomedical chromatography 2020, 34(5)：e4810(IF=1.688)
2. Stable isotope dilution assay for the accurate determination of tricaine in fish samples by HPLC-MS-MS. Biomedical Chromatography. 2019, 2019, 33(5): e4512 (IF=1.688)
3. Stable Isotope Labeling Assisted GC-MS/MS Method for Determination of Methyleugenol in Food Samples. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2018, 98 (9): 3485-3491. (IF=2.397)
4. Development of a stable isotope dilution assay-SPE-GC-MS/MS for the quantification of eugenol in water samples. Aquaculture Research. 2018, 49(1): 582-585. (IF=1.475)
5. Determination of eugenol in fish and shrimp muscle tissue by stable isotope dilution assay and solid-phase extraction coupled gas chromatography–triple quadrupole mass spectrometry. Analytical Bioanalytical Chemistry. 2016, 408 (24): 1-8. (IF=3.307)
6. Optimization of solid-phase-extraction cleanup and validation of quantitative determination of eugenol in fish samples by gas chromatography-tandem mass spectrometry. Analytical Bioanalytical Chemistry. 2015, 407(21):6563-6568. (IF=3.307)
7. A comparative study of primary secondary amino (PSA) and multi-walled carbon nanotubes (MWCNTs) as QuEChERS absorbents for the rapid determination of diazepam and its major metabolites in fish samples by high-performance liquid chromatography-electrospray ionization-tandem mass spectrometry. Journal of the Science of Food and Agriculture. 2016, 96(2): 555-560. (IF=2.397)
8. A novelty strategy for the fast analysis of sulfonamide antibiotics in fish tissue using magnetic separation with high performance liquid chromatography–tandem mass spectrometry. Biomedical Chromatography. 2016, 30(8):1331-1337. (IF=1.688)
9. Rapid determination of tricaine mesylate residues in fish samples using modified QuEChERS and high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Analytical Method. 2014, 6, 9124-9128. (IF=2.073)