在文献报道中，Synaptotagmin-1 (Syt1)和三个SNARE蛋白形成的复合物，是介导突触小泡停泊的潜在候选分子机器。SNARE复合物由三个蛋白组成，是囊泡与质膜融合的最小蛋白机器。Syt1则是动作电位诱发突触小泡释放的钙离子感受器。在经典的囊泡融合模型中，三个SNARE蛋白在远端结合形成一个Z字型的拉链，随着4个平行α螺旋束结构的形成，囊泡自远而近地完成了停泊-点火（Docking-Priming）的过程，进入准备释放（release ready）的状态，这是囊泡停泊的传统模型，即SNARE complex介导了囊泡的停泊。然而，这一模型存在较大争议，原因在于两方面。一方面，停泊的形态学定义（即囊泡须紧贴于质膜）并不准确，停泊究竟在什么位置启动，一直是悬而未决的问题。另一方面，在蛋白机器研究上，多重基因敲除动物模型不但耗时耗力，而且存在很多发育缺陷与代偿作用带来的负面效应。
为解决上述技术障碍，姚骏课题组开发了在体高效沉默多重基因的CRISPRi技术，在神经元中，高效特异地对基因单独或者联合进行条件性敲低，在神经元内构建出类体外重构的环境。另外，课题组结合高压冷冻（High pressure freezing）与电子断层扫描（TEM tomography）技术，得到接近真实状态下神经元突触不同基因敲除的三维电镜数据。从而对突触小泡的停泊过程进行精确的电镜观测和定义。作者首先对SNARE复合物进行了多重敲低，发现在离突触前膜2-12 nm的范围内，突触小泡出现了数倍于对照组的聚集。在SNARE全敲的基础上引入Syt1敲低后，突触小泡的聚集现象消失，这说明Syt1可能是将囊泡圈定在2-12 nm范围内的关键因素。随后的一系列实验全面证实了Syt1的这一功能。进一步，作者们开始探索Syt1启动突触囊泡停泊的分子伴侣。脂质体共沉淀实验（co-sedimentation）表明，Syt1可以通过其C2B domain上的K325-K327模块与PIP2结合，突变这一模块（Syt1KA），Syt1则无法与PIP2相互作用。而Syt1与SNARE结合有两个界面，同时突变这些界面位点（Syt1Q/LLQQ），可以有效地减弱Syt1与SNARE的结合。作者发现，在Syt1/SNARE敲低组中引入Syt1KA突变体，并不能让突触小泡被圈定在2-12 nm范围内，而Syt1Q/LLQQ却可以执行这一功能。所以，Syt1很可能通过与PIP2结合来启动突触小泡停泊。针对PIP2的功能研究，作者们使用了四种不同的方法来降低或提升突触前膜上PIP2的含量，包括PIP2合成酶PIP5K三个亚型的三重敲降、PIP2水解酶Synaptojanin-1 (Synj)的增强型突变，以及代谢型谷氨酸受体mGluN5的拮抗剂和激动剂处理。这四种方法均有效地改变了突触前膜上PIP2的含量。此外，电镜分析结果表明，降低PIP2含量可抑制Syt1在2-12 nm处启动突触小泡的停泊，而提升PIP2含量则无明显效应。这一系列实验，证明了PIP2是Syt1在膜上的分子伴侣，它们相互作用、共同启动了突触小泡的Docking。
综合来看，本项研究发现Syt1结合PIP2介导了突触小泡的停泊的起始过程，其作用位置位于距质膜约12 nm处，该过程不依赖于SNARE复合物，且优先于SNARE复合物的形成。通过这一研究，作者们发现了Docking起始态发生的位置和分子机制，为理解神经递质的释放过程，尤其是理解大脑在受到高频生理刺激时神经元保持快速高效的响应，作出了重要贡献。
突触囊泡Docking的动态过程及其分子机制
此研究工作于3月16日在线发表于《细胞报道》（Cell Reports）期刊。清华大学生命学院姚骏研究员为本文的通讯作者。生命学院博士生陈运、王颖菡及生命学院已出站博士后郑毅为共同第一作者。清华大学生命学院李雪明研究员及其课题组李美静博士，姚骏课题组王秋文博士、博士生汪兵、付崇雷、刘要南为本项研究作出了重要贡献。清华大学冷冻电镜平台李英博士和胡晓风、细胞影像平台王文娟博士、NIBS何万中研究员和尼康公司李勋博士为本研究提供了重要帮助。
论文链接：https://www.cell.com/cell-reports/fulltext/S2211-1247(21)00156-X
供稿：生命学院
编辑：李华山
审核：吕婷
2021年03月17日 14:12:07
